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Variovorax paradoxus ( 英語 )

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Variovorax paradoxus is a gram negative, beta proteobacterium from the genus Variovorax.[1] Strains of V. paradoxus can be categorized into two groups, hydrogen oxidizers and heterotrophic strains, both of which are aerobic.[3] The genus name Vario-vorax (various-voracious; devouring a variety of substrates) and species name para-doxus (contrary-opinion) reflects both the dichotomy of V. paradoxus metabolisms, but also its ability to utilize a wide array of organic compounds.[1]

Morphology and physiology

V. paradoxus cells are curved rods in shape, with dimensions of 0.3-0.6 x 0.7-3.0 μm in size and normally occur as either single or pairs of cells. Typically, cells have 1-3 peritrichous, degenerate flagella. Colonies of V. paradoxus are yellow-green in colour, due to the production of carotenoid pigments, and often have an iridescent sheen.[4] Colony shape is normally convex, round and smooth, but can also display flat, undulate margins.[1] V. paradoxus grows optimally at 30 °C in most growth media, including M9-glucose. On nutrient agar and M9-glucose agar, colonies take 24–48 hours to grow to a few millimetres in size.

Pantothenate is a characteristic carbon source utilized by V. paradoxus; it was the use of this sole carbon source that lead to the isolation of the first known strain of V. paradoxus.[3] Polyhydroxyalkanoates (PHA), including poly-3-hydroxybutyrate (3-PHB), are stored intracellularly by V. paradoxus cells when carbon is abundant and other factors limit growth[3][4][5]

Genome Sequences

The genomes of four strains of V. paradoxus have been sequenced, S110,[6] EPS,[7] B4[8] and TBEA6.[9] S110 was isolated from the interior of a potato plant and was identified as a degrader of AHLs. This strain has two chromosomes (5.63 and 1.13Mb), a G+C content of 67.4% and a predicted number of 6279 open reading frames (ORF).[6] EPS was isolated from the rhizosphere community of the sunflower (Helianthus annuus), and was initially studied for its motility. It has one chromosome (6.65Mb), a G+C content of 66.48% and a total of 6008 genes identified.[7] The genomes of B4 and TBEA6 were sequenced with specific interest to better understand the strains abilities to degrade mercaptosuccinate and 3,3 -thiodipropionic acid respectively.[8][9]

Occurrence

Found ubiquitously, V. paradoxus has been isolated from a diverse range of environments including soil,[10][11] the rhizosphere of numerous plant species,[6][10][12] drinking water,[13] ground water,[14] freshwater iron seeps,[15] ferromanganese deposits in carbonate cave systems,[16] deep marine sediments,[17] silver mine spoil,[18] gold-arsenopyrite mine drainage water,[19] rubber tyre leachate[20] and surface snow.[21] In particularly, V. paradoxus is abundant in numerous environments that are contaminated with either recalcitrant organic compounds or heavy metals. V. paradoxus is also commonly found in plant rhizosphere communities and is a known plant growth-promoting bacterium (PGPB). It is from these two types of environments that V. paradoxus has been most extensively studied.[4]

Role in the environment

V. paradoxus’s diverse metabolic capabilities enable it to degrade a wide array of recalcitrant organic pollutants including 2,4-dinitrotoluene, aliphatic polycarbonates and polychlorinated biphenyls. Both its catabolic and anabolic capabilities have been suggested for biotechnological use, such as to neutralise or degrade pollutants at contaminated sites.[4]

The role of V. paradoxus in the plant root rhizosphere and surrounding soil has been investigated in several plant species, with implicated growth promoting mechanisms including reducing plant stress, increasing nutrient availability and inhibiting growth of plant pathogens; many of these mechanisms relate to the species catabolic capabilities.[6] In the rhizosphere of pea plants (Pisum sativum), V. paradoxus was shown to increase both growth and yield by degrading the ethylene precursor molecule 1-aminocyclopropane-1-carboxylate (ACC), using a secreted ACC deaminase.[22] Strains of V. paradoxus have also been identified that can degrade N-acyl homoserine-lactones (AHL), microbial signalling molecules involved in quorum sensing.[23] It is hypothesized that this ability could provide a host plant protection from pathogenic infection, with the impact of quorum quenching to reduce virulence in pathogenic strains present.[24]

V. paradoxus is involved in cycling numerous inorganic elements including arsenic,[25][26] sulfur,[10] manganese[27][28] and rare earth elements[29] in a range of soil, freshwater and geological environments. In the case of arsenic, V. paradoxus is believed to oxidize As (III) to As (V) as a detoxification mechanism.[25] V. paradoxus has been found in a range of rocky environments including carbonate caves, mine spoil and deep marine sediments, but the role of this organism within these environments is largely unstudied.[16][17][18] The species is also tolerant of a large number of heavy metals including cadmium,[30] chromium, cobalt, copper, lead, mercury, nickel, silver,[18] zinc[31] at mM concentrations.[32] Despite this, very little is known about the physiological adaptions V. paradoxus uses to support this tolerance. The sequenced genome of the endophytic strain V. paradoxus S110 provides some clues to the organism's metal tolerance by identifying key molecular machinery in processing metals such as the arsenic reductase complex ArsRBC, metal transporting P1-type ATPases and a chemiosmotic antiporter efflux system similar to CzcCBA of Cupriavidus metallidurans.[6] Cupriavidus species, including C. metallidurans, are well characterised in the field of microbe-metal interactions, and are found within the same order (Burkholderiales) as V. paradoxus. Both the species C. necator and C. metallidurans (when not distinguished as separate species) were originally classified in the genera Alcaligenes along with V. paradoxus (Alcaligenes eutrophus and Alicaligenes paradoxus).[3][33] This relationship with other heavy metal resistant species may help to partially explain the evolutionary history of V. paradoxus's metal tolerance.

Motility and biofilm formation

Variovorax paradoxus EPS swarming time-lapse video, swarming on FW-succinate-NH4Cl medium, taken 18 h after inoculation, 2 h time lapse, 3 m between frames.[34]

The V. paradoxus strain EPS has been shown capable of swarming motility and biofilm formation.[34][35] Jamieson et al. demonstrate that altering the carbon and nitrogen sources provided in the swarming agar causes variation in both swarm colony size and morphology.[34] Mutagenesis studies have revealed that the swarming capability of V. paradoxus is largely dependent on a gene involved surfactant production, a type IV pili component and the ShkRS two component system.[35] Dense biofilms of V. paradoxus can be grown in M9 medium with carbon sources including d-sorbitol, glucose, malic acid, mannitol and sucrose and casamino acids. Production of exopolysaccharide was hypothesized to be a controlling factor in biofilm formation. V. paradoxus biofilms take on a honeycomb morphology, as identified in many other species of biofilm forming bacteria.[34]

References

  1. ^ a b c d Willems, A.; Ley, J. De; Gillis, M.; Kersters, K. (1991-07-01). "NOTES: Comamonadaceae, a New Family Encompassing the Acidovorans rRNA Complex, Including Variovorax paradoxus gen. nov., comb. nov., for Alcaligenes paradoxus (Davis 1969)". International Journal of Systematic Bacteriology. 41 (3): 445–450. doi:10.1099/00207713-41-3-445.
  2. ^ "DSM 30034 Strain Passport". StrainInfo. Retrieved 2013-06-01.
  3. ^ a b c d DAVIS, D. H.; DOUDOROFF, M.; STANIER, R. Y.; MANDEL, M. (1969-10-01). "Proposal to reject the genus Hydrogenomonas: Taxonomic implications". International Journal of Systematic Bacteriology. 19 (4): 375–390. doi:10.1099/00207713-19-4-375.
  4. ^ a b c d Satola, Barbara; Wübbeler, Jan Hendrik; Steinbüchel, Alexander (2012-11-29). "Metabolic characteristics of the species Variovorax paradoxus". Applied Microbiology and Biotechnology. 97 (2): 541–560. doi:10.1007/s00253-012-4585-z. ISSN 0175-7598. PMID 23192768. S2CID 18656264.
  5. ^ Maskow, T.; Babel, W. (2001-03-01). "A calorimetrically based method to convert toxic compounds into poly-3-hydroxybutyrate and to determine the efficiency and velocity of conversion". Applied Microbiology and Biotechnology. 55 (2): 234–238. doi:10.1007/s002530000546. ISSN 0175-7598. PMID 11330720. S2CID 40578199.
  6. ^ a b c d e Han, Jong-In; Choi, Hong-Kyu; Lee, Seung-Won; Orwin, Paul M.; Kim, Jina; LaRoe, Sarah L.; Kim, Tae-gyu; O'Neil, Jennifer; Leadbetter, Jared R. (2011-03-01). "Complete Genome Sequence of the Metabolically Versatile Plant Growth-Promoting Endophyte Variovorax paradoxus S110". Journal of Bacteriology. 193 (5): 1183–1190. doi:10.1128/JB.00925-10. ISSN 0021-9193. PMC 3067606. PMID 21183664.
  7. ^ a b Han, Jong-In; Spain, Jim C.; Leadbetter, Jared R.; Ovchinnikova, Galina; Goodwin, Lynne A.; Han, Cliff S.; Woyke, Tanja; Davenport, Karen W.; Orwin, Paul M. (2013-10-31). "Genome of the Root-Associated Plant Growth-Promoting Bacterium Variovorax paradoxus Strain EPS". Genome Announcements. 1 (5): e00843–13. doi:10.1128/genomeA.00843-13. ISSN 2169-8287. PMC 3813184. PMID 24158554.
  8. ^ a b Brandt, Ulrike; Hiessl, Sebastian; Schuldes, Jörg; Thürmer, Andrea; Wübbeler, Jan Hendrik; Daniel, Rolf; Steinbüchel, Alexander (2014-11-01). "Genome-guided insights into the versatile metabolic capabilities of the mercaptosuccinate-utilizing β-proteobacterium Variovorax paradoxus strain B4". Environmental Microbiology. 16 (11): 3370–3386. doi:10.1111/1462-2920.12340. ISSN 1462-2920. PMID 24245581.
  9. ^ a b Wübbeler, Jan Hendrik; Hiessl, Sebastian; Meinert, Christina; Poehlein, Anja; Schuldes, Jörg; Daniel, Rolf; Steinbüchel, Alexander (2015-09-10). "The genome of Variovorax paradoxus strain TBEA6 provides new understandings for the catabolism of 3,3′-thiodipropionic acid and hence the production of polythioesters". Journal of Biotechnology. 209: 85–95. doi:10.1016/j.jbiotec.2015.06.390. PMID 26073999.
  10. ^ a b c Schmalenberger, Achim; Hodge, Sarah; Bryant, Anna; Hawkesford, Malcolm J.; Singh, Brajesh K.; Kertesz, Michael A. (2008-06-01). "The role of Variovorax and other Comamonadaceae in sulfur transformations by microbial wheat rhizosphere communities exposed to different sulfur fertilization regimes". Environmental Microbiology. 10 (6): 1486–1500. doi:10.1111/j.1462-2920.2007.01564.x. ISSN 1462-2920. PMID 18279342.
  11. ^ Kamagata, Y.; Fulthorpe, R. R.; Tamura, K.; Takami, H.; Forney, L. J.; Tiedje, J. M. (1997-06-01). "Pristine environments harbor a new group of oligotrophic 2,4-dichlorophenoxyacetic acid-degrading bacteria". Applied and Environmental Microbiology. 63 (6): 2266–2272. doi:10.1128/AEM.63.6.2266-2272.1997. ISSN 0099-2240. PMC 168519. PMID 9172346.
  12. ^ Belimov, Andrey A.; Dodd, Ian C.; Hontzeas, Nikos; Theobald, Julian C.; Safronova, Vera I.; Davies, William J. (2009-01-01). "Rhizosphere bacteria containing 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase increase yield of plants grown in drying soil via both local and systemic hormone signalling". New Phytologist. 181 (2): 413–423. doi:10.1111/j.1469-8137.2008.02657.x. ISSN 1469-8137. PMC 2688299. PMID 19121036.
  13. ^ Lee, J.; Lee, C. S.; Hugunin, K. M.; Maute, C. J.; Dysko, R. C. (2010-09-01). "Bacteria from drinking water supply and their fate in gastrointestinal tracts of germ-free mice: a phylogenetic comparison study". Water Research. 44 (17): 5050–5058. doi:10.1016/j.watres.2010.07.027. ISSN 1879-2448. PMID 20705313.
  14. ^ Gao, Weimin; Gentry, Terry J.; Mehlhorn, Tonia L.; Carroll, Susan L.; Jardine, Philip M.; Zhou, Jizhong (2010-01-26). "Characterization of Co(III) EDTA-Reducing Bacteria in Metal- and Radionuclide-Contaminated Groundwater". Geomicrobiology Journal. 27 (1): 93–100. doi:10.1080/01490450903408112. ISSN 0149-0451. S2CID 12830074.
  15. ^ Haaijer, Suzanne C. M.; Harhangi, Harry R.; Meijerink, Bas B.; Strous, Marc; Pol, Arjan; Smolders, Alfons J. P.; Verwegen, Karin; Jetten, Mike S. M.; Op den Camp, Huub J. M. (2008-12-01). "Bacteria associated with iron seeps in a sulfur-rich, neutral pH, freshwater ecosystem". The ISME Journal. 2 (12): 1231–1242. doi:10.1038/ismej.2008.75. ISSN 1751-7370. PMID 18754044.
  16. ^ a b Northup, Diana E.; Barns, Susan M.; Yu, Laura E.; Spilde, Michael N.; Schelble, Rachel T.; Dano, Kathleen E.; Crossey, Laura J.; Connolly, Cynthia A.; Boston, Penelope J. (2003-11-01). "Diverse microbial communities inhabiting ferromanganese deposits in Lechuguilla and Spider Caves". Environmental Microbiology. 5 (11): 1071–1086. doi:10.1046/j.1462-2920.2003.00500.x. ISSN 1462-2912. PMID 14641587.
  17. ^ a b Wang, Yu Ping; Gu, Ji-Dong (2006-08-01). "Degradability of dimethyl terephthalate by Variovorax paradoxus T4 and Sphingomonas yanoikuyae DOS01 isolated from deep-ocean sediments". Ecotoxicology (London, England). 15 (6): 549–557. doi:10.1007/s10646-006-0093-1. ISSN 0963-9292. PMID 16955363. S2CID 7797546.
  18. ^ a b c Piotrowska-Seget, Z.; Cycoń, M.; Kozdrój, J. (2005-03-01). "Metal-tolerant bacteria occurring in heavily polluted soil and mine spoil". Applied Soil Ecology. 28 (3): 237–246. doi:10.1016/j.apsoil.2004.08.001.
  19. ^ Battaglia-Brunet, Fabienne; Itard, Yann; Garrido, Francis; Delorme, Fabian; Crouzet, Catherine; Greffié, Catherine; Joulian, Catherine (2006-07-01). "A Simple Biogeochemical Process Removing Arsenic from a Mine Drainage Water". Geomicrobiology Journal. 23 (3–4): 201–211. doi:10.1080/01490450600724282. ISSN 0149-0451. S2CID 98629098.
  20. ^ Vukanti, R.; Crissman, M.; Leff, L. G.; Leff, A. A. (2009-06-01). "Bacterial communities of tyre monofill sites: growth on tyre shreds and leachate". Journal of Applied Microbiology. 106 (6): 1957–1966. doi:10.1111/j.1365-2672.2009.04157.x. ISSN 1365-2672. PMID 19239530.
  21. ^ Ciok, Anna; Dziewit, Lukasz; Grzesiak, Jakub; Budzik, Karol; Gorniak, Dorota; Zdanowski, Marek K.; Bartosik, Dariusz (2016-04-01). "Identification of miniature plasmids in psychrophilic Arctic bacteria of the genus Variovorax". FEMS Microbiology Ecology. 92 (4): fiw043. doi:10.1093/femsec/fiw043. ISSN 1574-6941. PMID 26917781.
  22. ^ Belimov, Andrey A.; Dodd, Ian C.; Hontzeas, Nikos; Theobald, Julian C.; Safronova, Vera I.; Davies, William J. (2009-01-01). "Rhizosphere bacteria containing 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase increase yield of plants grown in drying soil via both local and systemic hormone signalling". The New Phytologist. 181 (2): 413–423. doi:10.1111/j.1469-8137.2008.02657.x. ISSN 1469-8137. PMC 2688299. PMID 19121036.
  23. ^ Leadbetter, Jared R.; Greenberg, E. P. (2000-12-15). "Metabolism of Acyl-Homoserine Lactone Quorum-Sensing Signals by Variovorax paradoxus". Journal of Bacteriology. 182 (24): 6921–6926. doi:10.1128/JB.182.24.6921-6926.2000. ISSN 0021-9193. PMC 94816. PMID 11092851.
  24. ^ Chen, Fang; Gao, Yuxin; Chen, Xiaoyi; Yu, Zhimin; Li, Xianzhen (2013-08-26). "Quorum Quenching Enzymes and Their Application in Degrading Signal Molecules to Block Quorum Sensing-Dependent Infection". International Journal of Molecular Sciences. 14 (9): 17477–17500. doi:10.3390/ijms140917477. ISSN 1422-0067. PMC 3794736. PMID 24065091.
  25. ^ a b Macur, Richard E.; Jackson, Colin R.; Botero, Lina M.; Mcdermott, Timothy R.; Inskeep, William P. (2003-11-27). "Bacterial Populations Associated with the Oxidation and Reduction of Arsenic in an Unsaturated Soil". Environmental Science & Technology. 38 (1): 104–111. Bibcode:2004EnST...38..104M. doi:10.1021/es034455a. PMID 14740724.
  26. ^ Bahar, Md Mezbaul; Megharaj, Mallavarapu; Naidu, Ravi (2013-11-15). "Kinetics of arsenite oxidation by Variovorax sp. MM-1 isolated from a soil and identification of arsenite oxidase gene". Journal of Hazardous Materials. 262: 997–1003. doi:10.1016/j.jhazmat.2012.11.064. PMID 23290483.
  27. ^ Yang, Weihong; Zhang, Zhen; Zhang, Zhongming; Chen, Hong; Liu, Jin; Ali, Muhammad; Liu, Fan; Li, Lin (2013). "Population Structure of Manganese-Oxidizing Bacteria in Stratified Soils and Properties of Manganese Oxide Aggregates under Manganese–Complex Medium Enrichment". PLOS ONE. 8 (9): e73778. Bibcode:2013PLoSO...873778Y. doi:10.1371/journal.pone.0073778. PMC 3772008. PMID 24069232.
  28. ^ Nogueira, M. A.; Nehls, U.; Hampp, R.; Poralla, K.; Cardoso, E. J. B. N. (2007-08-28). "Mycorrhiza and soil bacteria influence extractable iron and manganese in soil and uptake by soybean". Plant and Soil. 298 (1–2): 273–284. doi:10.1007/s11104-007-9379-1. ISSN 0032-079X. S2CID 43420007.
  29. ^ Kamijo, Manjiroh; Suzuki, Tohru; Kawai, Keiichi; Murase, Hironobu (1998-01-01). "Accumulation of yttrium by Variovorax paradoxus". Journal of Fermentation and Bioengineering. 86 (6): 564–568. doi:10.1016/S0922-338X(99)80007-5.
  30. ^ Belimov, A. A.; Hontzeas, N.; Safronova, V. I.; Demchinskaya, S. V.; Piluzza, G.; Bullitta, S.; Glick, B. R. (2005-02-01). "Cadmium-tolerant plant growth-promoting bacteria associated with the roots of Indian mustard (Brassica juncea L. Czern.)". Soil Biology and Biochemistry. 37 (2): 241–250. doi:10.1016/j.soilbio.2004.07.033.
  31. ^ Malkoc, Semra; Kaynak, Elif; Guven, Kıymet (2015-07-27). "Biosorption of zinc(II) on dead and living biomass of Variovorax paradoxus and Arthrobacter viscosus". Desalination and Water Treatment. 57 (33): 15445–15454. doi:10.1080/19443994.2015.1073181. ISSN 1944-3994.
  32. ^ Abou-Shanab, R. a. I.; van Berkum, P.; Angle, J. S. (2007-06-01). "Heavy metal resistance and genotypic analysis of metal resistance genes in gram-positive and gram-negative bacteria present in Ni-rich serpentine soil and in the rhizosphere of Alyssum murale". Chemosphere. 68 (2): 360–367. Bibcode:2007Chmsp..68..360A. doi:10.1016/j.chemosphere.2006.12.051. ISSN 0045-6535. PMID 17276484.
  33. ^ Vandamme, Peter; Coenye, Tom (2004-11-01). "Taxonomy of the genus Cupriavidus: a tale of lost and found". International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 54 (Pt 6): 2285–2289. doi:10.1099/ijs.0.63247-0. ISSN 1466-5026. PMID 15545472.
  34. ^ a b c d Jamieson, W David; Pehl, Michael J; Gregory, Glenn A; Orwin, Paul M (2009-06-12). "Coordinated surface activities in Variovorax paradoxus EPS". BMC Microbiology. 9 (1): 124. doi:10.1186/1471-2180-9-124. PMC 2704215. PMID 19523213.
  35. ^ a b Pehl, Michael J.; Jamieson, William David; Kong, Karen; Forbester, Jessica L.; Fredendall, Richard J.; Gregory, Glenn A.; McFarland, Jacob E.; Healy, Jessica M.; Orwin, Paul M. (2012). "Genes That Influence Swarming Motility and Biofilm Formation in Variovorax paradoxus EPS". PLOS ONE. 7 (2): e31832. Bibcode:2012PLoSO...731832P. doi:10.1371/journal.pone.0031832. PMC 3283707. PMID 22363744.

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Variovorax paradoxus: Brief Summary ( 英語 )

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Variovorax paradoxus is a gram negative, beta proteobacterium from the genus Variovorax. Strains of V. paradoxus can be categorized into two groups, hydrogen oxidizers and heterotrophic strains, both of which are aerobic. The genus name Vario-vorax (various-voracious; devouring a variety of substrates) and species name para-doxus (contrary-opinion) reflects both the dichotomy of V. paradoxus metabolisms, but also its ability to utilize a wide array of organic compounds.

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Variovorax paradoxus ( 法語 )

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Variovorax paradoxus est une bactérie à Gram négatif appartenant au genre Variovorax du phylum des Proteobacteria. Elle a été reclassifiée dans le genre Variovorax par Willems et ses collaborateurs en 1991 et était auparavant désignée sous le nom de Alcaligenes paradoxus[1].

Les souches de V. paradoxus peuvent être catégorisées en deux groupes : les oxydants d'hydrogène et les souches hétérotrophes, les deux étant aérobies[2].

Étymologie[1]

Le nom de l'espèce paradoxus est issu du préfixe grec para- qui signifie "contraire à" et du nom grec doxa qui signifie "opinion" ; ainsi le nom paradoxus, "contraire à ce qui est attendu", se réfère au métabolisme organotrophe et également chimiolithotrophe facultatif de cet organisme. Ce nom d'espèce fait également redondance avec le nom de genre Variovorax ("divers-vorace"), qui signifie "dévorant des substrats variés". Ces deux noms reflètent la dichotomie des métabolismes de l'espèce, mais aussi sa capacité à utiliser une large gamme de substrats organiques.

Morphologie et physiologie

Les cellules de Variovorax paradoxus ont une forme de bâtonnet courbé, de taille moyenne 0,3-0,6 × {displaystyle imes } 	imes 0,7-3,0 µm et se trouvent généralement en cellules individuelles ou en paires. Généralement, les cellules possèdent de 1 à 3 flagelles péritriches dégénérés. Les colonies de V. paradoxus ont une couleur jaune-vert, due à la production de pigments caroténoïdes, et ont souvent un éclat iridescent[3]. La forme des colonies est habituellement convexe, ronde et lisse, mais peut aussi montrer des bords plats et ondulés[1]. V. paradoxus a une croissance optimale à 30 °C dans la plupart des milieux de culture, dont le M9-glucose. Sur des plaques d'agar nutritif et d'agar M9-glucose, les colonies prennent 24 à 48 h pour grossir de quelques millimètres.

Le pantothénate constitue la source de carbone caractéristique utilisée par V. paradoxus ; c'est l'utilisation de cette seule source de carbone qui a mené à l'isolation de la première souche connue de V. paradoxus[2]. Des polyhydroxyalcanoates (PHA), dont le poly-3-hydroxybutyrate (3-PHB), sont stockés à l'intérieur des cellules de cette bactérie lorsque le carbone est abondant et que les autres facteurs environnementaux limitent la croissance[2],[3],[4].

Génome

Les génomes de quatre souches de Variovorax paradoxus ont été séquencés : S110[5], EPS[6], B4[7] et TBEA6[8]. La souche S110 a été isolée de l'intérieur d'une plante de pomme de terre et a été identifiée comme pouvant dégrader les N-acyl homosérines-lactones (AHL). Cette souche a deux chromosomes (de respectivement 5,63 et 1,13 Mb), un taux de GC de 67,4% et un nombre prédit de 6 279 cadres ouverts de lecture (ORF)[5]. La souche EPS a été isolée d'une communauté microbienne de la rhizosphère du tournesol (Helianthus annuus), et on l'a étudiée initialement pour sa motilité. Elle possède un chromosome (6,65 Mb), un taux de GC de 66,48% et un total de 6 008 gènes identifiés[6]. Les génomes des souches B4 et TBEA6 ont été séquencés avec un intérêt spécifique pour mieux comprendre les capacités des souches à dégrader respectivement le mercaptosuccinate et le 3,3-thiodipropanoate[7],[8].

Occurrence

Bactérie ubiquitaire, Variovorax paradoxus a été isolée depuis une large gamme d'environnements dont le sol[9],[10], la rhizosphère de plusieurs espèces de plantes[5],[9],[11], l'eau potable[12], les eaux souterraines[13], les suintements de fer d'eau douce[14], les dépôts de ferromanganèse des écosystèmes de cavernes carbonatées[15], les sédiments marins profonds[16], les déblais de mines d'argent[17], l'eau de drainage de mine d'argent-arsénopyrite[18], le lixiviat de pneus en caoutchouc[19] et la neige de surface[20]. Variovorax paradoxus est particulièrement abondante dans de nombreux environnements qui sont contaminés avec des composés organiques récalcitrants ou des métaux lourds. Elle est également communément trouvée dans les communautés microbiennes des rhizosphères de plantes et constitue une bactérie favorisant la croissance des plantes bien connue des chercheurs. C'est dans ces deux types d'environnements que V. paradoxus a été le plus intensément étudiée[3].

Rôle dans l'environnement

Les diverses capacités métaboliques de Variovorax paradoxus lui permettent de dégrader une large gamme de polluants organiques persistants tels que le 2,4-dinitrotoluène, les polycarbonates aliphatiques et les polychlorobiphényles. On a suggéré des applications en biotechnologies pour ses capacités à la fois cataboliques et anaboliques, comme neutraliser ou dégrader des polluants dans des sites contaminés[3].

Le rôle de V. paradoxus dans la rhizosphère des racines de plantes et dans le sol environnant a été étudié chez plusieurs espèces de plantes, ce qui a impliqué des mécanismes favorisant la croissance tels que la réduction du stress chez les plantes, l'augmentation de la disponibilité en nutriments et l'inhibition de la croissance de pathogènes de plantes ; plusieurs de ces mécanismes sont liés aux capacités cataboliques de l'espèce[5]. Dans la rhizosphère des pois cultivés (Pisum sativum), on a montré que V. paradoxus peut accroître à la fois la croissance et le rendement en dégradant la molécule précurseure de l'éthylène appelée 1-aminocyclopropane-1-carboxylate (ACC), en sécrétant une ACC désaminase[11]. Les souches de V. paradoxus ont été également identifiées comme pouvant dégrader les AHL, qui sont des molécules microbiennes de transduction du signal impliquées dans le quorum sensing[21]. On a émis l'hypothèse que cette capacité pouvait fournir à la plante-hôte une protection contre des infections par des pathogènes, via le quorum quenching qui réduit la virulence des souches pathogènes présentes[22].

V. paradoxus est impliquée dans le recyclage de nombreux éléments inorganiques dont l'arsenic[23],[24], le soufre[9], le manganèse[25],[26] et des éléments terrestres rares[27], dans une variété d'environnements de sols, d'eaux douces et géologiques. Dans le cas de l'arsenic, on pense que l'oxydation par cette bactérie de l'As(III) en As(IV) constitue un mécanisme de détoxification[23]. V. paradoxus a été trouvée dans une variété d'environnements rocheux dont les cavernes carbonées, les déblais de mines et les sédiments marins profonds, mais le rôle de cet organisme au sein de ces environnements est largement sous-étudié[15],[16],[17]. L'espèce est également tolérante à un large nombre de métaux lourds comme le cadmium[28], le chrome, le cobalt, le cuivre, le plomb, le mercure, le nickel, l'argent[17] et le zinc[29], à des concentrations de l'ordre du mM[30]. Malgré tout, on connaît peu de choses sur les adaptations physiologiques que la bactérie utilise pour avoir cette tolérance. Le génome séquencé de la souche endophyte S110 donne certains indices à propos de cette tolérance aux métaux en identifiant une machinerie moléculaire-clé prenant en charge les métaux comme le complexe arsenic réductase ArsRBC, les ATPases de type P1 transporteuses de métaux et un système d'efflux antiporteur chimioosmotique similaire au complexe CzcCBA de Cupriavidus metallidurans[5]. Les espèces de Cupriavidus, comme C. metallidurans, sont bien caractérisées dans le domaine des interactions microbe-métal, et appartiennent au même ordre (Burkholderiales) que Variovorax paradoxus. Les deux espèces C. necator et C. metallidurans (lorsqu'elle n'étaient pas distinguées comme deux espèces différentes) étaient originellement classifiées dans le genre Alcaligenes avec V. paradoxus (Alcaligenes eutrophus et Alcaligenes paradoxus)[2],[31]. Cette relation avec d'autres espèces résistantes aux métaux lourds peut aider à expliquer en partie l'histoire évolutive de la tolérance aux métaux de V. paradoxus.

Motilité et formation de biofilms

Vidéo en time-lapse de la souche EPS de Variovorax paradoxus essaimant sur du milieu FW-succinate-NH4Cl, prise 18 h après inoculation ; intervalles de temps de 2 h entre chaque prise de vue, 3 m entre les cadres.

On a montré que la souche EPS de V. variovorax était capable d'essaimer et de former des biofilms[32],[33]. Jamieson et ses collaborateurs ont démontré que modifier les sources de carbone et d'azote fournies par l'agar des essaims entraînait une variation de la taille et de la morphologie de la colonie des essaims[32]. Des études de mutagénèse ont révélé que la capacité de V. paradoxus à essaimer est largement dépendante d'un gène impliqué dans la production de surfactant, un composant de pili de type IV, et un système ShkRS à deux composants[33]. Des biofilms denses de V. paradoxus peuvent être cultivés en milieu M9 avec des sources de carbone incluant le d-sorbitol, le glucose, l'acide malique, le mannitol et le saccharose, et les acides casamino. On a supposé que la production d'exopolysaccharide était un facteur de contrôle dans la formation de biofilm. Les biofilms de V. paradoxus ont une morphologie en nid d'abeilles, de même que beaucoup d'autres espèces de bactéries formant des biofilms[32].

Voir aussi

Notes

  • (en) Cet article est partiellement ou en totalité issu de l’article de Wikipédia en anglais intitulé .

Références

  1. a b et c A. Willems, J. De Ley, M. Gillis et K. Kersters, « NOTES: Comamonadaceae, a New Family Encompassing the Acidovorans rRNA Complex, Including Variovorax paradoxus gen. nov., comb. nov., for Alcaligenes paradoxus (Davis 1969) », International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol. 41, no 3,‎ 1991, p. 445–450 (DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  2. a b c et d DIANA H. DAVIS, MICHAEL DOUDOROFF, ROGER Y. STANIER et MANLEY MANDEL, « Proposal to reject the genus Hydrogenomonas: Taxonomic implications », International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol. 19, no 4,‎ 1969, p. 375–390 (DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  3. a b c et d Barbara Satola, Jan Hendrik Wübbeler et Alexander Steinbüchel, « Metabolic characteristics of the species Variovorax paradoxus », Applied Microbiology and Biotechnology, vol. 97, no 2,‎ janvier 2013, p. 541–560 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  4. (en) T. Maskow et W. Babel, « A calorimetrically based method to convert toxic compounds into poly-3-hydroxybutyrate and to determine the efficiency and velocity of conversion », Applied Microbiology and Biotechnology, vol. 55, no 2,‎ 1er mars 2001, p. 234–238 (ISSN et , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  5. a b c d et e Jong-In Han, Hong-Kyu Choi, Seung-Won Lee et Paul M. Orwin, « Complete genome sequence of the metabolically versatile plant growth-promoting endophyte Variovorax paradoxus S110 », Journal of Bacteriology, vol. 193, no 5,‎ mars 2011, p. 1183–1190 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  6. a et b Jong-In Han, Jim C. Spain, Jared R. Leadbetter et Galina Ovchinnikova, « Genome of the Root-Associated Plant Growth-Promoting Bacterium Variovorax paradoxus Strain EPS », Genome Announcements, vol. 1, no 5,‎ 24 octobre 2013 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  7. a et b (en) Ulrike Brandt, Sebastian Hiessl, Jörg Schuldes et Andrea Thürmer, « Genome-guided insights into the versatile metabolic capabilities of the mercaptosuccinate-utilizing β-proteobacterium Variovorax paradoxus strain B4 », Environmental Microbiology, vol. 16, no 11,‎ 1er novembre 2014, p. 3370–3386 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  8. a et b « The genome of Variovorax paradoxus strain TBEA6 provides new understandings for the catabolism of 3,3′-thiodipropionic acid and hence the production of polythioesters », Journal of Biotechnology, vol. 209,‎ 10 septembre 2015, p. 85–95 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  9. a b et c Achim Schmalenberger, Sarah Hodge, Anna Bryant et Malcolm J. Hawkesford, « The role of Variovorax and other Comamonadaceae in sulfur transformations by microbial wheat rhizosphere communities exposed to different sulfur fertilization regimes », Environmental Microbiology, vol. 10, no 6,‎ juin 2008, p. 1486–1500 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  10. Y. Kamagata, R. R. Fulthorpe, K. Tamura et H. Takami, « Pristine environments harbor a new group of oligotrophic 2,4-dichlorophenoxyacetic acid-degrading bacteria », Applied and Environmental Microbiology, vol. 63, no 6,‎ juin 1997, p. 2266–2272 (ISSN , PMID , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  11. a et b Andrey A. Belimov, Ian C. Dodd, Nikos Hontzeas et Julian C. Theobald, « Rhizosphere bacteria containing 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase increase yield of plants grown in drying soil via both local and systemic hormone signalling », The New Phytologist, vol. 181, no 2,‎ janvier 2009, p. 413–423 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  12. J. Lee, C. S. Lee, K. M. Hugunin et C. J. Maute, « Bacteria from drinking water supply and their fate in gastrointestinal tracts of germ-free mice: a phylogenetic comparison study », Water Research, vol. 44, no 17,‎ septembre 2010, p. 5050–5058 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  13. Weimin Gao, Terry J. Gentry, Tonia L. Mehlhorn et Susan L. Carroll, « Characterization of Co(III) EDTA-Reducing Bacteria in Metal- and Radionuclide-Contaminated Groundwater », Geomicrobiology Journal, vol. 27, no 1,‎ 26 janvier 2010, p. 93–100 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  14. Suzanne C. M. Haaijer, Harry R. Harhangi, Bas B. Meijerink et Marc Strous, « Bacteria associated with iron seeps in a sulfur-rich, neutral pH, freshwater ecosystem », The ISME journal, vol. 2, no 12,‎ décembre 2008, p. 1231–1242 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  15. a et b Diana E. Northup, Susan M. Barns, Laura E. Yu et Michael N. Spilde, « Diverse microbial communities inhabiting ferromanganese deposits in Lechuguilla and Spider Caves », Environmental Microbiology, vol. 5, no 11,‎ novembre 2003, p. 1071–1086 (ISSN , PMID , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  16. a et b Yu Ping Wang et Ji-Dong Gu, « Degradability of dimethyl terephthalate by Variovorax paradoxus T4 and Sphingomonas yanoikuyae DOS01 isolated from deep-ocean sediments », Ecotoxicology (London, England), vol. 15, no 6,‎ août 2006, p. 549–557 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  17. a b et c « Metal-tolerant bacteria occurring in heavily polluted soil and mine spoil », Applied Soil Ecology, vol. 28, no 3,‎ 1er mars 2005, p. 237–246 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  18. Fabienne Battaglia-Brunet, Yann Itard, Francis Garrido et Fabian Delorme, « A Simple Biogeochemical Process Removing Arsenic from a Mine Drainage Water », Geomicrobiology Journal, vol. 23, nos 3-4,‎ 1er juillet 2006, p. 201–211 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  19. R. Vukanti, M. Crissman, L. G. Leff et A. A. Leff, « Bacterial communities of tyre monofill sites: growth on tyre shreds and leachate », Journal of Applied Microbiology, vol. 106, no 6,‎ juin 2009, p. 1957–1966 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  20. Anna Ciok, Lukasz Dziewit, Jakub Grzesiak et Karol Budzik, « Identification of miniature plasmids in psychrophilic Arctic bacteria of the genus Variovorax », FEMS microbiology ecology, vol. 92, no 4,‎ avril 2016, fiw043 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  21. J. R. Leadbetter et E. P. Greenberg, « Metabolism of acyl-homoserine lactone quorum-sensing signals by Variovorax paradoxus », Journal of Bacteriology, vol. 182, no 24,‎ décembre 2000, p. 6921–6926 (ISSN , PMID , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  22. Fang Chen, Yuxin Gao, Xiaoyi Chen et Zhimin Yu, « Quorum quenching enzymes and their application in degrading signal molecules to block quorum sensing-dependent infection », International Journal of Molecular Sciences, vol. 14, no 9,‎ 26 août 2013, p. 17477–17500 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  23. a et b Richard E. Macur, Colin R. Jackson, Lina M. Botero et Timothy R. Mcdermott, « Bacterial Populations Associated with the Oxidation and Reduction of Arsenic in an Unsaturated Soil », Environmental Science & Technology, vol. 38, no 1,‎ 1er janvier 2004, p. 104–111 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  24. « Kinetics of arsenite oxidation by Variovorax sp. MM-1 isolated from a soil and identification of arsenite oxidase gene », Journal of Hazardous Materials, vol. 262,‎ 15 novembre 2013, p. 997–1003 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  25. Weihong Yang, Zhen Zhang, Zhongming Zhang et Hong Chen, « Population structure of manganese-oxidizing bacteria in stratified soils and properties of manganese oxide aggregates under manganese-complex medium enrichment », PloS One, vol. 8, no 9,‎ 2013, e73778 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  26. (en) M. A. Nogueira, U. Nehls, R. Hampp et K. Poralla, « Mycorrhiza and soil bacteria influence extractable iron and manganese in soil and uptake by soybean », Plant and Soil, vol. 298, nos 1-2,‎ 1er septembre 2007, p. 273–284 (ISSN et , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  27. « Accumulation of yttrium by Variovorax paradoxus », Journal of Fermentation and Bioengineering, vol. 86, no 6,‎ 1er janvier 1998, p. 564–568 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  28. « Cadmium-tolerant plant growth-promoting bacteria associated with the roots of Indian mustard (Brassica juncea L. Czern.) », Soil Biology and Biochemistry, vol. 37, no 2,‎ 1er février 2005, p. 241–250 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  29. Semra Malkoc, Elif Kaynak et Kıymet Guven, « Biosorption of zinc(II) on dead and living biomass of Variovorax paradoxus and Arthrobacter viscosus », Desalination and Water Treatment, vol. 57, no 33,‎ 14 juillet 2016, p. 15445–15454 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  30. R. a. I. Abou-Shanab, P. van Berkum et J. S. Angle, « Heavy metal resistance and genotypic analysis of metal resistance genes in gram-positive and gram-negative bacteria present in Ni-rich serpentine soil and in the rhizosphere of Alyssum murale », Chemosphere, vol. 68, no 2,‎ juin 2007, p. 360–367 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  31. Peter Vandamme et Tom Coenye, « Taxonomy of the genus Cupriavidus: a tale of lost and found », International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol. 54, no Pt 6,‎ novembre 2004, p. 2285–2289 (ISSN , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  32. a b et c W. David Jamieson, Michael J. Pehl, Glenn A. Gregory et Paul M. Orwin, « Coordinated surface activities in Variovorax paradoxus EPS », BMC microbiology, vol. 9,‎ 12 juin 2009, p. 124 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)
  33. a et b Michael J. Pehl, William David Jamieson, Karen Kong et Jessica L. Forbester, « Genes that influence swarming motility and biofilm formation in Variovorax paradoxus EPS », PloS One, vol. 7, no 2,‎ 2012, e31832 (ISSN , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 12 décembre 2017)

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Variovorax paradoxus: Brief Summary ( 法語 )

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Variovorax paradoxus est une bactérie à Gram négatif appartenant au genre Variovorax du phylum des Proteobacteria. Elle a été reclassifiée dans le genre Variovorax par Willems et ses collaborateurs en 1991 et était auparavant désignée sous le nom de Alcaligenes paradoxus.

Les souches de V. paradoxus peuvent être catégorisées en deux groupes : les oxydants d'hydrogène et les souches hétérotrophes, les deux étant aérobies.

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