dcsimg

Lifespan, longevity, and ageing

fornì da AnAge articles
Observations: These organisms undergo replicative senescence and, like in Baker's yeast (*Saccharomyces cerevisiae*), it is possible to measure chronological and replicative lifespan.
licensa
cc-by-3.0
drit d'autor
Joao Pedro de Magalhaes
editor
de Magalhaes, J. P.
sit compagn
AnAge articles

Schizosaccharomyces pombe ( Alman )

fornì da wikipedia DE

Schizosaccharomyces pombe ist eine Spalthefe, d. h. ein Hefepilz, der sich nicht durch Sprossung (Knospung), sondern durch Teilung der Zelle in zwei Hälften („Spaltung“) vermehrt. Es handelt sich um einen stäbchenförmigen einzelligen Eukaryoten, der in der Molekular- und Zellbiologie häufig als Modellorganismus verwendet wird.[1]

Geschichte

Aus ostafrikanischem Hirsebier isolierte Paul Lindner 1893 am Institut für Gärungsgewerbe diese Spalthefe. Der Name S. pombe stammt vom Swahili-Wort für Bier (Pombe).

Als ein Modellorganismus in der Zellbiologie wurde es von Murdoch Mitchison in den 1950er Jahren eingeführt. Der britische Biochemiker Paul Nurse erhielt für seine Arbeiten über die Zellzyklusregulation in der Spalthefe im Jahr 2001 zusammen mit Leland H. Hartwell und Tim Hunt den Nobelpreis für Physiologie oder Medizin.

Die Genom-DNA-Sequenz von S. pombe wurde 2002 publiziert.[2]

2006 publizierten Akihisa Matsuyama und Kollegen die subzelluläre Lokalisation aller Proteine.[3]

Varianten

Etwa 160 natürliche Stämme von Schizosaccharomyces pombe sind identifiziert worden, die unter anderem aus Europa, Asien und Amerika stammen. Die Mehrzahl dieser Varianten wurden auf Früchten wie Äpfel und Weintrauben oder in alkoholischen Getränken, wie dem brasilianischen Cachaça, gefunden. Schizosaccharomyces pombe ist auch in fermentiertem Kombucha-Tee enthalten.[4] Es ist nicht bekannt, ob die Hefe maßgeblich an der Fermentation beteiligt ist oder lediglich als Begleiter von aktiveren Mikroorganismen auftritt. Schizosaccharomyces-Hefen sind bislang noch nicht ausgiebig untersucht worden.

Vergleich mit der Backhefe, einer Knospungs-Hefe

 src=
Teilungsstadien von Schizosaccharomyces pombe im Hellfeld und Dunkelfeld betrachtet
  • S. cerevisiae hat ~ 5600 offene Leserahmen, Sch. pombe hat 5054[5]
  • S. cerevisiae hat 16 Chromosomen, Sch. pombe hat 3[5]
  • S. cerevisiae ist normalerweise diploid, während Sch. pombe normalerweise haploid ist
  • S. cerevisiae befindet sich vor allem in der G1-Phase, während Sch. pombe sich vor allem in der G2-Phase befindet.

Literatur

  • Richard Egel: The Molecular Biology of Schizosaccharomyces pombe – Genetics, Genomics and Beyond. Springer, 2004, ISBN 978-3-540-00693-0.

Einzelnachweise

  1. Artikel des Botanischen Instituts der Universität Bonn (Memento vom 11. Juni 2007 im Internet Archive)
  2. V. Wood et al.: The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe. In: Nature. Band 415, Nr. 6874, 21. Februar 2002, ISSN 0028-0836, S. 871–880, doi:10.1038/nature724.
  3. Akihisa Matsuyama et al.: ORFeome cloning and global analysis of protein localization in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. In: Nature Biotechnology. Band 24, Nr. 7, 1. Juli 2006, S. 841–847, doi:10.1038/nbt1222.
  4. Ai Leng Teoh: Yeast ecology of Kombucha fermentation. In: International Journal of Food Microbiology. 95, Nr. 2, September 2004, S. 119–26. doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2003.12.020. PMID 15282124.
  5. a b PomBase Statistik
 title=
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autoren und Herausgeber von Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia DE

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Alman )

fornì da wikipedia DE

Schizosaccharomyces pombe ist eine Spalthefe, d. h. ein Hefepilz, der sich nicht durch Sprossung (Knospung), sondern durch Teilung der Zelle in zwei Hälften („Spaltung“) vermehrt. Es handelt sich um einen stäbchenförmigen einzelligen Eukaryoten, der in der Molekular- und Zellbiologie häufig als Modellorganismus verwendet wird.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autoren und Herausgeber von Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia DE

Schizosaccharomyces pombe ( Anglèis )

fornì da wikipedia EN

Schizosaccharomyces pombe, also called "fission yeast", is a species of yeast used in traditional brewing and as a model organism in molecular and cell biology. It is a unicellular eukaryote, whose cells are rod-shaped. Cells typically measure 3 to 4 micrometres in diameter and 7 to 14 micrometres in length. Its genome, which is approximately 14.1 million base pairs, is estimated to contain 4,970 protein-coding genes and at least 450 non-coding RNAs.[2]

These cells maintain their shape by growing exclusively through the cell tips and divide by medial fission to produce two daughter cells of equal size, which makes them a powerful tool in cell cycle research.

Fission yeast was isolated in 1893 by Paul Lindner from East African millet beer. The species name pombe is the Swahili word for beer. It was first developed as an experimental model in the 1950s: by Urs Leupold for studying genetics,[3][4] and by Murdoch Mitchison for studying the cell cycle.[5][6][7]

Paul Nurse, a fission yeast researcher, successfully merged the independent schools of fission yeast genetics and cell cycle research. Together with Lee Hartwell and Tim Hunt, Nurse won the 2001 Nobel Prize in Physiology or Medicine for their work on cell cycle regulation.

The sequence of the S. pombe genome was published in 2002, by a consortium led by the Sanger Institute, becoming the sixth model eukaryotic organism whose genome has been fully sequenced. S. pombe researchers are supported by the PomBase MOD (model organism database). This has fully unlocked the power of this organism, with many genes orthologous to human genes identified - 70% to date,[8][9] including many genes involved in human disease.[10] In 2006, sub-cellular localization of almost all the proteins in S. pombe was published using green fluorescent protein as a molecular tag.[11]

Schizosaccharomyces pombe has also become an important organism in studying the cellular responses to DNA damage and the process of DNA replication.

Approximately 160 natural strains of S. pombe have been isolated. These have been collected from a variety of locations including Europe, North and South America, and Asia. The majority of these strains have been collected from cultivated fruits such as apples and grapes, or from the various alcoholic beverages, such as Brazilian Cachaça. S. pombe is also known to be present in fermented tea, kombucha.[12] It is not clear at present whether S. pombe is the major fermenter or a contaminant in such brews. The natural ecology of Schizosaccharomyces yeasts is not well-studied.

History

Schizosaccharomyces pombe was first discovered in 1893 when a group working in a Brewery Association Laboratory in Germany was looking at sediment found in millet beer imported from East Africa that gave it an acidic taste. The term schizo, meaning "split" or "fission", had previously been used to describe other Schizosaccharomycetes. The addition of the word pombe was due to its isolation from East African beer, as pombe means "beer" in Swahili. The standard S. pombe strains were isolated by Urs Leupold in 1946 and 1947 from a culture that he obtained from the yeast collection in Delft, The Netherlands. It was deposited there by A. Osterwalder under the name S. pombe var. liquefaciens, after he isolated it in 1924 from French wine (most probably rancid) at the Federal Experimental Station of Vini- and Horticulture in Wädenswil, Switzerland. The culture used by Urs Leupold contained (besides others) cells with the mating types h90 (strain 968), h- (strain 972), and h+ (strain 975). Subsequent to this, there have been two large efforts to isolate S. pombe from fruit, nectar, or fermentations: one by Florenzano et al.[13] in the vineyards of western Sicily, and the other by Gomes et al. (2002) in four regions of southeast Brazil.[14]

Ecology

The fission yeast S. pombe belongs to the divisio Ascomycota, which represents the largest and most diverse group of fungi. Free-living ascomycetes are commonly found in tree exudates, on plant roots and in surrounding soil, on ripe and rotting fruits, and in association with insect vectors that transport them between substrates. Many of these associations are symbiotic or saprophytic, although numerous ascomycetes (and their basidiomycete cousins) represent important plant pathogens that target myriad plant species, including commercial crops. Among the ascomycetous yeast genera, the fission yeast Schizosaccharomyces is unique because of the deposition of α-(1,3)-glucan or pseudonigeran in the cell wall in addition to the better known β-glucans and the virtual lack of chitin. Species of this genus also differ in mannan composition, which shows terminal d-galactose sugars in the side-chains of their mannans. S. pombe undergo aerobic fermentation in the presence of excess sugar.[15] S. pombe can degrade L-malic acid, one of the dominant organic acids in wine, which makes them diverse among other Saccharomyces strains.

Comparison with budding yeast (Saccharomyces cerevisiae)

The yeast species Schizosaccharomyces pombe and Saccharomyces cerevisiae are both extensively studied; these two species diverged approximately 300 to 600 million years before present,[16] and are significant tools in molecular and cellular biology. Some of the technical discriminants between these two species are:

  • S. cerevisiae has approximately 5,600 open reading frames; S. pombe has approximately 5,070 open reading frames.
  • Despite similar gene numbers, S. cerevisiae has only about 250 introns, while S. pombe has nearly 5,000.
  • S. cerevisiae has 16 chromosomes, S. pombe has 3.
  • S. cerevisiae is often diploid while S. pombe is usually haploid.
  • S. pombe has a shelterin-like telomere complex while S. cerevisiae does not.[17]
  • S. cerevisiae is in the G1 phase of the cell cycle for an extended period (as a consequence, G1-S transition is tightly controlled), while S. pombe remains in the G2 phase of the cell cycle for an extended period (as a consequence, G2-M transition is under tight control).
  • Both species share genes with higher eukaryotes that they do not share with each other. S. pombe has RNAi machinery genes like those in vertebrates, while this is missing from S. cerevisiae. S. cerevisiae also has greatly simplified heterochromatin compared to S. pombe.[18] Conversely, S. cerevisiae has well-developed peroxisomes, while S. pombe does not.
  • S. cerevisiae has small point centromere of 125 bp, and sequence-defined replication origins of about the same size. On the converse, S. pombe has large, repetitive centromeres (40–100 kb) more similar to mammalian centromeres, and degenerate replication origins of at least 1kb.

S. pombe pathways and cellular processes

S. pombe gene products (proteins and RNAs) participate in many cellular processes common across all life. The fission yeast GO slim provides a categorical high level overview of the biological role of all S. pombe gene products.[8]

Life cycle

Centrosome of S. pombe.

The fission yeast is a single-celled fungus with simple, fully characterized genome and a rapid growth rate. It has long been used in brewing, baking, and molecular genetics. S. pombe is a rod-shaped cell, approximately 3 μm in diameter, that grows entirely by elongation at the ends. After mitosis, division occurs by the formation of a septum, or cell plate, that cleaves the cell at its midpoint.

The central events of cell reproduction are chromosome duplication, which takes place in S (Synthetic) phase, followed by chromosome segregation and nuclear division (mitosis) and cell division (cytokinesis), which are collectively called M (Mitotic) phase. G1 is the gap between M and S phases, and G2 is the gap between S and M phases. In the fission yeast, the G2 phase is particularly extended, and cytokinesis (daughter-cell segregation) does not happen until a new S (Synthetic) phase is launched.

Fission yeast governs mitosis by mechanisms that are similar to those in multicellular animals. It normally proliferates in a haploid state. When starved, cells of opposite mating types (P and M) fuse to form a diploid zygote that immediately enters meiosis to generate four haploid spores. When conditions improve, these spores germinate to produce proliferating haploid cells.[19]

Cytokinesis

Cytokinesis of the fission yeast.

The general features of cytokinesis are shown here. The site of cell division is determined before anaphase. The anaphase spindle (in green on the figure) is then positioned so that the segregated chromosomes are on opposite sides of the predetermined cleavage plane.

Size control

Cell-cycle length of the fission yeast depends on nutrient conditions.

In fission yeast, where growth governs progression through G2/M, a wee1 mutation causes entry into mitosis at an abnormally small size, resulting in a shorter G2. G1 is lengthened, suggesting that progression through Start (beginning of cell cycle) is responsive to growth when the G2/M control is lost. Furthermore, cells in poor nutrient conditions grow slowly and therefore take longer to double in size and divide. Low nutrient levels also reset the growth threshold so that cell progresses through the cell cycle at a smaller size. Upon exposure to stressful conditions [heat (40 °C) or the oxidizing agent hydrogen peroxide] S. pombe cells undergo aging as measured by increased cell division time and increased probability of cell death.[20] Finally, wee1 mutant fission yeast cells are smaller than wild-type cells, but take just as long to go through the cell cycle. This is possible because small yeast cells grow slower, that is, their added total mass per unit time is smaller than that of normal cells.

A spatial gradient is thought to coordinate cell size and mitotic entry in fission yeast.[21][22][23] The Pom1 protein kinase (green) is localized to the cell cortex, with the highest concentration at the cell tips. The cell-cycle regulators Cdr2, Cdr1 and Wee1 are present in cortical nodes in the middle of the cell (blue and red dots). a, In small cells, the Pom1 gradient reaches most of the cortical nodes (blue dots). Pom1 inhibits Cdr2, preventing Cdr2 and Cdr1 from inhibiting Wee1, and allowing Wee1 to phosphorylate Cdk1, thus inactivating cyclin-dependent kinase (CDK) activity and preventing entry into mitosis. b, In long cells, the Pom1 gradient does not reach the cortical nodes (red dots), and therefore Cdr2 and Cdr1 remain active in the nodes. Cdr2 and Cdr1 inhibit Wee1, preventing phosphorylation of Cdk1 and thereby leading to activation of CDK and mitotic entry. (This simplified diagram omits several other regulators of CDK activity.)

Mating-type switching

Fission yeast switches mating type by a replication-coupled recombination event, which takes place during S phase of the cell cycle. Fission yeast uses intrinsic asymmetry of the DNA replication process to switch the mating type; it was the first system where the direction of replication was shown to be required for the change of the cell type. Studies of the mating-type switching system lead to a discovery and characterization of a site-specific replication termination site RTS1, a site-specific replication pause site MPS1, and a novel type of chromosomal imprint, marking one of the sister chromatids at the mating-type locus mat1. In addition, work on the silenced donor region has led to great advances in understanding formation and maintenance of heterochromatin.[24]

Responses to DNA damage

Schizosaccharomyces pombe is a facultative sexual microorganism that can undergo mating when nutrients are limiting.[25] Exposure of S. pombe to hydrogen peroxide, an agent that causes oxidative stress leading to oxidative DNA damage, strongly induces mating and formation of meiotic spores.[26] This finding suggests that meiosis, and particularly meiotic recombination, may be an adaptation for repairing DNA damage.[26] Supporting this view is the finding that single base lesions of the type dU:dG in the DNA of S. pombe stimulate meiotic recombination.[27] This recombination requires uracil-DNA glycosylase, an enzyme that removes uracil from the DNA backbone and initiates base excision repair. On the basis of this finding, it was proposed that base excision repair of either a uracil base, an abasic site, or a single-strand nick is sufficient to initiate recombination in S. pombe.[27] Other experiments with S. pombe indicated that faulty processing of DNA replication intermediates, i.e. Okazaki fragments, causes DNA damages such as single-strand nicks or gaps, and that these stimulate meiotic recombination.[28]

As a model system

Fission yeast has become a notable model system to study basic principles of a cell that can be used to understand more complex organisms like mammals and in particular humans.[29][30] This single cell eukaryote is nonpathogenic and easily grown and manipulated in the lab.[31][32] Fission yeast contains one of the smallest numbers of genes of a known genome sequence for a eukaryote, and has only three chromosomes in its genome.[33] Many of the genes responsible for cell division and cellular organization in fission yeast cell are also found in the human's genome.[31][32][34] Cell cycle regulation and division are crucial for growth and development of any cell. Fission yeast's conserved genes has been heavily studied and the reason for many recent biomedical developments.[35][36] Fission yeast is also a practical model system to observe cell division because fission yeast's are cylindrically shaped single celled eukaryotes that divide and reproduce by medial fission.[31] This can easily be seen using microscopy. Fission yeast also have an extremely short generation time, 2 to 4 hours, which also makes it an easy model system to observe and grow in the laboratory[32] Fission yeast's simplicity in genomic structure yet similarities with mammalian genome, ease of ability to manipulate, and ability to be used for drug analysis is why fission yeast is making many contributions to biomedicine and cellular biology research, and a model system for genetic analysis.[32][25][30][37][38]

Genome

Schizosaccharomyces pombe is often used to study cell division and growth because of conserved genomic regions also seen in humans including: heterochromatin proteins, large origins of replication, large centromeres, conserved cellular checkpoints, telomere function, gene splicing, and many other cellular processes.[33][39][40] S. pombe's genome was fully sequenced in 2002, the sixth eukaryotic genome to be sequenced as part of the Genome Project. An estimated 4,979 genes were discovered within three chromosomes containing about 14Mb of DNA. This DNA is contained within 3 different chromosomes in the nucleus with gaps in the centromeric (40kb) and telomeric (260kb) regions.[33] After the initial sequencing of the fission yeast's genome, other previous non-sequenced regions of the genes have been sequenced. Structural and functional analysis of these gene regions can be found on large scale fission yeast databases such as PomBase.

Forty-three percent of the genes in the Genome Project were found to contain introns in 4,739 genes. Fission yeast does not have as many duplicated genes compared to budding yeast, only containing 5%, making fission yeast a great model genome to observe and gives researchers the ability to create more functional research approaches. S. pombe's having a large number of introns gives opportunities for an increase of range of protein types produced from alternative splicing and genes that code for comparable genes in human.[33] 81% of the three centromeres in fission yeast have been sequenced. The lengths of the three centromeres were found to be 34, 65, and 110 kb. This is 300–100 times longer than the centromeres of budding yeast. An extremely high level of conservation (97%) is also seen over 1,780-bp region in the DGS regions of the centromere. This elongation of centromeres and its conservative sequences makes fission yeast a practical model system to use to observe cell division and in humans because of their likeness.[33][41][42]

PomBase[8][43] reports over 69% of protein coding genes have human orthologs and over 500 of these are associated with human disease . This makes S. pombe a great system to use to study human genes and disease pathways, especially cell cycle and DNA checkpoint systems.[42][44][45][46]

Genetic diversity

Biodiversity and evolutionary study of fission yeast was carried out on 161 strains of Schizosaccharomyces pombe collected from 20 countries.[47] Modeling of the evolutionary rate showed that all strains derived from a common ancestor that has lived since ~2,300 years ago. The study also identified a set of 57 strains of fission yeast that each differed by ≥1,900 SNPs;,[47] and all detected 57 strains of fission yeast were prototrophic (able to grow on the same minimal medium as the reference strain).[47] A number of studies on S.pombe genome support the idea that the genetic diversity of fission yeast strains is slightly less than budding yeast.[47] Indeed, only limited variations of S.pombe occur in proliferation in different environments. In addition, the amount of phenotypic variation segregating in fission yeast is less than that seen, in S. cerevisiae.[48] Since most strains of fission yeast were isolated from brewed beverages, there is no ecological or historical context to this dispersal.

Cell cycle analysis

DNA replication in yeast has been increasingly studied by many researchers. Further understanding of DNA replication, gene expression, and conserved mechanisms in yeast can provide researchers with information on how these systems operate in mammalian cells in general and human cells in particular.[40][49][50][51] Other stages, such as cellular growth and aging, are also observed in yeast in order to understand these mechanisms in more complex systems.[34][52][53][54]

S. pombe stationary phase cells undergo chronological aging due to production of reactive oxygen species that cause DNA damages. Most such damages can ordinarily be repaired by DNA base excision repair and nucleotide excision repair.[55] Defects in these repair processes lead to reduced survival.

Cytokinesis is one of the components of cell division that is often observed in fission yeast. Well-conserved components of cytokinesis are observed in fission yeast and allow us to look at various genomic scenarios and pinpoint mutations.[45][56][57] Cytokinesis is a permanent step and very crucial to the wellbeing of the cell.[58] Contractile ring formation in particular is heavily studied by researchers using S. pombe as a model system. The contractile ring is highly conserved in both fission yeast and human cytokinesis.[45] Mutations in cytokinesis can result in many malfunctions of the cell including cell death and development of cancerous cells.[45] This is a complex process in human cell division, but in S. pombe simpler experiments can yield results that can then be applied for research in higher-order model systems such as humans.

One of the safety precautions that the cell takes to ensure precise cell division occurs is the cell-cycle checkpoint.[59][60] These checkpoints ensure any mutagens are eliminated.[61] This is done often by relay signals that stimulate ubiquitination of the targets and delay cytokinesis.[33] Without mitotic check points such as these, mutagens are created and replicated, resulting in multitudes of cellular issues including cell death or tumorigenesis seen in cancerous cells. Paul Nurse, Leland Hartwell, and Tim Hunt were awarded the Nobel Prize in Physiology or Medicine in 2001. They discovered key conserved checkpoints that are crucial for a cell to divide properly. These findings have been linked to cancer and diseased cells and are a notable finding for biomedicine.[62]

Researchers using fission yeast as a model system also look at organelle dynamics and responses and the possible correlations between yeast cells and mammalian cells.[63][64] Mitochondria diseases, and various organelle systems such as the Golgi apparatus and endoplasmic reticulum, can be further understood, by observing fission yeast's chromosome dynamics and protein expression levels and regulation.[46][50][65][66][67][68]

Biomedical tool

However, there are limitations with using fission yeast as a model system: its multidrug resistance. "The MDR response involves overexpression of two types of drug efflux pumps, the ATP-binding cassette (ABC) family... and the major facilitator superfamily".[35] Paul Nurse and some of his colleagues have recently created S. pombe strains sensitive to chemical inhibitors and common probes to see whether it is possible to use fission yeast as a model system of chemical drug research.[35]

For example, Doxorubicin, a very common chemotherapeutic antibiotic, has many adverse side-effects. Researchers are looking for ways to further understand how doxorubicin works by observing the genes linked to resistance by using fission yeast as a model system. Links between doxorubicin adverse side-effects and chromosome metabolism and membrane transport were seen. Metabolic models for drug targeting are now being used in biotechnology, and further advances are expected in the future using the fission yeast model system.[36]

Experimental approaches

Fission yeast is easily accessible, easily grown and manipulated to make mutants, and able to be maintained at either a haploid or diploid state. S. pombe is normally a haploid cell but, when put under stressful conditions, usually nitrogen deficiency, two cells will conjugate to form a diploid that later form four spores within a tetrad ascus.[32] This process is easily visible and observable under any microscope and allows us to look at meiosis in a simpler model system to see how this phenomenon operates.

Virtually any genetics experiment or technique can, therefore, be applied to this model system such as: tetrad dissection, mutagens analysis, transformations, and microscopy techniques such as FRAP and FRET. New models, such as Tug-Of-War (gTOW), are also being used to analyze yeast robustness and observe gene expression. Making knock-in and knock-out genes is fairly easy and with the fission yeast's genome being sequenced this task is very accessible and well known.[69][70]

See also

References

  1. ^ "Schizosaccharomyces pombe". Global Biodiversity Information Facility. Retrieved 14 August 2021.
  2. ^ Wilhelm BT, Marguerat S, Watt S, Schubert F, Wood V, Goodhead I, et al. (June 2008). "Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution". Nature. 453 (7199): 1239–43. Bibcode:2008Natur.453.1239W. doi:10.1038/nature07002. PMID 18488015. S2CID 205213499.
  3. ^ Leupold U (1950). "Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe". C R Trav Lab Carlsberg Ser Physiol. 24: 381–480.
  4. ^ Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics. New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press. p 125–128.
  5. ^ Mitchison JM (October 1957). "The growth of single cells. I. Schizosaccharomyces pombe". Experimental Cell Research. 13 (2): 244–62. doi:10.1016/0014-4827(57)90005-8. PMID 13480293.
  6. ^ Mitchison JM (April 1990). "The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe". BioEssays. 12 (4): 189–91. doi:10.1002/bies.950120409. PMID 2185750.
  7. ^ Fantes PA, Hoffman CS (June 2016). "A Brief History of Schizosaccharomyces pombe Research: A Perspective Over the Past 70 Years". Genetics. 203 (2): 621–9. doi:10.1534/genetics.116.189407. PMC 4896181. PMID 27270696.
  8. ^ a b c Wood V, Harris MA, McDowall MD, Rutherford K, Vaughan BW, Staines DM, et al. (January 2012). "PomBase: a comprehensive online resource for fission yeast". Nucleic Acids Research. 40 (Database issue): D695-9. doi:10.1093/nar/gkr853. PMC 3245111. PMID 22039153.
  9. ^ "PomBase".
  10. ^ "PomBase".
  11. ^ Matsuyama A, Arai R, Yashiroda Y, Shirai A, Kamata A, Sekido S, et al. (July 2006). "ORFeome cloning and global analysis of protein localization in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe". Nature Biotechnology. 24 (7): 841–7. doi:10.1038/nbt1222. PMID 16823372. S2CID 10397608.
  12. ^ Teoh AL, Heard G, Cox J (September 2004). "Yeast ecology of Kombucha fermentation". International Journal of Food Microbiology. 95 (2): 119–26. doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2003.12.020. PMID 15282124.
  13. ^ Florenzano G, Balloni W, Materassi R (1977). "Contributo alla ecologia dei lieviti Schizosaccharomyces sulle uve". Vitis. 16: 38–44.
  14. ^ Gómez EB, Bailis JM, Forsburg SL (2002). "Fission yeast enters a joyful new era". Genome Biology. 3 (6): REPORTS4017. doi:10.1186/gb-2002-3-6-reports4017. PMC 139370. PMID 12093372.
  15. ^ Lin Z, Li WH (April 2011). "The evolution of aerobic fermentation in Schizosaccharomyces pombe was associated with regulatory reprogramming but not nucleosome reorganization". Molecular Biology and Evolution. 28 (4): 1407–13. doi:10.1093/molbev/msq324. PMC 3058771. PMID 21127171.
  16. ^ Douzery EJ, Snell EA, Bapteste E, Delsuc F, Philippe H (October 2004). "The timing of eukaryotic evolution: does a relaxed molecular clock reconcile proteins and fossils?". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (43): 15386–91. Bibcode:2004PNAS..10115386D. doi:10.1073/pnas.0403984101. PMC 524432. PMID 15494441.
  17. ^ Price CM, Boltz KA, Chaiken MF, Stewart JA, Beilstein MA, Shippen DE (August 2010). "Evolution of CST function in telomere maintenance". Cell Cycle. 9 (16): 3157–65. doi:10.4161/cc.9.16.12547. PMC 3041159. PMID 20697207.
  18. ^ Grunstein, Michael, and Susan Gasser. "Epigenetics in Saccharomyces cerevisiae." Epigenetics. 1. Cold Spring Harbor Press, 2007.
  19. ^ Morgan, David O. (2007). The Cell Cycle Principles of Control. London: New Science Press. ISBN 978-0-19-920610-0. OCLC 70173205.
  20. ^ Coelho M, Dereli A, Haese A, Kühn S, Malinovska L, DeSantis ME, et al. (October 2013). "Fission yeast does not age under favorable conditions, but does so after stress". Current Biology. 23 (19): 1844–52. doi:10.1016/j.cub.2013.07.084. PMC 4620659. PMID 24035542.
  21. ^ Moseley, James B.; Mayeux, Adeline; Paoletti, Anne; Nurse, Paul (2009). "A spatial gradient coordinates cell size and mitotic entry in fission yeast". Nature. 459 (7248): 857–860. Bibcode:2009Natur.459..857M. doi:10.1038/nature08074. ISSN 1476-4687. PMID 19474789. S2CID 4330336.
  22. ^ Martin, Sophie G.; Berthelot-Grosjean, Martine (2009-06-11). "Polar gradients of the DYRK-family kinase Pom1 couple cell length with the cell cycle". Nature. 459 (7248): 852–856. Bibcode:2009Natur.459..852M. doi:10.1038/nature08054. ISSN 1476-4687. PMID 19474792. S2CID 4412402.
  23. ^ Sawin KE (June 2009). "Cell cycle: Cell division brought down to size". Nature. 459 (7248): 782–3. Bibcode:2009Natur.459..782S. doi:10.1038/459782a. PMID 19516326. S2CID 4402226.
  24. ^ Klar, Amar J.S. (2007-12-01). "Lessons Learned from Studies of Fission Yeast Mating-Type Switching and Silencing". Annual Review of Genetics. 41 (1): 213–236. doi:10.1146/annurev.genet.39.073103.094316. ISSN 0066-4197. PMID 17614787.
  25. ^ a b Davey J (December 1998). "Fusion of a fission yeast". Yeast. 14 (16): 1529–66. doi:10.1002/(SICI)1097-0061(199812)14:16<1529::AID-YEA357>3.0.CO;2-0. PMID 9885154. S2CID 44652765.
  26. ^ a b Bernstein C, Johns V (April 1989). "Sexual reproduction as a response to H2O2 damage in Schizosaccharomyces pombe". Journal of Bacteriology. 171 (4): 1893–7. doi:10.1128/jb.171.4.1893-1897.1989. PMC 209837. PMID 2703462.
  27. ^ a b Pauklin S, Burkert JS, Martin J, Osman F, Weller S, Boulton SJ, et al. (May 2009). "Alternative induction of meiotic recombination from single-base lesions of DNA deaminases". Genetics. 182 (1): 41–54. doi:10.1534/genetics.109.101683. PMC 2674839. PMID 19237686.
  28. ^ Farah JA, Cromie G, Davis L, Steiner WW, Smith GR (December 2005). "Activation of an alternative, rec12 (spo11)-independent pathway of fission yeast meiotic recombination in the absence of a DNA flap endonuclease". Genetics. 171 (4): 1499–511. doi:10.1534/genetics.105.046821. PMC 1456079. PMID 16118186.
  29. ^ Forsburg SL (June 2005). "The yeasts Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe: models for cell biology research". Gravitational and Space Biology Bulletin. 18 (2): 3–9. PMID 16038088.
  30. ^ a b Forsburg SL, Rhind N (February 2006). "Basic methods for fission yeast". Yeast. 23 (3): 173–83. doi:10.1002/yea.1347. PMC 5074380. PMID 16498704.
  31. ^ a b c Wixon J (2002). "Featured organism: Schizosaccharomyces pombe, the fission yeast". Comparative and Functional Genomics. 3 (2): 194–204. doi:10.1002/cfg.92. PMC 2447254. PMID 18628834.
  32. ^ a b c d e Forsburg SL. "PombeNet". Retrieved 7 February 2016.
  33. ^ a b c d e f Wood V, Gwilliam R, Rajandream MA, Lyne M, Lyne R, Stewart A, et al. (February 2002). "The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe". Nature. 415 (6874): 871–80. Bibcode:2002Natur.415..871W. doi:10.1038/nature724. PMID 11859360.
  34. ^ a b Das M, Wiley DJ, Medina S, Vincent HA, Larrea M, Oriolo A, Verde F (June 2007). "Regulation of cell diameter, For3p localization, and cell symmetry by fission yeast Rho-GAP Rga4p". Molecular Biology of the Cell. 18 (6): 2090–101. doi:10.1091/mbc.E06-09-0883. PMC 1877093. PMID 17377067.
  35. ^ a b c Kawashima SA, Takemoto A, Nurse P, Kapoor TM (July 2012). "Analyzing fission yeast multidrug resistance mechanisms to develop a genetically tractable model system for chemical biology". Chemistry & Biology. 19 (7): 893–901. doi:10.1016/j.chembiol.2012.06.008. PMC 3589755. PMID 22840777.
  36. ^ a b Tay Z, Eng RJ, Sajiki K, Lim KK, Tang MY, Yanagida M, Chen ES (24 January 2013). "Cellular robustness conferred by genetic crosstalk underlies resistance against chemotherapeutic drug doxorubicin in fission yeast". PLOS ONE. 8 (1): e55041. Bibcode:2013PLoSO...855041T. doi:10.1371/journal.pone.0055041. PMC 3554685. PMID 23365689.
  37. ^ Forsburg SL (September 1999). "The best yeast?". Trends in Genetics. 15 (9): 340–4. doi:10.1016/s0168-9525(99)01798-9. PMID 10461200.
  38. ^ Hoffman CS, Wood V, Fantes PA (October 2015). "An Ancient Yeast for Young Geneticists: A Primer on the Schizosaccharomyces pombe Model System". Genetics. 201 (2): 403–23. doi:10.1534/genetics.115.181503. PMC 4596657. PMID 26447128.
  39. ^ Sabatinos SA, Mastro TL, Green MD, Forsburg SL (January 2013). "A mammalian-like DNA damage response of fission yeast to nucleoside analogs". Genetics. 193 (1): 143–57. doi:10.1534/genetics.112.145730. PMC 3527242. PMID 23150603.
  40. ^ a b Hayano M, Kanoh Y, Matsumoto S, Renard-Guillet C, Shirahige K, Masai H (January 2012). "Rif1 is a global regulator of timing of replication origin firing in fission yeast". Genes & Development. 26 (2): 137–50. doi:10.1101/gad.178491.111. PMC 3273838. PMID 22279046.
  41. ^ Burrack LS, Berman J (July 2012). "Neocentromeres and epigenetically inherited features of centromeres". Chromosome Research. 20 (5): 607–19. doi:10.1007/s10577-012-9296-x. PMC 3409321. PMID 22723125.
  42. ^ a b Stimpson KM, Matheny JE, Sullivan BA (July 2012). "Dicentric chromosomes: unique models to study centromere function and inactivation". Chromosome Research. 20 (5): 595–605. doi:10.1007/s10577-012-9302-3. PMC 3557915. PMID 22801777.
  43. ^ McDowall MD, Harris MA, Lock A, Rutherford K, Staines DM, Bähler J, et al. (January 2015). "PomBase 2015: updates to the fission yeast database". Nucleic Acids Research. 43 (Database issue): D656-61. doi:10.1093/nar/gku1040. PMC 4383888. PMID 25361970.
  44. ^ Kadura S, Sazer S (July 2005). "SAC-ing mitotic errors: how the spindle assembly checkpoint (SAC) plays defense against chromosome mis-segregation". Cell Motility and the Cytoskeleton. 61 (3): 145–60. doi:10.1002/cm.20072. PMID 15887295.
  45. ^ a b c d Lee IJ, Coffman VC, Wu JQ (October 2012). "Contractile-ring assembly in fission yeast cytokinesis: Recent advances and new perspectives". Cytoskeleton. 69 (10): 751–63. doi:10.1002/cm.21052. PMC 5322539. PMID 22887981.
  46. ^ a b Rinaldi T, Dallabona C, Ferrero I, Frontali L, Bolotin-Fukuhara M (December 2010). "Mitochondrial diseases and the role of the yeast models". FEMS Yeast Research. 10 (8): 1006–22. doi:10.1111/j.1567-1364.2010.00685.x. PMID 20946356.
  47. ^ a b c d Jeffares, Daniel C.; et al. (2015). "The genomic and phenotypic diversity of Schizosaccharomyces pombe". Nature Genetics. 47 (3): 235–241. doi:10.1038/ng.3215. PMC 4645456. PMID 25665008.
  48. ^ Brown, William R. A.; Liti, Gianni; Rosa, Carlos; James, Steve; Roberts, Ian; Robert, Vincent; Jolly, Neil; Tang, Wen; Baumann, Peter; Green, Carter; Schlegel, Kristina; Young, Jonathan; Hirchaud, Fabienne; Leek, Spencer; Thomas, Geraint; Blomberg, Anders; Warringer, Jonas (2011). "A Geographically Diverse Collection of Schizosaccharomyces pombe Isolates Shows Limited Phenotypic Variation but Extensive Karyotypic Diversity". G3: Genes, Genomes, Genetics. 1 (7): 615–626. doi:10.1534/g3.111.001123. PMC 3276172. PMID 22384373.
  49. ^ Mojardín L, Vázquez E, Antequera F (November 2013). "Specification of DNA replication origins and genomic base composition in fission yeasts". Journal of Molecular Biology. 425 (23): 4706–13. doi:10.1016/j.jmb.2013.09.023. hdl:10261/104754. PMID 24095860.
  50. ^ a b Forsburg SL (April 2002). "Only connect: linking meiotic DNA replication to chromosome dynamics". Molecular Cell. 9 (4): 703–11. doi:10.1016/S1097-2765(02)00508-7. PMID 11983163.
  51. ^ Moriya H, Chino A, Kapuy O, Csikász-Nagy A, Novák B (December 2011). "Overexpression limits of fission yeast cell-cycle regulators in vivo and in silico". Molecular Systems Biology. 7 (1): 556. doi:10.1038/msb.2011.91. PMC 3737731. PMID 22146300.
  52. ^ Das M, Wiley DJ, Chen X, Shah K, Verde F (August 2009). "The conserved NDR kinase Orb6 controls polarized cell growth by spatial regulation of the small GTPase Cdc42". Current Biology. 19 (15): 1314–9. doi:10.1016/j.cub.2009.06.057. PMID 19646873. S2CID 12744756.
  53. ^ Moseley JB (October 2013). "Cellular aging: symmetry evades senescence". Current Biology. 23 (19): R871-3. doi:10.1016/j.cub.2013.08.013. PMC 4276399. PMID 24112980.
  54. ^ Cooper S (2013). "Schizosaccharomyces pombe grows exponentially during the division cycle with no rate change points" (PDF). FEMS Yeast Res. 13 (7): 650–8. doi:10.1111/1567-1364.12072. PMID 23981297.
  55. ^ Senoo T, Kawano S, Ikeda S (March 2017). "DNA base excision repair and nucleotide excision repair synergistically contribute to survival of stationary-phase cells of the fission yeast Schizosaccharomyces pombe". Cell Biology International. 41 (3): 276–286. doi:10.1002/cbin.10722. PMID 28032397. S2CID 39454427.
  56. ^ Cadou A, Couturier A, Le Goff C, Xie L, Paulson JR, Le Goff X (March 2013). "The Kin1 kinase and the calcineurin phosphatase cooperate to link actin ring assembly and septum synthesis in fission yeast". Biology of the Cell. 105 (3): 129–48. doi:10.1111/boc.201200042. PMID 23294323. S2CID 21404821.
  57. ^ Balazs A, Batta G, Miklos I, Acs-Szabo L, Vazquez de Aldana CR, Sipiczki M (March 2012). "Conserved regulators of the cell separation process in Schizosaccharomyces". Fungal Genetics and Biology. 49 (3): 235–49. doi:10.1016/j.fgb.2012.01.003. hdl:10261/51389. PMID 22300943.
  58. ^ Rincon SA, Paoletti A (October 2012). "Mid1/anillin and the spatial regulation of cytokinesis in fission yeast". Cytoskeleton. 69 (10): 764–77. doi:10.1002/cm.21056. PMID 22888038. S2CID 22906028.
  59. ^ Das M, Chiron S, Verde F (2010). "Microtubule-dependent spatial organization of mitochondria in fission yeast". Microtubules: In vivo. Methods in Cell Biology. Vol. 97. pp. 203–21. doi:10.1016/S0091-679X(10)97012-X. ISBN 9780123813497. PMID 20719273.
  60. ^ Fraser HB (2013). "Cell-cycle regulated transcription associates with DNA replication timing in yeast and human". Genome Biology. 14 (10): R111. arXiv:1308.1985. doi:10.1186/gb-2013-14-10-r111. PMC 3983658. PMID 24098959.
  61. ^ Li PC, Green MD, Forsburg SL (2013). "Mutations disrupting histone methylation have different effects on replication timing in S. pombe centromere". PLOS ONE. 8 (5): e61464. Bibcode:2013PLoSO...861464L. doi:10.1371/journal.pone.0061464. PMC 3641051. PMID 23658693.
  62. ^ "Sir Paul Nurse - Biographical". The Official Site of the Nobel Prize. 2001. Retrieved 7 February 2016.
  63. ^ Zhao J, Lendahl U, Nistér M (March 2013). "Regulation of mitochondrial dynamics: convergences and divergences between yeast and vertebrates". Cellular and Molecular Life Sciences. 70 (6): 951–76. doi:10.1007/s00018-012-1066-6. PMC 3578726. PMID 22806564.
  64. ^ Abelovska L (2011). "Mitochondria as protean organelles: membrane processes that influence mitochondrial shape in yeast". General Physiology and Biophysics. 30 Spec No (5): S13-24. doi:10.4149/gpb_2011_SI1_13. PMID 21869447.
  65. ^ Chino A, Makanae K, Moriya H (3 September 2013). "Relationships between cell cycle regulator gene copy numbers and protein expression levels in Schizosaccharomyces pombe". PLOS ONE. 8 (9): e73319. Bibcode:2013PLoSO...873319C. doi:10.1371/journal.pone.0073319. PMC 3760898. PMID 24019917.
  66. ^ Raychaudhuri S, Young BP, Espenshade PJ, Loewen C (August 2012). "Regulation of lipid metabolism: a tale of two yeasts". Current Opinion in Cell Biology. 24 (4): 502–8. doi:10.1016/j.ceb.2012.05.006. PMC 4339016. PMID 22694927.
  67. ^ Babu M, Vlasblom J, Pu S, Guo X, Graham C, Bean BD, et al. (September 2012). "Interaction landscape of membrane-protein complexes in Saccharomyces cerevisiae". Nature. 489 (7417): 585–9. Bibcode:2012Natur.489..585B. doi:10.1038/nature11354. PMID 22940862. S2CID 4344457.
  68. ^ Suda Y, Nakano A (April 2012). "The yeast Golgi apparatus". Traffic. 13 (4): 505–10. doi:10.1111/j.1600-0854.2011.01316.x. PMID 22132734.
  69. ^ "Trans-NIH.pombe Initiative". 2002. {{cite journal}}: Cite journal requires |journal= (help)
  70. ^ Green, M. D. Sabatinos, S. A. Forsburg, S. L. (2009). Microscopy techniques to examine DNA replication in fission yeast Journal. Methods in Molecular Biology. Vol. 521. pp. 463–82. doi:10.1007/978-1-60327-815-7_26. ISBN 978-1-60327-814-0. PMID 19563123.{{cite book}}: CS1 maint: multiple names: authors list (link)

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia EN

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Anglèis )

fornì da wikipedia EN

Schizosaccharomyces pombe, also called "fission yeast", is a species of yeast used in traditional brewing and as a model organism in molecular and cell biology. It is a unicellular eukaryote, whose cells are rod-shaped. Cells typically measure 3 to 4 micrometres in diameter and 7 to 14 micrometres in length. Its genome, which is approximately 14.1 million base pairs, is estimated to contain 4,970 protein-coding genes and at least 450 non-coding RNAs.

These cells maintain their shape by growing exclusively through the cell tips and divide by medial fission to produce two daughter cells of equal size, which makes them a powerful tool in cell cycle research.

Fission yeast was isolated in 1893 by Paul Lindner from East African millet beer. The species name pombe is the Swahili word for beer. It was first developed as an experimental model in the 1950s: by Urs Leupold for studying genetics, and by Murdoch Mitchison for studying the cell cycle.

Paul Nurse, a fission yeast researcher, successfully merged the independent schools of fission yeast genetics and cell cycle research. Together with Lee Hartwell and Tim Hunt, Nurse won the 2001 Nobel Prize in Physiology or Medicine for their work on cell cycle regulation.

The sequence of the S. pombe genome was published in 2002, by a consortium led by the Sanger Institute, becoming the sixth model eukaryotic organism whose genome has been fully sequenced. S. pombe researchers are supported by the PomBase MOD (model organism database). This has fully unlocked the power of this organism, with many genes orthologous to human genes identified - 70% to date, including many genes involved in human disease. In 2006, sub-cellular localization of almost all the proteins in S. pombe was published using green fluorescent protein as a molecular tag.

Schizosaccharomyces pombe has also become an important organism in studying the cellular responses to DNA damage and the process of DNA replication.

Approximately 160 natural strains of S. pombe have been isolated. These have been collected from a variety of locations including Europe, North and South America, and Asia. The majority of these strains have been collected from cultivated fruits such as apples and grapes, or from the various alcoholic beverages, such as Brazilian Cachaça. S. pombe is also known to be present in fermented tea, kombucha. It is not clear at present whether S. pombe is the major fermenter or a contaminant in such brews. The natural ecology of Schizosaccharomyces yeasts is not well-studied.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia EN

Schizosaccharomyces pombe ( Spagneul; Castilian )

fornì da wikipedia ES

Schizosaccharomyces pombe o S. pombe, también llamada "fission yeast" en inglés (levadura de fisión, haciendo referencia a su mecanismo característico de división celular), es una especie de levadura. Es un hongo unicelular eucariota usado como organismo modelo en biología molecular y biología celular. Tiene forma de bastón y mide normalmente de 3 a 4 micrómetros de diámetro y de 7 a 14 micrómetros de longitud. Su genoma, aproximadamente tiene 14,1 millones de pares de bases, conteniendo 4.970 genes codificadores de proteína, y al menos 450 ARN no codificante.[1]

S. pombe se divide por fisión binaria y produce dos células de igual tamaño. Es muy usada como organismo modelo en el estudio del ciclo celular, ARNi, entre otros.

Esta levadura fue aislada por primera vez de una cerveza africana en 1893 por Lindner. Su nombre, "Pombe" significa cerveza en el idioma swahili.[2][3]

Comparaciones con Saccharomyces cerevisiae

  • S. cerevisiae tiene ~ 5600 marcos abiertos de lectura, mientras que S. pombe tiene ~ 4800.
  • S. cerevisiae tiene 16 cromosomas, S. pombe tiene 3
  • S. cerevisiae usualmente es diploide mientras que S. pombe usualmente es haploide.
  • Durante el ciclo celular, S. cerevisiae dura la mayor parte del tiempo en la fase G1 mientras que S. pombe usualmente está en la fase G2.

Referencias

  1. Wilhelm (2008). «Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution». Nature 453 (7199): 1239-1243. PMID 18488015. doi:10.1038/nature07002.
  2. Leupold, U (1950). «Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe». CR Trav Lab Carlsberg Ser Physiol 24: 381-480.
  3. Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics . New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press. p 125–128.

 title=
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores y editores de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia ES

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Spagneul; Castilian )

fornì da wikipedia ES

Schizosaccharomyces pombe o S. pombe, también llamada "fission yeast" en inglés (levadura de fisión, haciendo referencia a su mecanismo característico de división celular), es una especie de levadura. Es un hongo unicelular eucariota usado como organismo modelo en biología molecular y biología celular. Tiene forma de bastón y mide normalmente de 3 a 4 micrómetros de diámetro y de 7 a 14 micrómetros de longitud. Su genoma, aproximadamente tiene 14,1 millones de pares de bases, conteniendo 4.970 genes codificadores de proteína, y al menos 450 ARN no codificante.​

S. pombe se divide por fisión binaria y produce dos células de igual tamaño. Es muy usada como organismo modelo en el estudio del ciclo celular, ARNi, entre otros.

Esta levadura fue aislada por primera vez de una cerveza africana en 1893 por Lindner. Su nombre, "Pombe" significa cerveza en el idioma swahili.​​

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores y editores de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia ES

Schizosaccharomyces pombe ( Basch )

fornì da wikipedia EU

Schizosaccharomyces pombe, fisioaren legamia ere deitua, deskribatutako lehenengo fisio legamia da; hau da, fisio edo erdibitze bidez ugaltzen dena, bi zelula alaba berdin sortuz.

Organismo eukarioto eta unizelularra da. Legamia izanik, Ascomycota filumeko onddoa da. Hala ere, talde honetatik bereizten dituen zenbait ezaugarri ditu; hala nola, bizimodu unizelularra eta azukreak hartzitzeko gaitasuna. Morfologiari dagokionez, zilindrikoa da, kanabera formakoa eta ertz borobilduna. 7-14 µm luzetara eta 3-4 µm diametroko lodiera neurtu ohi du. [1]

S. pombe, Saccharomyces cerevisiae legamiarekin batera, biologia molekularreko eredu oso garrantzitsua da. Bere genomak, bizi-zikloak eta ugaztunen zelulekin dituen antzekotasunak, mikroorganismo hobeezina bihurtzen dute gizakien zenbait prozesu zelular aztertzeko.

Historia

S. pombe, erdibitze bidez ugaltzen den aurkitu zuten lehen legamia izan zen, hau da, lehen fisio legamia. P. Lindner-ek aurkitu zuen 1893.urtean, eta Archaeascomycete filumean sailkatu zuen, Afrikako ekialdetik etorritako “Artatxiki garagardo” izeneko garagardo berezia dastatzean. Hori dela eta, pombe du izen espezifikotzat, garagardoa Swahili hizkuntzan “pombe” izena duelarik. Bestalde Schizosaccharomyces generoa bere aurkikuntzarekin sortu zen: “-saccharomyces” legami bat dela adierazten du, eta “Schizo-”, aldiz, fisioz banatzen dela.[2]

XX. mendearen erdialdean, U. Leupold-ek S. pombe-ren azterketa genetikoa hasi zuen. Horrezkero egin diren ikerketetan, U. Leupold hazitako anduiaren eratorriak diren anduiak erabili dira; horregatik, legami honen genoma nahiko uniformea da. U. Leopold-ek hiru andui desberdin deskribatu zituen, bakoitza gurutzatze-forma desberdin batekin: lehenengoa autoernaltzeko ahalmena du, nitrogeno kontzentrazioa mugatzailea denean esporak %90-an sortzeko gai dena (h90); eta beste bi andui, bata bestearekin ugaldu daitezke: h+ eta h-. [2]

2002an, S. pombe-ren genoma osoa sekuentziatu zen, horren aurretik bakarrik bost genoma eukariotiko sekuentziatu zirelarik: Saccharomyces cerevisiae, Caenorhabditis elegans, Drosophila melanogaster, Arabidopsis thaliana eta Homo sapiens-ena. [2]

Ekologia

S. pombe legamia Ascomycota dibisioan sailkatuta dago, Fungi erreinuaren talde dibertsoenean. Oraindik ez dago argi espezie honek duen banaketa geografikoa, izan ere, herrialde askotan aurkitu egin da, normalean azukre kontzentrazio altuko edari alkoholetan edota melazan. Esaterako, eztian, Kombuchan, ardoan, tuban (palmondoaren izerdia hartzitzean lortutako edari alkoholikoa), eta fruitu batzuen hartzidura naturaletan (Coffea arabica eta Theobroma cacao landareen fruituetan gertatzen dena).[3]

S. pombe mikroorganismo kimioorganotrofoa da, beraz, konposatu organikoak erabiltzen ditu energia lortzeko. Oxigeno beharraren aldetik, aukerazko anaerobioak dira; hau da, ingurune aerobiko eta anaerobikoetan haz daitezke: oxigenoaren presentzian arnasketa aerobikoa burutzen dute, eta oxigenorik ez dagoenean, arnasketa anaerobioa edo hartzidura burutu dezakete. Gainera, S. pombe-k hartzidura egiteko gai da oxigenoaren presentzian, azukre kontzentrazio handia dagoenean; hain zuzen ere hartzidura alkoholikoa.[4]Aipatu beharra dago, S. pombe-k inositolarekiko auxotrofoa dela; hau da, kultibo medio batean hazteko, inusitola gaineratu behar dela legami hau haz dadin. Auxotrofoa izatearen arrazoia inositol-1-fosfato sintasa kodetzen duen genea ez izatea da. Inusitola hazkuntzarako sustantzia beharrezkoa da organismo eukariotoetan, mintz plasmatikoaren fosfolipidoen, esfingolipidoen eta glukofosfatidil-inositolaren prekurtsorea delako. [5]

Garrantzia

Eredu bezala, S. pombe aurrerapen garrantzitsuak ekarri ditu hainbat ezagumenduetan: ziklo zelularrean eta bere erregulazioan, mikrotubuluen sintesian, desberdintzazio meiotikoan, morfogenesian, polaritatean, estresaren aurreko mekanismoetan edota genomaren kalteen erreparazioan. Bere eskuragarritasuna, kultibatzeko erreztasuna, hazkuntza tasa handia, genoma txikia eta bizimodu haploidea, ikerketan erabiltzeko mikroorganismo oso bideragarria egiten du. [2]

Laburbiltzeko, S. pombe laborategietan erabiltzeko abaintailak bost dira.

  • Organismo unizelularra denez, erraz iker daiteke prozesu jakin batean parte hartzen duten geneak, legami asko haz daitezkeelako, eta banako mutanteak identifikatu daitezkelako.
  • Eukariotikoak dira. Beraz, zenbait prozesu zelular eta metaboliko gizakietan eta legamietan kontserbatuta daude, bakterioetan ez daudenak. Gainera erdibitze bidez ugaltzen dira bi zelula alaba berdinak eratuz, ugaztunen zelulak bezala. Horrek aukera ematen du, gizakiek espezie honekin komunean dituen prozesuak ikertzeko.

Esaterako, organuluen biogenesia, zitoeskeletoaren antolaketa, DNA erreplikazioa, transkripzioa, itzulpena eta erregulazioa.

  • Laborategiko anduiak haploideak edo diploideak izan daitezke. Haploideak oso erabilgarriak izan daitezke fenotipo jakin batek kodetzen duten aleloak aurkitzeko. Izan ere, alelo mutante gehienak errezesiboak dira, beraz andui haploideetan gene hori zuzenean adieraziko da fenotipoan, kromosoma bakoitzaren kopia bakarra dutelako. Behin aleloa aurkitu denean, andui diploideak erabili daitezke jakiteko alelo mutantea errezesiboa edo dominantea den alelo basatiarekiko.
  • Autonomikoki erreplikatzen diren plasmidoak izan ditzake, eta horrek geneen klonazioa errazten du; horrela plasmido errekonbinatuak txerta daitezke, andui baten jokaera aldatzeko.
  • Kromosoma homologoen arteko errekonbinazio mekanismo oso aktiboak ditu. Beraz, gizakietan milioi bat base pare behar dira 1cM (errekonbinazio meiotikoaren neurria) betetzeko, baina S. pombe-an bakarrik 6250 base pare. Horren ondorioz, S. pombe-ren genoman aldaketa bideratuak egitea errazten du.

Hala eta guztiz ere, badaude zenbait muga S. pombe erabateko eredutzat erabiltzeko: medikamentuekiko erresistentzia. Hauek ABC ponpen (transmintz proteinen talde bat, energia gastuaren bidezko garraioa bideratzen dutenak) bidez medikamentuak zelulatik kanpo botatzen dituzte, eta beraz, zenbait medikamenduen efektuak edo funtzioak ikertzea zaila da. Baina hainbat ikertzaile S. pombe andui bereziak sortu dituzte ponpatze mekanismoak baztertuz, legamia hau medikamentu kimikoen ikerketa modelo bezala erabil daitezen.[6]

Genoma

S. pombe interes handiko organismoa da bere genoma kontuan hartuta; izan ere, 2002an bere genoma osoa sekuentziatu zen, Genoma Projektuan sekuentziaturiko seigarren genoma eukariotikoa izanik. Momentu horretan genoma txikiena zuen ikertutako eukariotoa izan zen. Bere genomaren 13,8 Mb-ak hiru kromosometan antolatzen dira, genoma mitokondialarekin batera. Eukarioten artean, proteina kodetzaile gene gutxien dituena da, genoman soilik 4824 gene baitauka. [2]

 src=
Splicing

Gainera introi kopuru oso altua du (geneen %43 intronak dituzte, 4730 gutxi gora behera)[2], honek aukera ematen du splicing bidez aldi berean mota eta funtzio desberdineko proteina kopurua handitzeko, zelulan proteina barietatea handituz. [1] Gene errepikakorrak genoma eukariotikoaren berezitasun esanguratsua da, baina legami honetan soilik geneen %5 errepikakorrak dira, eta beraz, ikerlariak ikerketa funtzionalagoak egitera baimentzen du, bere azterketa eta sekuentziazioa askoz errazagoa baita. [7] Bestalde kromosometako zentromeroak nahiko luzeak dira, 35 eta 110kb artekoak. [2] Luzera handiko eta oso eskualde kontserbakorrak direla kontuan harturik gizakien zentromeroen antza handia dute eta bihurtzen du S. pombe oso eredu ona gizakien zatiketa zelularra behatzeko. Beste organismo eukariotikoen genomekin konparaturik, proteinak kodetzen dituzten geneen %69 gizakietan sekuentzia ortologoak dira [7]. Gainera S. pombe genoman, 289 genek erlazio oso estua dute gizakien hainbat gaixotasunekin, askok batez ere minbiziarekin. [1] Legamia eta gizakiaren arteko antzekotasun genetiko hauek interes handikoak dira biomedikuntzan. Gizakien gaixotasun genetiko askoren oinarri molekularra ulertzeko eta ikertzeko erabiltzeko aukera dago. Izan ere, oso erabilgarria izan daiteke hauen kontrako tratamenduak edo prebentzio metodoak aurkitzeko.

Hala ere, badaude beste hainbat faktore egiten dutela oraindik eredu hobeagoa: batik bat, herraminta molekularrak. Mekanismo molekularren artean, geneak mutatzeko ahalmena daukgu, fenotipoak eratuko dituzten proteinak determinatzeko eta konplemetatzeko erabili daitekeena; geneen expresioa erregulatzeko promotoreak; geneen fusioa; eta adibidez PCR bidezko delekziorako edo mutagenesirako casetteak. [1]

 src=
Zelula baten bizi-zikloa

Bizi-zikloa

 src=
Schizosaccharomyces pombe zatiketa zelularrean. Goitik hasita, bigarren zelulean septua edo trenkada ikus daiteke.

S. pombe-ren bizi-zikloak bi fase ditu: fase asexuala edo begetatiboa eta fase sexuala. Bere bizi-zikloan zehar, fase haploide eta diploideak tartekatzen dira, ingurumen faktoreen eta gurutzatze-forma osagarria duten zelulen arteko elkarrekintzen arabera.[8]

Fase begetatiboa

Fase begetatiboa, fase nagusia eta haploidea da. Honetan zehar, zatitu berri diren zelulak etengabe hazten dira luzeran, baina zabalera aldaketarik gabe. Ezaugarri honi esker, zelula baten luzera jakinda, bere adina estima daiteke. Zelulen luzera 15 μm-tara izatera heltzen denean, mitosia hasten dute. Nukleoa zatitu ondoren, zeharkako septu edo trenkada bat agertzen da zelularen erdialdean, zelula ama erdibituko duena, tamaina bereko bi zelula alaba emateko. Bi zelula alaben arteko trenkada sortzen den arren, zelulak ez dira banantzen DNA erreplikatu den arte.[8] Fase begetatiboan, 4 fase bereiz daitezke: G1 fasean DNA erreplikaziorako beharrezkoa den makinaria prestatzen du; S fasean DNA erreplikatzen da, bi kromatida ahizpez osaturiko kromosomak emateko; G2 fasean mitosia hasteko prestatzen da zelula, eta M fasean zatiketa zelular mitotikoa ematen da, DNA modu baliokidean banatzen da bi zelula alabetan. [1] Fusio legamiaren G1 fasea nahiko laburra da; mitosia eta zelulen banaketa ematen den bitartean gertatzen da. Hau da, septua dagoen bitartean G1 eta S faseak gertatzen dira, S fasea septua edo trenkadaren presentziarekin zuzenki erlazionatuta dagoelarik. Septua desagertzen denean S fasea amaitzen da eta beraz, bi zelulak guztiz bananduta daudenean, bizi-zikloaren G2 fasean sartu dira. Fase hau S. pombe-aren bizi-ziklo osoaren ¾ betetzen du, horregatik, ia zelula haploide guztiak kromosoma erreplikatuak dituzte. [1][8]

Fase sexuala

Inguruneko baldintza desegokiak direnean (esaterako, nitrogenoa mugatzailea denean) fase sexuala gertatzen da. Fase honetan, aurkako gurutzatze-forma duten bi zelula haploide elkartu eta konjugazio bidez ugaltzen dira; lehenik bi mintzak fusionatuz, eta ondoren bi nukleo parentalak fusionatuz, zigoto bat emateko. Zigoto hau diploidea da, eta meiosia pairatuko du lau nukleo haploide sortuz . Orduan, nukleo bakoitzaren inguruan espora pareta bat sortuko da (esporulazioa). Prozesu hau amaitutakoan, zelulari asko deritzo, eta bere barnean daukan nukleo bakoitzari, pareta batez inguratuta daudena, askoespora deritzo. Baldintza egokiak direnean, askosporak askatzen dira. Espora bakoitzetik zelula begetatibo haploide bat sortzen da, eta hauek fase begetatiboan sartzen dira berriro.[8] Hala nola, askoak zelula begetatibo diploideetatik ere sortu daitezke, zigoto batetik eratorri beharrean. Jatorri desberdineko bi asko horiek morfologia desberdina dute; zelula begetatibo diploideetatik eratu direnak motzagoak eta linelak dira; kontran, zigotoetatik eratorriko askoak tolestuta daude. Osatzen duen angelua normalean zelula diploideak elkartzean osatzen zuten angelua adierazten du. [8] Lehenik aipatutako zigotoen eraketa bi zelula haploideek sortzen duten zelula diploidearen gurutzatze-formaren arabera ematen da. h- eta h+ diren zelula haploideak ugaltzen direnean, h-/h+ zelula diploidea eratuko dute, meiosia eta esporulazioa egiteko gai dena. Baina gurutzatze-forma berdina duten bi zelula haploide ugaltzen direnean, zelula homozigotiko diploide bat emateko, zelula diploide hori ez da gai meiosia burutzeko. Bestalde, h90 kultiboko zelula haploideak eta h+ edo h- kultibokoak ugaltzen direnean, sortuko den zelula diploidea meiosia egiteko gai izango da baita. [1][8]

Erregulazioa

Fisio legamiaren bizi-zikloan eta geneen erregulazioan inguruko zein organismo barruko faktoreek eragiten dute. Bizi-zikloa erregulatzen duen faktore garrantzitsuen artean, zelulen tamaina daukagu. Izan ere, mitosian sartzeko, zelulek tamaina jakin bat izan behar dute, 15 μm gutxi gora behera.[8] Beste alde batetik, proteina erregulatzaileak ditugu. Azaldutako moduan, S.pombe-ren bizi-zikloaren fase nagusia, G2 fasea da. Fase honetan zelulek DNA-ren sintesian eta erreplikazioan akatsik egon den kontrolatzeko makinaria daukate. Beraz, hau ikusita eta G1 fasearen iraupen laburra kontuan hartuta, pentsa dezakegu G1 fasean ez dagoela kontrol punturik. Baina ikertu egin da G1 fasean ere bizi zikloaren kontrol puntu garrantzitsua dagoela. Bi kontrol puntu hauek funtsezko osagai komun bat dute: cdc2 genearen produktua (kinasa bat). Cdc2 genea gizakien CDK1 kinasa kodetzen duen genearen homologoa da. CDK1 proteinak honek mitosia erreegulatzen du eta beraz, S. pombe-ren cdc2 genea interes handikoa da zelulen bizi-zikloa, zatiketa eta hauen erregulazioa ikertzeko. [8]

DNAren erreparazioa

Kaltetutako kromosoma bat erreparatzeko era eraginkor bat, kaltetutako sekuentziari dagokion informazioa beste DNA molekula batetik kopiatzea da. Metodo hau erraza da zelula diploideentzat, beti baitituzte informazio genetikoaren bi kopia. Hau ez da gertatzen ordea G1 fasean dagoen zelula haploide batean. [8]Aurreko atalean aipatu bezala, S. pombe-k fase haploide zein diploidea ditu. Hala ere, fase diploide edo sexualean bakarrik sartzen da kanpoko baldintzak ezegokiak direnean eta beraz, bizi-ziklo gehiena fase begetatibo edo haploidean igaroko du. Organismoak beraz, kromosoma homologorik ez dituenez fase gehienetan, DNA erreparaziorako beste mekanismo batzuk erabiltzen ditu. Izan ere, fase begetatiboko (haploide) G2 fasea bizi-zikloaren parte oso handia hartzen du eta bertan zelula haploide gehienak DNA erreplikatuta daukate; hau da, kromosoma bakoitzean bi kromatida ahizpa dituzte. Ezaugarri horri esker, DNAren apurketari aurre egin diezaioke, kromatida baten apurketa gertatzekotan, bestea erabili dezaketelako DNA molde moduan. [8]

Bestalde, DNA, peroxidoen aurre oso mekanismo eraginkorrak ditu. Peroxidoak DNA kaltetzen dutelarik, honen kontaktuan, S. pombe legamiak ahalik eta azkarren meiosporak eratzen ditu. Meiosiaren bidez kromatiden arteko errekonbinazio genetikoa gertatzen da, DNA-ren kontserbaketa baimenduz.

Erreferentziak

  1. a b c d e f g Encinar del Dedo, J. (2010) Caracterización de la β(1,3)-endoglucanasa eng2 en Schizosaccharomyces pombe. Dehiscencia y crecimiento polarizado Instituto de Microbiología Bioquímica Departamento de Microbiología y Genética. Universidad de Salamanca, Salamanca 2-4. or..
  2. a b c d e f g Sánchez, A. (2009) Caracterización bioquímica y funcional de la ADN polimerasa 4 de Schizosaccharomyces pombe Facultad de Ciencias Departamento de Biología Molecular. Universidad Autónoma de Madrid 22-23. or..
  3. (Ingelesez) Jeffares, Daniel C. (2018) «The natural diversity and ecology of fission yeast» Yeast (3): 253–260 doi:10.1002/yea.3293 ISSN 1097-0061 . Noiz kontsultatua: 2019-04-23.
  4. (Ingelesez) Sakurai, M; Tohda, H; Kumagai, H; Gigahama, Y (2004-3) «A distinct type of alcohol dehydrogenase, , complements ethanol fermentation in an -deficient strain of» FEMS Yeast Research (6): 649–654 doi:10.1016/j.femsyr.2003.12.009 . Noiz kontsultatua: 2019-04-23.
  5. (Ingelesez) Núñez, Andrés; Dulude, Dominic; Jbel, Mehdi; Rokeach, Luis A. (2015-03-24) Brodsky, Jeffrey L ed. «Calnexin Is Essential for Survival under Nitrogen Starvation and Stationary Phase in Schizosaccharomyces pombe» PLOS ONE (3): e0121059 doi:10.1371/journal.pone.0121059 ISSN 1932-6203 PMID 25803873 PMC PMC4372366 . Noiz kontsultatua: 2019-04-23.
  6. Kawashima, Shigehiro A.; Takemoto, Ai; Nurse, Paul; Kapoor, Tarun M. (2012-07) «Analyzing Fission Yeast Multidrug Resistance Mechanisms to Develop a Genetically Tractable Model System for Chemical Biology» Chemistry & Biology (7): 893–901 doi:10.1016/j.chembiol.2012.06.008 ISSN 1074-5521 . Noiz kontsultatua: 2019-04-23.
  7. a b Wood, V.; Gwilliam, R.; Rajandream, M. A.; Lyne, M.; Lyne, R.; Stewart, A.; Sgouros, J.; Peat, N.; Hayles, J.; Baker, S.; et al. (2002). The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe. Nature. 415 (6874): 871–880.
  8. a b c d e f g h i j (Ingelesez) Hoffman, Charles S.; Wood, Valerie; Fantes, Peter A. (2015-10) «An Ancient Yeast for Young Geneticists: A Primer on the Schizosaccharomyces pombe Model System» Genetics (2): 403–423 doi:10.1534/genetics.115.181503 ISSN 0016-6731 PMID 26447128 PMC PMC4596657 . Noiz kontsultatua: 2019-04-23.


(RLQ=window.RLQ||[]).push(function(){mw.log.warn("Gadget "ErrefAurrebista" was not loaded. Please migrate it to use ResourceLoader. See u003Chttps://eu.wikipedia.org/wiki/Berezi:Gadgetaku003E.");});
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipediako egileak eta editoreak
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia EU

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Basch )

fornì da wikipedia EU

Schizosaccharomyces pombe, fisioaren legamia ere deitua, deskribatutako lehenengo fisio legamia da; hau da, fisio edo erdibitze bidez ugaltzen dena, bi zelula alaba berdin sortuz.

Organismo eukarioto eta unizelularra da. Legamia izanik, Ascomycota filumeko onddoa da. Hala ere, talde honetatik bereizten dituen zenbait ezaugarri ditu; hala nola, bizimodu unizelularra eta azukreak hartzitzeko gaitasuna. Morfologiari dagokionez, zilindrikoa da, kanabera formakoa eta ertz borobilduna. 7-14 µm luzetara eta 3-4 µm diametroko lodiera neurtu ohi du.

S. pombe, Saccharomyces cerevisiae legamiarekin batera, biologia molekularreko eredu oso garrantzitsua da. Bere genomak, bizi-zikloak eta ugaztunen zelulekin dituen antzekotasunak, mikroorganismo hobeezina bihurtzen dute gizakien zenbait prozesu zelular aztertzeko.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipediako egileak eta editoreak
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia EU

Schizosaccharomyces pombe ( Fransèis )

fornì da wikipedia FR

Schizosaccharomyces pombe appartient à la classe des champignons ascomycètes. Il s'agit d'une une espèce de levure particulière, aussi appelée "levure à fission", qui présente la particularité de se reproduire en se devisant, à partir de la cellule mère, en deux cellules filles de taille identique[1]. Elle est utilisée comme un organisme modèle en biologie cellulaire et moléculaire qui permet de comprendre des organismes plus complexes[2]. Elle est partiellement domestiquée, notamment pour faire des bières (pombe signifie bière en Swahili)[3]. Elle fut isolée en 1890 d'une bière de l'Est de l'Afrique à base de millet et décrite par Paul Lindner en 1893[4].

Description

C'est un organisme unicellulaire eucaryote, dont les cellules sont cylindriques. Ces cellules mesurent généralement 7 à 14 micromètres de longueur et 4 de largeur. On la trouve sur les raisins et dans les mélanges de fermentation.

Cycle de vie

Son nom, contenant le préfixe schizo qui signifie "fendre" ou "couper en deux"[5], vient du fait qu'elle pratique une division par fission médiane. Deux types de cycle reproduction existent chez Schizosaccharomyces pombe[6] :

  • reproduction asexuée : la phase G2 est relativement longue car la cellule grandit énormément ; en phase M, une duplication du noyau et donc du génome a lieu ; les deux noyaux vont migrer vers un des pôles ; en G1, une séparation se fait entre les deux compartiments pour que finalement, en phase S, deux cellules haploïdes se forment ;
  • reproduction sexuée : chez Schizosaccharomyces pombe il existe deux cellules différentes, la P (ou h+) et la M (ou h-). Elles sont toutes les deux nécessaire pour faire une reproduction sexuée par conjugaison durant laquelle les cellules, ainsi que leur noyau, vont fusionner[7]. Deux méioses consécutive vont ensuite avoir lieu pour former 4 noyaux haploïdes dans la cellule. Une phase de sporulation va former les 4 spores qui vont alors être relâchées.

Les cellules maintiennent leur forme allongée en grandissant uniquement par leurs extrémités et se divisent par une fission médiane, produisant ainsi deux cellules filles de taille égale, ce qui fait d'elles un outil puissant pour l'étude du cycle cellulaire et sa régulation.

Sa division cellulaire est régulée par la protéine kinase pom1[8].

Génétique

S. pombe possède 4 800 ORF, trois chromosomes, soit l'un des plus petits génomes recensés chez un organisme eucaryote[9], et une phase haploïde dominante dans son cycle biologique (et de façon caractéristique une phase G2 très longue). La séquence de son génome a été publiée en 2002, par un consortium dirigé par l'Institut de Sanger (c'est le sixième organisme modèle eucaryote séquencé).

Références

  1. (en) « Definition of FISSION YEAST », sur www.merriam-webster.com (consulté le 17 septembre 2020)
  2. (en) Charles S. Hoffman, Valerie Wood et Peter A. Fantes, « An Ancient Yeast for Young Geneticists: A Primer on the Schizosaccharomyces pombe Model System », Genetics, vol. 201, no 2,‎ octobre 2015, p. 403–423 (ISSN et , PMID , PMCID , DOI , lire en ligne, consulté le 17 septembre 2020)
  3. (en) « Pink Lady and Local pub shenanigans », sur The Rackster, 23 mai 2015 (consulté le 19 mai 2019)
  4. (en) « Schizosaccharomyces pombe Lindner, 1893 », sur www.gbif.org (consulté le 19 mai 2019)
  5. « schizo- — Wiktionnaire », sur fr.wiktionary.org (consulté le 19 mai 2019)
  6. (en) « Mate and fuse: How yeast cells do it »
  7. (en) Barbora Huraiova, Miroslava Pozgajova et Juraj Gregan, « Sexual Reproduction: Preventing Re-fertilization in Fission Yeast », Current Biology, vol. 28, no 22,‎ novembre 2018, R1300–R1303 (DOI , lire en ligne, consulté le 17 septembre 2020)
  8. « pom1 - Dual specificity protein kinase pom1 - Schizosaccharomyces pombe (strain 972 / ATCC 24843) (Fission yeast) - pom1 gene & protein », sur www.uniprot.org (consulté le 9 juillet 2016).
  9. V. Wood, R. Gwilliam, M.-A. Rajandream et M. Lyne, « Erratum: corrigendum: The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe », Nature, vol. 421, no 6918,‎ janvier 2003, p. 94–94 (ISSN et , DOI , lire en ligne, consulté le 17 septembre 2020)
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Auteurs et éditeurs de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia FR

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Fransèis )

fornì da wikipedia FR

Schizosaccharomyces pombe appartient à la classe des champignons ascomycètes. Il s'agit d'une une espèce de levure particulière, aussi appelée "levure à fission", qui présente la particularité de se reproduire en se devisant, à partir de la cellule mère, en deux cellules filles de taille identique. Elle est utilisée comme un organisme modèle en biologie cellulaire et moléculaire qui permet de comprendre des organismes plus complexes. Elle est partiellement domestiquée, notamment pour faire des bières (pombe signifie bière en Swahili). Elle fut isolée en 1890 d'une bière de l'Est de l'Afrique à base de millet et décrite par Paul Lindner en 1893.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Auteurs et éditeurs de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia FR

Schizosaccharomyces pombe ( Galissian )

fornì da wikipedia gl Galician

Schizosaccharomyces pombe, tamén chamado "lévedo de fisión", é unha especie de lévedo utilizado na fabricación de certas cervexas tradicionais e como organismo modelo en investigacións de bioloxía molecular e bioloxía celular. É un eucariota do reino dos fungos formado por células cilíndricas con forma de bastón (parecen bacilos, pero máis grandes). As células miden xeralmente de 3 a 4 micrómetros de diámetro e de 7 a 14 micrómetros de lonxitude. O seu xenoma, que é de aproximadamente 14,1 millóns de pares de bases, estímase que contén uns 4.970 xenes codificantes de proteínas e polo menos 450 ARNs non codificantes.[1]

Estas células manteñen a súa forma ao creceren exclusivamente polos extremos da célula e dividirse por fisión binaria medial para producir dúas células fillas de igual tamaño, o que o fai un poderoso modelo para estudar o ciclo celular.

O lévedo de fisión foi illado en 1893 por Paul Lindner da cervexa de millo miúdo producida no leste de África. O nome da especie pombe é unha palabra da lingua swahili que significa cervexa. Na década de 1950 empezou a utilizarse como modelo experimental por Urs Leupold para estudos de xenética,[2][3] e por Murdoch Mitchison para estudar o ciclo celular.[4][5] O investigador do lévedo de fisión Paul Nurse conseguiu unir as dúas escolas ata entón independentes dos estudos xenéticos e do ciclo celular. Xunto con Lee Hartwell e Tim Hunt, Nurse gañou o Premio Nobel de Medicina de 2001 polos seus traballos sobre a regulación dio ciclo celular.

A secuencia do xenoma de S. pombe foi publicada en 2002 por un consorcio liderado polo Sanger Institute, converténdose no sexto modelo de organismo eucariótico cuxo xenoma foi secuenciado completamente. Isto fixo del un poderoso organismo modelo, xa que se identificaron nel moitos xenes homólogos de enfermidades humanas. En 2006, foi publicada a localización subcelular de case todas as proteínas de S. pombe utilizando a proteína fluorescente verde como etiqueta molecular.[6]

S. pombe é tamén un organismo importante para estudar as respostas celulares aos danos no ADN e o proceso da replicación do ADN.

Illáronse aproximadamente 160 cepas naturais de S. pombe. Foron recollidas en varias localizacións de diversas partes do mundo como Europa, Norte e Sudamérica, e Asia. A maioría destas cepas recolléronse de froitas cultivadas como mazás e uvas, ou de diversas bebidas alcohólicas, como por exemplo a cachaza brasileira. S. pombe tamén está presente no té fermentado kombucha.[7] Porén, non está claro se en ditas bebidas S. pombe é o principal fermentador ou é máis ben un contaminante. A ecoloxía natural dos lévedos Schizosaccharomyces aínda non está ben estudada.

Historia

S. pombe descubriuse en 1893 cando un grupo que traballaba no Laboratorio da Asociación de Cervexeiros de Alemaña examinou uns pousos sedimentados en cervexa de millo miúdo importada de África Oriental, que lle daba á cervexa un sabor ácido e desagradable. O termo schizo, significa "división" ou "fisión", e xa fora usado previamente no nome Schizosaccharomycetes. A palabra pombe elixida para nomear a especie significa cervexa en swahili, e débese á procedencia desa cervexa. As cepas estándar de S. pombe foron illadas bastante máis tarde por Urs Leupold en 1946 e 1947 a partir dun cultivo que obtivo da colección de lévedos de Delft, nos Países Baixos. Fora depositada alí por A. Osterwalder co nome S. pombe var. liquefaciens, despois de que a illara en 1924 dun viño francés (moi probablemente picado) na Estación Experimental de Vinicultura e Horticultura de Wädenswil, Suíza. O cultivo utilizado por Urs Leupold contiña (entre outras) células cos tipos de apareamento h90 (cepa 968), h- (cepa 972), e h+ (cepa 975). Despois disto, fixéronse dous grandes esforzos para illar S. pombe de froitas, néctar, ou fermentacións: un feito por Florenzano et al.[8] nos viñedos do oeste de Sicilia, e o outro realizado por Gomes et al. (2002) en catro rexións do sueste de Brasil.[9]

Ecoloxía

O lévedo de fisión S. pombe pertence ao filo Ascomycota, que comprende o grupo máis grande e diverso dos fungos. Os ascomicetos de vida libre atópanse comunmente en exsudados de árbores, raíces de plantas e no solo que as rodea, en froitos podres e maduros, e en asociación con insectos vectores que os transportan entre distintos substratos. Moitas destas asociacións son simbióticas ou saprofíticas, aínda que numerosos ascomicetos (e os seus parentes basidiomicetos) son importantes patóxenos que atacan a moitas especies de plantas, incluíndo plantas agrícolas comerciais. Entre os xéneros de lévedos ascomicetos, os lévedos de fisión Schizosaccharomyces son os únicos que depositan a-(1,3)- glucano ou pseudonixerano na parede celular xunto cos mellor coñecidos b-glucanos e presentan unha carencia virtual de quitina. As especies deste xénero tamén difiren na composición de mananos, que presentan azucres terminais de D-galactosa nas cadeas laterais dos seus mananos. S. pombe realiza a fermentación aerobia en presenza de exceso de azucre.[10] S. pombe pode degradar ácido L-málico, un dos ácidos orgánicos dominantes no viño, o que os diferencia doutras cepas de lévedos do xénero Saccharomyces.

Comparación co lévedo de xemación Saccharomyces cerevisiae

As especies de lévedos Schizosaccharomyces pombe e Saccharomyces cerevisiae son ambas intensamente estudadas, e son importantes ferramentas na bioloxía molecular e celular. Algunhas características xenómicas e do ciclo celular que as diferencian son:

  • S. cerevisiae ten aproximadamente 5.600 marcos de lectura abertos; S. pombe ten uns 4.970.
  • Malia o seu número similar de xenes, S. cerevisiae ten só uns 250 intróns, mentres que S. pombe ten case 5.000.
  • S. cerevisiae ten 16 cromosomas; S. pombe ten 3.
  • S. cerevisiae é xeralmente diploide, mentres que S. pombe adoita a ser haploide.
  • S. cerevisiae permanece na fase G1 do ciclo celular durante extensos períodos de tempo (en consecuencia, a transición G1-S está estritamente controlada), mentres que S. pombe permanece na fase G2 do ciclo celular durante un longo período de tempo (en consecuencia, a transición G2-M está baixo estrito control).
  • Ambas as especies comparten xenes con eucariotas superiores que non comparten entre si. S. pombe ten xenes para a maquinaria de interferencia de ARN como os dos vertebrados, mentres que estes están ausentes en S. cerevisiae. S. cerevisiae tamén ten unha heterocromatina moi simplificada en comparación con S. pombe.[11] Inversamente, S. cerevisiae ten peroxisomas ben desenvolvidos, pero S. pombe non.
  • S. cerevisiae ten centrómeros puntuais pequenos de 125 bp, e orixes de replicación definidas por secuencias de aproximadamente o mesmo tamaño. Ao contrario, S. pombe ten centrómeros grandes, repetitivos de (40–100 kb) máis similares aos de mamíferos, e orixes de replicación dexeneradas de polo menos 1 kb.

Ciclo vital

 src=
Centrosoma de S. pombe.

O lévedo de fisión é un fungo unicelular cun xenoma simple e unha rápida taxa de crecemento. S. pombe ten forma de bastonciños de aproximadamente 3 µm de diámetro, e crece só por prolongación dos seus extremos. Despois da mitose, ten lugar a división pola formación dun septo ou placa celular que divide a célula no seu punto medio.

Os procesos principais da reprodución celular son a duplicación dos cromosomas, que ten lugar na fase S da interfase, seguida da segregación dos cromosomas e a división do núcleo (mitose) e a división do citoplasma (citocinese), que en conxunto forman a fase M (mitótica) do ciclo celular. G1 é o período entre as fases M e S, e G2 é o período entre as fases S e M. S. pombe permanece na fase G2 do ciclo celular durante un extenso período de tempo (a diferenza de Saccharomyces cerevisiae, que permanece moito tempo na fase G1).

A mitose dos lévedos de fisión está controlada por mecanismos similares aos dos organismos multicelulares animais. Normalmente prolifera nun estado haploide. Cando ten escaseza de alimentos, as células de tipos de apareamento opostos (P e M) fusiónanse formando un cigoto diploide, que inmediatamente entra en meiose, xerando catro esporas haploides nun asco. Cando melloran as condicións no seu medio, estas esporas xerminan e producen células haploides proliferantes.[12]

Citocinese no lévedo de fisión

Citocinese no lévedo de fisión.

As características xerais da citocinese móstranse aquí. O sitio onde se vai producir a división celular determínase antes da anafase. O fuso da anafase (en verde na fuigura) colócase despois de modo que os cromosomas segregados estean en lados opostos do plano de clivaxe predeterminado.

Control do tamaño no lévedo de fisión

A duración do ciclo celular do lévedo de fisión depende das condicións en canto á dispoñibilidade de nutrientes.

No lévedo de fisión, no cal o crecemento da célula controla a progresión da fase G2 á M, unha mutación chamada wee1 causa a entrada en mitose e un tamaño anormalmente pequeno, o que orixina unha fase G2 máis curta. A G1 está prolongada, o que suxire que a progresión desde o comezo do ciclo responde ao crecemento cando se perde o control G2/M. Ademais, as células que están en condicións pobres en nutrientes crecen lentamente e lévalles máis tempo duplicar o seu tamaño e dividirse. Os niveis baixos de nutrientes tamén cambian o limiar de crecemento da célula para que a célula avance polo ciclo celular con tamaños menores. Despois dunha exposición a condicións estresantes (calor a 40 °C ou axentes oxidantes como o peróxido de hidróxeno) as células de S. pombe sofren un envellecemento que se mide polo incremento do tempo de división celular e o aumento da probabilidade de morte celular.[13] Finalmente, as células coa mutación wee1 son menores que as de tipo silvestre, pero lévalles o dobre de tempo completar o ciclo celular. Isto é posible porque as células máis pequenas crecen máis lentamente, é dicir, a súa masa sumada total por unidade de tempo é menor que a das células normais.

Crese que un gradiente espacial coordina o tamaño celular e a entrada na mitose.[14][15][16] A proteína quinase Pom1 está localizada no córtex celular, e ten a súa maior concentración nos extremos da célula. Os reguladores do ciclo celular Cdr2, Cdr1 e Wee1 están presentes en nodos corticais da parte media da célula. Nas células pequenas, o gradiente Pom1 chega á maioría dos nodos corticais. Pom1 inhibe Cdr2, impedindo que Cdr2 e Cdr1 inhiban Wee1, e permitindo que Wee1 fosforile Cdk1, o que inactiva a actividade de quinase dependente de ciclina (CDK) e impide a entrada na mitose. En células longas, o gradiente de Pom1 non chega aos nodos corticais, e, por tanto, Cdr2 e Cdr1 permanecen activas nos nodos. Cdr2 e Cdr1 inhiben Wee1, impedindo a fosforilación de Cdk1, o que leva á activación de CDK e a entrada na mitose. (Hai ademais varios outros reguladores da actividade de CDK.)

Cambios de tipo de apareamento no lévedo de fisión

Os lévedos de fisión cambian os tipos de apareamento por un evento de recombinación acoplado á replicación, que ten lugar durante a fase S do ciclo celular. Os lévedos de fisión usan asimetría intrínseca no proceso de replicación do ADN para cambiar o tipo de apareamento; foi o primeiro sistema no que se viu que se requiría unha dirección da replicación para o cambio de tipo celular. Os estudos do sistema de cambio do tipo de apareamento levaron ao descubrimento e caracterización do sitio RTS1 de terminación da replicación específico de sitio, e a un sitio MPS1 de pausa de replicación específico de sitio MPS1, e tamén a un novo tipo de impronta cromosómica, que marca unha das cromátides irmás no locus de tipo de apareamento mat1. Ademais, os traballos sobre a rexión doante silenciada levaron a grandes avances na comprensión da formación e mantemento da heterocromatina.[17]

Respostas aos danos no ADN

S. pombe é un microorganismo sexual facultativo que pode aparearse cando os nutrientes son limitados.[18] A exposición de S. pombe ao peróxido de hidróxeno, que é un axente que causa estrés oxidativo, orixina danos oxidativos no ADN, o que induce fortemente o apareamento entre os lévedos de fisión e a formación de esporas meióticas.[19] Este descubrimento suxire que a meiose, e especialmente a recombinación meiótica, poden ser unha adaptación para reparar o ADN danado.[20][21] Un descubrimento que apoia esta idea é que as lesións que afectan a unha soa base do ADN do tipo dU:dG en S. pombe estimulan a recombinación meiótica.[22] Esta recombinación require a actuación da uracilo-ADN glicosilase, un encima que quita o uracilo do ADN e inicia a reparación de excisión de base. Baseándose neste descubrimento, propúxose que a reparación de excisión de base dunha base uracilo, ou dun sitio abásico, ou dunha rotura ou amosega dunha soa febra do ADN é suficiente para iniciar a recombinación en S. pombe.[22] Outros experimentos feitos con S. pombe indicaron que o procesamento defectuoso dos intermediarios da replicación do ADN, é dicir, os fragmentos de Okazaki, causan danos no ADN, como roturas ou amosegas dunha soa febra ou ocos (gaps), e que isto estimula a recombinación meiótica.[23]

O lévedo de fisión como sistema modelo

O lévedo de fisión converteuse nun notable sistema modelo para estudar procesos básicos da célula que poden utilizarse para comprender o funcionamento de organismos máis complexos como os mamíferos e especialmente o home.[24][25] Este eucariota unicelular non é patóxeno e é facilmente cultivable e manipulable no laboratorio.[26] O lévedo de fisión é un dos eucariotas secuenciados que contén un menor número de xenes no seu xenoma, e ten só tres cromosomas.[27] Moitos deses xenes que son responsables do control da división celular e da organización da célula no lévedo de fisión, teñen xenes homólogos no xenoma humano.[26][28][29] A regulación do ciclo celular e da división son cruciais para o crecemento e desenvolvemento das células. Os xenes conservados do lévedo de fisión foron moi estudados e isto influíu en moitos desenvolvementos biomédicos recentes.[30][31] O lévedo de fisión é tamén un sistema modelo práctico para observar a división celular, que se pode seguir facilmente polo microscopio.[26] Ademais, ten un tempo de xeración extremadamente curto de só 2 a 4 horas, o que facilita a súa observación e cultivo no laboratorio.[28] A simplicidade da estrutura xenómica do lévedo de fisión pero con semellanzas cos xenomas de mamíferos, a facilidade para manipulalo, e a capacidade de usalo para análises de fármacos son as principais razóns polas que se usa tanto en biomedicina, bioloxía celular e en análises xenéticas.[28][32][33][34]

Xenoma de S. pombe

S. pombe utilízase para o estudo da división e crecemento celular debido ás rexións xenómicas conservadas que tamén se encontran en humanos, como son: proteínas da heterocromatina, orixes de replicación grandes, centrómeros grandes, puntos de control celular conservados, función dos telómeros, splicing de xenes, e outros procesos celulares.[27][35][36] O xenoma de S. pombe foi completamente secuenciado en 2002, e foi o sexto xenoma eucariótico secuenciado como parte do Proxecto Xenoma. Descubríronse uns 4.979 xenes nos seus tres cromosomas, que contiñan uns 14 Mb de ADN, con ocos nas rexións centroméricas (40kb) e teloméricas (260kb).[27] Despois da secuenciación inicial do seu xenoma, secuenciáronse outras rexións previamente non secuenciadas. A análise estrutural e funcional de todas estas rexións xénicas pode atoparse en bases de datos como PomBase.[37]

O lévedo de fisión non ten tantos xenes duplicados coma o lévedo de xemación, xa que estes supoñen só o 5%, o que fai deste organismo un gran modelo xenómico para investigar. O 40% dos xenes contiñan intróns, o que é un número elevado e dá a oportunidade de incrementar o número de tipos de proteínas producidos por medio de empalme alternativo.[27] Secuenciouse tamén o 81% dos seus tres centrómeros. As lonxitudes dos tres centrómeros son 34, 65, e 110 kb. Isto é de 300 a 100 veces meirandes que os do lévedo de xemación. Tamén se observou un extraordinariamente alto nivel de conservación (97%) nunha rexión de 1.780 bp nas rexións DGS do centrómero. Este alongamento dos centrómeros e as súas secuencias conservadas fano moi axeitado para o estudo da división celular, polo seu parecido coa humana.[27][38][39]

Durante o proxecto xenómico de S. pombe atopáronse 50 xenes que codifican proteínas ou mutacións que están ligadas con doenzas humanas, e case a metade (23) están relacionados co cancro.[27] Por tanto, estase usando para estudar xenes humanos, vías metabólicas de doenzas, a división celular e sistemas de comprobacion ou puntos de control (checkpoints) do ADN.[39][40][41][42]

Análise do ciclo celular

A replicación do ADN neste lévedo está sendo crecementemente estudada. Unha maior comprensión da replicación do ADN, expresión xénica e mecanismos conservados neste lévedo pode proporcionar información sobre eses procesos en mamíferos e no home.[36][43][44][45] Outros procesos, como o crecemento celular e o envellecemento son tamén estudados para comprender a partir deles outros sistemas máis complexos.[29][46][47][48]

A citocinese é un dos compoñentes da división celular que tamén se estuda no lévedo de fisión. Nel obsérvanse compoñentes ben conservados da citocinese que nos permiten estudar mutacións puntuais noutros escenarios xenómicos.[41][49][50][50][51] A citocinese é unha etapa crucial para a célula.[52] A formación do anel contráctil durante a citocinese está sendo moi estudada en S. pombe, xa que está moi conservado con respecto aos humanos.[41] As mutacións na citocinese poden orixinar un mal funcionamento da célula ou mesmo a morte celular e o desenvolvemento de células cancerosas.[41] Este é un proceso complexo na división das células humanas, pero é máis doado de estudar en S. pombe.

Unha das precaucións que toma a célula para asegurarse de que está tendo lugar unha división celular correcta é a existencia dunha serie de puntos de control ou checkpoints,[53][54] os cales aseguran que os mutantes serán eliminados.[55] Isto faise xeralmente por sinais que estimulan a ubiquitinación das dianas e atrasan a citocinese.[27] Sen estes puntos de control mitóticos, créanse e replícanse os mutantes, o que dá lugar a morte celular ou xeración de tumores. Paul Nurse, Leland Hartwell, e Tim Hunt recibiron o Premio Nobel de Fisioloxía e Medicina de 2001 polos seus descubrimentos de puntos de control claves conservados esenciais para que as células se dividan correctamente. Isto está ligado co cancro e células enfermas e foi moi importante en biomedicina.[56]

Tamén se estudou a dinámica de orgánulos e as respostas e posibles correlacións entre as células do lévedo e as de mamíferos.[57][58] As enfermidades mitocondriais e varios sistemas de orgánulos como o aparato de Golgi e o retículo endoplasmático poden comprenderse mellor estudando neste organismo modelo a dinámica dos cromosomas, os niveis de expresión de proteínas e a súa regulación.[42][44][59][60][60][61][62]

Ferramenta biomédica

Malia todo, hai tamén limitacións á hora de usar o lévedo de fisión como sistema modelo, debido á súa resistencia a múltiples fármacos. A resposta de resistencia a múltiples fármacos débese entre outras razóns á sobreexpresión de bombas de efluxo de drogas.[30] Paul Nurse e colegas crearon recentemente cepas de S. pombe sensibles a inhibidores químicos e a sondas de uso común para ver se é posible utilizar o lévedo de fisión como sistema modelo na investigación de fármacos.[30]

Por exemplo a doxorrubicina, un antibiótico quimioterapéutico moi común, ten moitos efectos adversos. Estanse buscando maneiras de comprender mellor como actúa a doxorrubicina observando os xenes ligados á resistencia usando o lévedo de fisión como sistema modelo. Atopátonse ligazóns entre os efectos adversos da doxorrubicina e o metabolismo de cromosomas e transporte de membrana. Os modelos metabólicos para a dirixir os fármacos ao punto desexado (drug targeting) están utilizándose agora en biotecnoloxía, e agárdanse máis avances no futuro usando como sistema modelo S. pombe.[31]

Enfoques experimentais

O lévedo de fisión é facilmente accesible, fácil de cultivar e manipular para crear mutantes, e poden manterse nun estado haploide ou diploide. Normalmente é unha célula haploide, pero posto en condicións de estrés, xeralmente deficiencia de nitróxeno, dúas células conxúganse para formar unha diploide que posteriormente forma catro esporas nun asco de tétrade.[63] Este proceso é doadamente visible e observable con microscopio e permite estudar o funcionamento da meiose.

Virtualmente pode aplicarse calquera experimento xenético ou técnica pode a este sistema modelo, como as seguintes: disección de tétrades, análise de mutáxenos, transformacións, e técnicas de microscopia como FRAT e FREP. Estánse usando tamén novos modelos como Tug-Of-War (gTOW) para analizar a robustez do lévedo e observar a súa expresión xenética. É doado preparar nel experimentos de knock-in e knockout de xenes, e como o xenoma do lévedo foi secuenciado esta tarefa é moi accesible e ben coñecida.[64][65]

Notas

  1. Wilhelm; et al. (2008). "Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution". Nature 453 (7199): 1239–1243. doi:10.1038/nature07002.
  2. Leupold, U (1950). "Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe". CR Trav Lab Carlsberg Ser Physiol 24: 381–480.
  3. Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics . New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press. p 125–128.
  4. Mitchison, JM (1957). "The growth of single cells. I. Schizosaccharomyces pombe". Exp Cell Res 13: 244–262. doi:10.1016/0014-4827(57)90005-8.
  5. Mitchison, JM (1990). "My favourite cell: The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe". BioEssays 4: 189–191. doi:10.1002/bies.950120409.
  6. Matsuyama; et al. (2006). "ORFeome cloning and global analysis of protein localization in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe". Nature Biotechnology 24 (7): 841–847. doi:10.1038/nbt1222.
  7. Teoh, Ai Leng (September 2004). "Yeast ecology of Kombucha fermentation". International Journal of Food Microbiology 95 (2): 119–26. PMID 15282124. doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2003.12.020.
  8. Florenzano; et al. (1977). "Contributo alla ecologia dei lieviti Schizosaccharomyces sulle uve". Vitis 16: 38–44.
  9. Gómez; et al. (2002). "Fission yeast enters a joyful new era". Genome Biol 3 (6): 4017. doi:10.1186/gb-2002-3-6-reports4017.
  10. Lin; et al. (2011). "The evolution of aerobic fermentation in Schizosaccharomyces pombe was associated with regulatory reprogramming but not nucleosome reorganization". Mol Biol Evol 28 (4): 1407–13. doi:10.1093/molbev/msq324.
  11. Grunstein, Michael, and Susan Gasser. "Epigenetics in Saccharomyces cerevisiae." Epigenetics. 1. Cold Spring Harbor Press, 2007.
  12. Cell Cycle. Principles of Control" by David O Morgan, Primers in Biology
  13. Coelho M, Dereli A, Haese A; et al. (October 2013). "Fission Yeast Does Not Age under Favorable Conditions, but Does So after Stress". Curr. Biol. 23 (19): 1844–52. PMID 24035542. doi:10.1016/j.cub.2013.07.084.
  14. A spatial gradient coordinates cell size and mitotic entry in fission yeast by James B. Moseley, Adeline Mayeux, Anne Paoletti & Paul Nurse, Nature, 11 June 2009
  15. Polar gradients of the DYRK-family kinase Pom1 couple cell length with the cell cycle. Sophie G Martin and Martine Berthelot-Grosjean. Nature. 2009
  16. Sawin, Kenneth E. (2009). "Cell cycle: Cell division brought down to size". Nature 459 (7248): 782–783. doi:10.1038/459782a.
  17. Lessons learned from studies of fission yeast mating-type switching and silencing by Amar J.S. Klar, Annual Review of Genetics, 5 July 2007
  18. Davey J (December 1998). "Fusion of a fission yeast". Yeast 14 (16): 1529–66. PMID 9885154. doi:10.1002/(SICI)1097-0061(199812)14:16<1529::AID-YEA357>3.0.CO;2-0.
  19. Bernstein C, Johns V (April 1989). "Sexual reproduction as a response to H2O2 damage in Schizosaccharomyces pombe". J. Bacteriol. 171 (4): 1893–7. PMC 209837. PMID 2703462.
  20. Bernstein H and Bernstein C (2013). Evolutionary Origin and Adaptive Function of Meiosis. “Meiosis,” Dr. Carol Bernstein (Ed.), ISBN 978-953-511-197-9, InTech, http://www.intechopen.com/books/meiosis/evolutionary-origin-and-adaptive-function-of-meiosis
  21. Elvira Hörandl (2013). Meiosis and the Paradox of Sex in Nature, Meiosis, Dr. Carol Bernstein (Ed.), ISBN 978-953-511-197-9, InTech, DOI: 10.5772/56542. Available from: http://www.intechopen.com/books/meiosis/meiosis-and-the-paradox-of-sex-in-nature
  22. 22,0 22,1 Pauklin S, Burkert JS, Martin J; et al. (May 2009). "Alternative induction of meiotic recombination from single-base lesions of DNA deaminases". Genetics 182 (1): 41–54. PMC 2674839. PMID 19237686. doi:10.1534/genetics.109.101683.
  23. Farah JA, Cromie G, Davis L, Steiner WW, Smith GR (December 2005). "Activation of an alternative, rec12 (spo11)-independent pathway of fission yeast meiotic recombination in the absence of a DNA flap endonuclease". Genetics 171 (4): 1499–511. PMC 1456079. PMID 16118186. doi:10.1534/genetics.105.046821.
  24. Forsburg, S. L. (Jun 2005). "The yeasts Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe: models for cell biology research". Gravit Space Biol Bull 18 (2): 3–9. PMID 16038088.
  25. Forsburg, Susan L; Rhind, Nicholas (February 2006). "Basic methods for fission yeast". Yeast 23 (3): 173–183. doi:10.1002/yea.1347.
  26. 26,0 26,1 26,2 Wixon, Jo (2002). "Featured Organism: Schizosaccharomyces pombe, The Fission Yeast". Comparative and Functional Genomics 3 (2): 194–204. doi:10.1002/cfg.92.
  27. 27,0 27,1 27,2 27,3 27,4 27,5 27,6 Wood, V.; Gwilliam, R.; Rajandream, M.-A.; Lyne, M.; Lyne, R.; Stewart, A.; Sgouros, J.; Peat, N.; Hayles, J.; Baker, S.; Basham, D.; Bowman, S.; Brooks, K.; Brown, D.; Brown, S.; Chillingworth, T.; Churcher, C.; Collins, M.; Connor, R.; Cronin, A.; Davis, P.; Feltwell, T.; Fraser, A.; Gentles, S.; Goble, A.; Hamlin, N.; Harris, D.; Hidalgo, J.; Hodgson, G.; Holroyd, S.; Hornsby, T.; Howarth, S.; Huckle, E. J.; Hunt, S.; Jagels, K.; James, K.; Jones, L.; Jones, M.; Leather, S.; McDonald, S.; McLean, J.; Mooney, P.; Moule, S.; Mungall, K.; Murphy, L.; Niblett, D.; Odell, C.; Oliver, K.; O'Neil, S.; Pearson, D.; Quail, M. A.; Rabbinowitsch, E.; Rutherford, K.; Rutter, S.; Saunders, D.; Seeger, K.; Sharp, S.; Skelton, J.; Simmonds, M.; Squares, R.; Squares, S.; Stevens, K.; Taylor, K.; Taylor, R. G.; Tivey, A.; Walsh, S.; Warren, T.; Whitehead, S.; Woodward, J.; Volckaert, G.; Aert, R.; Robben, J.; Grymonprez, B.; Weltjens, I.; Vanstreels, E.; Rieger, M.; Schäfer, M.; Müller-Auer, S.; Gabel, C.; Fuchs, M.; Fritzc, C.; Holzer, E.; Moestl, D.; Hilbert, H.; Borzym, K.; Langer, I.; Beck, A.; Lehrach, H.; Reinhardt, R.; Pohl, T. M.; Eger, P.; Zimmermann, W.; Wedler, H.; Wambutt, R.; Purnelle, B.; Goffeau, A.; Cadieu, E.; Dréano, S.; Gloux, S.; Lelaure, V.; Mottier, S.; Galibert, F.; Aves, S. J.; Xiang, Z.; Hunt, C.; Moore, K.; Hurst, S. M.; Lucas, M.; Rochet, M.; Gaillardin, C.; Tallada, V. A.; Garzon, A.; Thode, G.; Daga, R. R.; Cruzado, L.; Jimenez, J.; Sánchez, M.; del Rey, F.; Benito, J.; Domínguez, A.; Revuelta, J. L.; Moreno, S.; Armstrong, J.; Forsburg, S. L.; Cerrutti, L.; Lowe, T.; McCombie, W. R.; Paulsen, I.; Potashkin, J.; Shpakovski, G. V.; Ussery, D.; Barrell, B. G.; Nurse, P. (21 February 2002). "The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe". Nature 415 (6874): 871–880. PMID 11859360. doi:10.1038/nature724.
  28. 28,0 28,1 28,2 Forsburg, Susan L. "PombeNet".
  29. 29,0 29,1 Das, M. (2007). "Regulation of Cell Diameter, For3p Localization, and Cell Symmetry by Fission Yeast Rho-GAP Rga4p". Molecular Biology of the Cell 18 (6): 2090–2101. doi:10.1091/mbc.E06-09-0883.
  30. 30,0 30,1 30,2 Kawashima, Shigehiro A.; Takemoto, Ai; Nurse, Paul; Kapoor, Tarun M. (July 2012). "Analyzing Fission Yeast Multidrug Resistance Mechanisms to Develop a Genetically Tractable Model System for Chemical Biology". Chemistry & Biology 19 (7): 893–901. doi:10.1016/j.chembiol.2012.06.008.
  31. 31,0 31,1 Tay, Zoey; Eng, Ru Jun; Sajiki, Kenichi; Lim, Kim Kiat; Tang, Ming Yi; Yanagida, Mitsuhiro; Chen, Ee Sin; Mata, Juan (24 January 2013). "Cellular Robustness Conferred by Genetic Crosstalk Underlies Resistance against Chemotherapeutic Drug Doxorubicin in Fission Yeast". PLoS ONE 8 (1): e55041. doi:10.1371/journal.pone.0055041.
  32. Davey, John (December 1998). "Fusion of a fission yeast". Yeast 14 (16): 1529–1566. PMID 9885154. doi:10.1002/(SICI)1097-0061(199812)14:16<1529::AID-YEA357>3.0.CO;2-0.
  33. Forsburg, Susan L (2006). "Basic methods for fission yeast". Yeast 23 (3): 173–183. doi:10.1002/yea.1347.
  34. Forsburg, S. L. (Sep 1999). "The best yeast?". Trends Genet 15 (9): 340–4. PMID 10461200. doi:10.1016/s0168-9525(99)01798-9.
  35. Sabatinos, S. A.; Mastro, T. L.; Green, M. D.; Forsburg, S. L. (12 November 2012). "A Mammalian-Like DNA Damage Response of Fission Yeast to Nucleoside Analogs". Genetics 193 (1): 143–157. doi:10.1534/genetics.112.145730.
  36. 36,0 36,1 Hayano, M.; Kanoh, Y.; Matsumoto, S.; Renard-Guillet, C.; Shirahige, K.; Masai, H. (25 January 2012). "Rif1 is a global regulator of timing of replication origin firing in fission yeast". Genes & Development 26 (2): 137–150. doi:10.1101/gad.178491.111.
  37. "PomBase Series Edition". The EMBL-European Bioinformatics Institute. Wellcome Trust Genome Campus Place Published: Hinxton, Cambridge.
  38. Burrack, Laura S.; Berman, Judith (22 June 2012). "Neocentromeres and epigenetically inherited features of centromeres". Chromosome Research 20 (5): 607–619. doi:10.1007/s10577-012-9296-x.
  39. 39,0 39,1 Stimpson, Kaitlin M.; Matheny, Justyne E.; Sullivan, Beth A. (17 July 2012). "Dicentric chromosomes: unique models to study centromere function and inactivation". Chromosome Research 20 (5): 595–605. doi:10.1007/s10577-012-9302-3.
  40. Kadura, Sheila; Sazer, Shelley (July 2005). "SAC-ing mitotic errors: How the spindle assembly checkpoint (SAC) plays defense against chromosome mis-segregation". Cell Motility and the Cytoskeleton 61 (3): 145–160. doi:10.1002/cm.20072.
  41. 41,0 41,1 41,2 41,3 Lee, I-Ju; Coffman, Valerie C.; Wu, Jian-Qiu (October 2012). "Contractile-ring assembly in fission yeast cytokinesis: Recent advances and new perspectives". Cytoskeleton 69 (10): 751–763. doi:10.1002/cm.21052.
  42. 42,0 42,1 Teresa, Rinaldi, (2010). "Mitochondrial diseases and the role of the yeast models". FEMS Mini Review.
  43. Mojardín, Laura; Vázquez, Enrique; Antequera, Francisco (November 2013). "Specification of DNA Replication Origins and Genomic Base Composition in Fission Yeasts". Journal of Molecular Biology 425 (23): 4706–4713. doi:10.1016/j.jmb.2013.09.023.
  44. 44,0 44,1 Forsburg, S. L. (Apr 2002). "Only connect: linking meiotic DNA replication to chromosome dynamics". Mol Cell 9 (4): 703–11.
  45. Moriya, Hisao; Chino, Ayako; Kapuy, Orsolya; Csikász-Nagy, Attila; Novák, Béla (6 December 2011). "Overexpression limits of fission yeast cell-cycle regulators in vivo and in silico". Molecular Systems Biology 7 (1): 556. doi:10.1038/msb.2011.91.
  46. Das, Maitreyi; Wiley, David J.; Chen, Xi; Shah, Kavita; Verde, Fulvia (August 2009). "The Conserved NDR Kinase Orb6 Controls Polarized Cell Growth by Spatial Regulation of the Small GTPase Cdc42". Current Biology 19 (15): 1314–1319. doi:10.1016/j.cub.2009.06.057.
  47. Moseley, James B. (October 2013). "Cellular Aging: Symmetry Evades Senescence". Current Biology 23 (19): R871–R873. PMID 24112980. doi:10.1016/j.cub.2013.08.013.
  48. Cooper, S. (2013). "Schizosaccharomyces pombe grows exponentially during the division cycle with no rate change points.". FEMS Yeast Res.
  49. Cadou, Angela (2013). "The Kin1 kinase and the calcineurin phosphatase cooperate to link actin ring assembly and septum synthesis in fission yeast". Biology of the Cell 105 (3): 129–148. doi:10.1111/boc.201200042.
  50. 50,0 50,1 Cadou, Angela; Couturier, Anne; Le Goff, Cathy; Xie, Linfeng; Paulson, James R.; Le Goff, Xavier (March 2013). "The Kin1 kinase and the calcineurin phosphatase cooperate to link actin ring assembly and septum synthesis in fission yeast". Biology of the Cell 105 (3): 129–148. doi:10.1111/boc.201200042.
  51. Balazs, Anita; Batta, Gyula; Miklos, Ida; Acs-Szabo, Lajos; Vazquez de Aldana, Carlos R.; Sipiczki, Matthias (March 2012). "Conserved regulators of the cell separation process in Schizosaccharomyces". Fungal Genetics and Biology 49 (3): 235–249. doi:10.1016/j.fgb.2012.01.003.
  52. Rincon, Sergio A.; Paoletti, Anne (October 2012). "Mid1/anillin and the spatial regulation of cytokinesis in fission yeast". Cytoskeleton 69 (10): 764–777. doi:10.1002/cm.21056.
  53. Das, M (2010). "Microtubule-dependent spatial organization of mitochondria in fission yeast Journal". Methods Cell BIo 97: 203–21. PMID 20719273. doi:10.1016/S0091-679X(10)97012-X.
  54. Fraser, Hunter B (2013). "Cell-cycle regulated transcription associates with DNA replication timing in yeast and human". Genome Biology 14 (10): R111. doi:10.1186/gb-2013-14-10-r111.
  55. Li. C. Green, M. D. Forsburg, S. L. (2013). "Mutations disrupting histone methylation have different effects on replication timing in S. pombe centromere". PLoS ONE 8 (4): e61464. PMID 23658693. doi:10.1371/journal.pone.0061464.
  56. "The Official Site of the Nobel Prize".
  57. Zhao J, Lendahl U, Nistér M. (2012). "Regulation of mitochondrial dynamics: convergences and divergences between yeast and vertebrates.". J Biomed Biotechnol 70 (6): 951–76. doi:10.1007/s00018-012-1066-6.
  58. Abelovska, Lenka (2011). "Mitochondria as protean organelles: membrane processes that influence mitochondrial shape in yeast". General physiology and biophysics 30 (05): 13–24. doi:10.4149/gpb_2011_SI1_13.
  59. Chino, Ayako; Makanae, Koji; Moriya, Hisao; Bähler, Jürg (3 September 2013). "Relationships between Cell Cycle Regulator Gene Copy Numbers and Protein Expression Levels in Schizosaccharomyces pombe". PLoS ONE 8 (9): e73319. doi:10.1371/journal.pone.0073319.
  60. 60,0 60,1 Raychaudhuri, Sumana; Young, Barry P; Espenshade, Peter J; Loewen, Christopher JR (August 2012). "Regulation of lipid metabolism: a tale of two yeasts". Current Opinion in Cell Biology 24 (4): 502–508. doi:10.1016/j.ceb.2012.05.006.
  61. Babu, Mohan; Vlasblom, James; Pu, Shuye; Guo, Xinghua; Graham, Chris; Bean, Björn D. M.; Burston, Helen E.; Vizeacoumar, Franco J.; Snider, Jamie; Phanse, Sadhna; Fong, Vincent; Tam, Yuen Yi C.; Davey, Michael; Hnatshak, Olha; Bajaj, Navgeet; Chandran, Shamanta; Punna, Thanuja; Christopolous, Constantine; Wong, Victoria; Yu, Analyn; Zhong, Gouqing; Li, Joyce; Stagljar, Igor; Conibear, Elizabeth; Wodak, Shoshana J.; Emili, Andrew; Greenblatt, Jack F. (2 September 2012). "Interaction landscape of membrane-protein complexes in Saccharomyces cerevisiae". Nature 489 (7417): 585–589. doi:10.1038/nature11354.
  62. Suda, Yasuyuki (2011). "The Yeast Golgi Apparatus". Traffic 13 (4): 505–510. PMID 22132734. doi:10.1111/j.1600-0854.2011.01316.x.
  63. Forsburg, Susan L. (2013). "PombeNet". Consultado o Sep 2013.
  64. "Trans-NIH.pombe Initiative". 2002.
  65. Green, M. D. Sabatinos, S. A. Forsburg, S. L. (2009). "Microscopy techniques to examine DNA replication in fission yeast Journal". Methods Mol Biol 521: 463–82. PMID 19563123. doi:10.1007/978-1-60327-815-7_26.

Véxase tamén

Outros artigos

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores e editores de Wikipedia

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Galissian )

fornì da wikipedia gl Galician

Schizosaccharomyces pombe, tamén chamado "lévedo de fisión", é unha especie de lévedo utilizado na fabricación de certas cervexas tradicionais e como organismo modelo en investigacións de bioloxía molecular e bioloxía celular. É un eucariota do reino dos fungos formado por células cilíndricas con forma de bastón (parecen bacilos, pero máis grandes). As células miden xeralmente de 3 a 4 micrómetros de diámetro e de 7 a 14 micrómetros de lonxitude. O seu xenoma, que é de aproximadamente 14,1 millóns de pares de bases, estímase que contén uns 4.970 xenes codificantes de proteínas e polo menos 450 ARNs non codificantes.

Estas células manteñen a súa forma ao creceren exclusivamente polos extremos da célula e dividirse por fisión binaria medial para producir dúas células fillas de igual tamaño, o que o fai un poderoso modelo para estudar o ciclo celular.

O lévedo de fisión foi illado en 1893 por Paul Lindner da cervexa de millo miúdo producida no leste de África. O nome da especie pombe é unha palabra da lingua swahili que significa cervexa. Na década de 1950 empezou a utilizarse como modelo experimental por Urs Leupold para estudos de xenética, e por Murdoch Mitchison para estudar o ciclo celular. O investigador do lévedo de fisión Paul Nurse conseguiu unir as dúas escolas ata entón independentes dos estudos xenéticos e do ciclo celular. Xunto con Lee Hartwell e Tim Hunt, Nurse gañou o Premio Nobel de Medicina de 2001 polos seus traballos sobre a regulación dio ciclo celular.

A secuencia do xenoma de S. pombe foi publicada en 2002 por un consorcio liderado polo Sanger Institute, converténdose no sexto modelo de organismo eucariótico cuxo xenoma foi secuenciado completamente. Isto fixo del un poderoso organismo modelo, xa que se identificaron nel moitos xenes homólogos de enfermidades humanas. En 2006, foi publicada a localización subcelular de case todas as proteínas de S. pombe utilizando a proteína fluorescente verde como etiqueta molecular.

S. pombe é tamén un organismo importante para estudar as respostas celulares aos danos no ADN e o proceso da replicación do ADN.

Illáronse aproximadamente 160 cepas naturais de S. pombe. Foron recollidas en varias localizacións de diversas partes do mundo como Europa, Norte e Sudamérica, e Asia. A maioría destas cepas recolléronse de froitas cultivadas como mazás e uvas, ou de diversas bebidas alcohólicas, como por exemplo a cachaza brasileira. S. pombe tamén está presente no té fermentado kombucha. Porén, non está claro se en ditas bebidas S. pombe é o principal fermentador ou é máis ben un contaminante. A ecoloxía natural dos lévedos Schizosaccharomyces aínda non está ben estudada.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores e editores de Wikipedia

Schizosaccharomyces pombe ( Indonesian )

fornì da wikipedia ID

Schizosaccharomyces pombe, juga disebut "khamir fisi", adalah spesies khamir yang digunakan dalam pembuatan bir tradisional dan sebagai organisme model dalam biologi molekuler dan biologi sel. S. pombe adalah eukariota uniseluler, yang selnya berbentuk batang. Sel biasanya berdiameter 3 sampai 4 mikrometer dan panjang 7 sampai 14 mikrometer. Genomnya, yang kira-kira 14,1 juta pasangan basa, diperkirakan mengandung 4.970 gen pengkode protein dan setidaknya 450 RNA bukan pengode.[1]

Sel-sel S. pombe mempertahankan bentuknya dengan tumbuh secara eksklusif melalui ujung sel dan membelah dengan fisi medial untuk menghasilkan dua sel anak dengan ukuran yang sama, yang membuat S. pombe menjadi alat yang hebat dalam penelitian siklus sel.

Khamir fisi diisolasi pada tahun 1893 oleh Paul Lindner dari bir millet Afrika Timur. Nama spesies pombe adalah bahasa Swahili untuk bir. S. pombe pertama kali dikembangkan sebagai model eksperimental pada tahun 1950an: oleh Urs Leupold untuk mempelajari genetika,[2][3] dan oleh Murdoch Mitchison untuk mempelajari siklus sel.[4][5][6]

Paul Nurse, seorang peneliti khamir fisi, berhasil menggabungkan sekolah independen genetika khamir fisi dan penelitian siklus sel. Bersama dengan Lee Hartwell dan Tim Hunt, Nurse memenangkan Penghargaan Nobel Fisiologi atau Kedokteran tahun 2001 untuk karya mereka mengenai regulasi siklus sel.

Urutan genom S. pombe diterbitkan pada tahun 2002, oleh sebuah konsorsium yang dipimpin oleh Sanger Institute, menjadi organisme model eukariotik keenam yang genomnya telah sepenuhnya diurutkan. Ini telah sepenuhnya membuka kekuatan organisme ini, dengan banyak gen yang homolog dengan gen penyakit manusia diidentifikasi. Pada tahun 2006, lokalisasi sub-seluler hampir semua protein di S. pombe diterbitkan dengan menggunakan protein fluoresen hijau sebagai label molekuler.[7]

Schizosaccharomyces pombe juga telah menjadi organisme penting dalam mempelajari respons seluler terhadap kerusakan DNA dan proses replikasi DNA.

Sekitar 160 strain alami S. pombe telah diisolasi. Strain-strain ini telah dikumpulkan dari berbagai lokasi termasuk Eropa, Amerika Utara dan Selatan, dan Asia. Mayoritas strain ini dikumpulkan dari buah-buahan yang dibudidayakan seperti apel dan anggur, atau dari berbagai minuman beralkohol, seperti Cachaça Brasil. S. pombe juga ada dalam teh fermentasi, kombucha.[8] Tidak jelas sekarang apakah S. pombe adalah pemfermentasi utama atau kontaminan di minuman tersebut. Ekologi alami khamir Schizosaccharomyces tidak diketahui dengan baik.

Referensi

  1. ^ Wilhelm; et al. (2008). "Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution". Nature. 453 (7199): 1239–1243. doi:10.1038/nature07002. PMID 18488015.
  2. ^ Leupold, U (1950). "Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe". CR Trav Lab Carlsberg Ser Physiol. 24: 381–480.
  3. ^ Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics . New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press. p 125–128.
  4. ^ Mitchison, JM (1957). "The growth of single cells. I. Schizosaccharomyces pombe". Exp Cell Res. 13: 244–262. doi:10.1016/0014-4827(57)90005-8.
  5. ^ Mitchison, JM (1990). "My favourite cell: The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe". BioEssays. 4: 189–191. doi:10.1002/bies.950120409.
  6. ^ Fantes PA; Hoffman CS (2016). "A Brief History of Schizosaccharomyces pombe Research: A Perspective Over the Past 70 Years". Genetics. 203 (2): 621–9. doi:10.1534/genetics.116.189407. PMID 27270696.
  7. ^ Matsuyama; et al. (2006). "ORFeome cloning and global analysis of protein localization in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe". Nature Biotechnology. 24 (7): 841–847. doi:10.1038/nbt1222. PMID 16823372.
  8. ^ Teoh, Ai Leng (September 2004). "Yeast ecology of Kombucha fermentation". International Journal of Food Microbiology. 95 (2): 119–26. doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2003.12.020. PMID 15282124.

Pranala luar

Templat:Organisme model


licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Penulis dan editor Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia ID

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Indonesian )

fornì da wikipedia ID

Schizosaccharomyces pombe, juga disebut "khamir fisi", adalah spesies khamir yang digunakan dalam pembuatan bir tradisional dan sebagai organisme model dalam biologi molekuler dan biologi sel. S. pombe adalah eukariota uniseluler, yang selnya berbentuk batang. Sel biasanya berdiameter 3 sampai 4 mikrometer dan panjang 7 sampai 14 mikrometer. Genomnya, yang kira-kira 14,1 juta pasangan basa, diperkirakan mengandung 4.970 gen pengkode protein dan setidaknya 450 RNA bukan pengode.

Sel-sel S. pombe mempertahankan bentuknya dengan tumbuh secara eksklusif melalui ujung sel dan membelah dengan fisi medial untuk menghasilkan dua sel anak dengan ukuran yang sama, yang membuat S. pombe menjadi alat yang hebat dalam penelitian siklus sel.

Khamir fisi diisolasi pada tahun 1893 oleh Paul Lindner dari bir millet Afrika Timur. Nama spesies pombe adalah bahasa Swahili untuk bir. S. pombe pertama kali dikembangkan sebagai model eksperimental pada tahun 1950an: oleh Urs Leupold untuk mempelajari genetika, dan oleh Murdoch Mitchison untuk mempelajari siklus sel.

Paul Nurse, seorang peneliti khamir fisi, berhasil menggabungkan sekolah independen genetika khamir fisi dan penelitian siklus sel. Bersama dengan Lee Hartwell dan Tim Hunt, Nurse memenangkan Penghargaan Nobel Fisiologi atau Kedokteran tahun 2001 untuk karya mereka mengenai regulasi siklus sel.

Urutan genom S. pombe diterbitkan pada tahun 2002, oleh sebuah konsorsium yang dipimpin oleh Sanger Institute, menjadi organisme model eukariotik keenam yang genomnya telah sepenuhnya diurutkan. Ini telah sepenuhnya membuka kekuatan organisme ini, dengan banyak gen yang homolog dengan gen penyakit manusia diidentifikasi. Pada tahun 2006, lokalisasi sub-seluler hampir semua protein di S. pombe diterbitkan dengan menggunakan protein fluoresen hijau sebagai label molekuler.

Schizosaccharomyces pombe juga telah menjadi organisme penting dalam mempelajari respons seluler terhadap kerusakan DNA dan proses replikasi DNA.

Sekitar 160 strain alami S. pombe telah diisolasi. Strain-strain ini telah dikumpulkan dari berbagai lokasi termasuk Eropa, Amerika Utara dan Selatan, dan Asia. Mayoritas strain ini dikumpulkan dari buah-buahan yang dibudidayakan seperti apel dan anggur, atau dari berbagai minuman beralkohol, seperti Cachaça Brasil. S. pombe juga ada dalam teh fermentasi, kombucha. Tidak jelas sekarang apakah S. pombe adalah pemfermentasi utama atau kontaminan di minuman tersebut. Ekologi alami khamir Schizosaccharomyces tidak diketahui dengan baik.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Penulis dan editor Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia ID

Schizosaccharomyces pombe ( Italian )

fornì da wikipedia IT

Schizosaccharomyces pombe è una specie di lievito. Si tratta di un organismo che, a differenza del più noto Saccharomyces cerevisiae, si replica per scissione. È utilizzato come organismo modello in biologia molecolare e cellulare. Si tratta di un organismo unicellulare eucariote, dalla forma allungata, e misura tipicamente tra i 2 e i 3 μm di diametro e tra i 7 e 14 di lunghezza.

Queste cellule si riproducono per scissione binaria: da una cellula se ne formano due di dimensioni identiche tra loro. Tale aspetto è di notevole importanza negli studi sul ciclo cellulare. Tali studi sono infatti fondamentali per comprendere come le cellule crescono e si differenziano: comprendendo tali meccanismi è possibile indagare con più efficacia i processi molecolari che sconvolgono il ciclo cellulare e producono proliferazioni incontrollate come nel cancro.

Origini ed usi di S. pombe in ricerca

Questo lievito fu identificato per la prima volta da Lindner nel 1893, dalle birre di miglio dell'Africa orientale. Il nome della specie deriva infatti dal termine che, nella lingua swahili, si usa per indicare la birra (Pombe). Il primo modello sperimentale fu sviluppato negli anni cinquanta da Murdoch Mitchison, proprio per lo studio del ciclo cellulare.

Proprio l'ampio studio sulla regolazione del ciclo cellulare, attraverso i lieviti a scissione binaria come S.pombe, ha consentito a Paul Nurse, insieme a Lee Hartwell e a Tim Hunt, di vincere il Premio Nobel per la Medicina e la Fisiologia nel 2001.

La sequenza genomica di Schizosaccharomyces pombe è stata pubblicata nel 2002 da un consorzio facente capo al Sanger Institute. È stato il sesto genoma di organismo eucariote ad essere sequenziato. Il sequenziamento ha permesso di individuare numerosi geni omologhi a quelli di geni umani responsabili di malattie, aprendo nuove strade alla ricerca su malattie come il diabete e la fibrosi cistica.

S.pombe è oggi ampiamente studiato anche per far luce sui meccanismi di risposta del ciclo cellulare ai danni al DNA e ad errori di replicazione del DNA.

Dal punto di vista enologico S. pombe è un microorganismo importante: è dotato di intensa attività fermentativa, ha capacità di dare intensa fermentazione malo-alcolica, è stato proposto il suo impiego per la disacidificazione biologica dei vini.

Confronto con Saccharomyces cerevisiae (lievito gemmante)

  • S. cerevisiae ha circa 5.600 open reading frames, S. pombe ne ha circa 4.800;
  • S. cerevisiae ha 16 cromosomi, S. pombe ne ha 3;
  • S. cerevisiae è solitamente diploide, mentre S. pombe è di solito aploide;
  • S. cerevisiae si trova principalmente nella fase G1 del ciclo cellulare (di conseguenza la transizione dalla fase G1 a quella S è strettamente controllata), mentre S. pombe si trova di solito in fase G2 (il passaggio più controllato è dunque tra la fase G2 e la M).

 title=
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autori e redattori di Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia IT

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Italian )

fornì da wikipedia IT

Schizosaccharomyces pombe è una specie di lievito. Si tratta di un organismo che, a differenza del più noto Saccharomyces cerevisiae, si replica per scissione. È utilizzato come organismo modello in biologia molecolare e cellulare. Si tratta di un organismo unicellulare eucariote, dalla forma allungata, e misura tipicamente tra i 2 e i 3 μm di diametro e tra i 7 e 14 di lunghezza.

Queste cellule si riproducono per scissione binaria: da una cellula se ne formano due di dimensioni identiche tra loro. Tale aspetto è di notevole importanza negli studi sul ciclo cellulare. Tali studi sono infatti fondamentali per comprendere come le cellule crescono e si differenziano: comprendendo tali meccanismi è possibile indagare con più efficacia i processi molecolari che sconvolgono il ciclo cellulare e producono proliferazioni incontrollate come nel cancro.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autori e redattori di Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia IT

Schizosaccharomyces pombe ( olandèis; flamand )

fornì da wikipedia NL

Schimmels

Schizosaccharomyces pombe is een splijtingsgist die behoort tot de orde Schizosaccharomycetales van de ascomyceten. De gist leeft van suikerhoudende uitscheidingsstoffen van planten. De gist komt voornamelijk voor in de haploïde vorm in de G2-fase van de celcyclus.

Schizosaccharomyces pombe wordt gebruikt bij het traditioneel brouwen van bier en als modelorganisme bij de moleculaire biologie en de celbiologie.

De gistcel is staafvormig en 3 -4 µm breed en 7 - 14 µm lang. Het genoom heeft drie chromosomen en is ongeveer 14,1 miljoen basenparen groot, heeft 4970 eiwitcoderende genen en ten minste 450 nietcoderende RNA 's.[1] Er zijn ongeveer 4.970 open leesramen. Van Schizosaccharomyces pombe zijn ongeveer 160 natuurlijke stammen geïsoleerd. De meeste stammen zijn geïsoleerd uit appels, druiven en alcohol houdende dranken zoals het Braziliaanse Cachaça. De gist komt ook voor in de gefermenteerde thee komboecha.[2].

De vegetatieve cellen zijn cilindrisch, groeien aan de top en vermeerderen zich ongeslachtelijk door een enkelvoudige celdeling (binaire deling), waarbij twee even grote dochtercellen ontstaan.

Door voedselgebrek begint de geslachtelijke voortplanting met de versmelting van twee vegetatieve cellen tot een ascus. Er wordt geen ascocarp of weefsel tussen de asci gevormd. Na de versmelting van twee vegetatieve cellen volgt karyogamie en meiose. De vier celkernen delen zich nog een keer, waardoor er vier ascosporen gevormd worden.

Geschiedenis

Schizosaccharomyces pombe werd voor het eerst geïsoleerd door Paul Lindner uit Oost-Afrikaans gierstbier. Pombe is het Swahilisch woord voor bier. In de jaren 1950 werd door Urs Leupold begonnen met experimenteel onderzoek aan de genetische achtergronden van de gist.[3][4] Murdoch Mitchison bestudeerde de celcyclus.[5][6][7]

In 2002 werd het gesequencde genoom van Schizosaccharomyces pombe gepubliceerd[8].

In 2006 werd het proteoom gepubliceerd. De open reading frames werden gelocaliseerd met behulp van het groen fluorescent proteïne[9].

Externe links

Bronnen, noten en/of referenties
  1. (2008). Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution. Nature 453 (7199): 1239–1243 . DOI: 10.1038/nature07002.
  2. Teoh, Ai Leng (September 2004). Yeast ecology of Kombucha fermentation. International Journal of Food Microbiology 95 (2): 119–26 . PMID: 15282124. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2003.12.020.
  3. (1950). Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe. CR Trav Lab Carlsberg Ser Physiol 24: 381–480 .
  4. Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics . New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press. p 125–128.
  5. (1957). The growth of single cells. I. Schizosaccharomyces pombe. Exp Cell Res 13: 244–262 . DOI: 10.1016/0014-4827(57)90005-8.
  6. (1990). My favourite cell: The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe. BioEssays 4: 189–191 . DOI: 10.1002/bies.950120409.
  7. (2016). A Brief History of Schizosaccharomyces pombe Research: A Perspective Over the Past 70 Years.. Genetics 203 (2): 621–9 . PMID: 27270696. DOI: 10.1534/genetics.116.189407.
  8. V. Wood et al. The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe, Nature, 15|, 6874, 2002-02-21, 871–880, ISSN=0028-0836, DOI=10.1038/nature724
  9. (2006). ORFeome cloning and global analysis of protein localization in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. Nature Biotechnology 24 (7): 841–847 . DOI: 10.1038/nbt1222.
Wikimedia Commons Zie de categorie Schizosaccharomyces pombe van Wikimedia Commons voor mediabestanden over dit onderwerp.
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia-auteurs en -editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia NL

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( olandèis; flamand )

fornì da wikipedia NL

Schizosaccharomyces pombe is een splijtingsgist die behoort tot de orde Schizosaccharomycetales van de ascomyceten. De gist leeft van suikerhoudende uitscheidingsstoffen van planten. De gist komt voornamelijk voor in de haploïde vorm in de G2-fase van de celcyclus.

Schizosaccharomyces pombe wordt gebruikt bij het traditioneel brouwen van bier en als modelorganisme bij de moleculaire biologie en de celbiologie.

De gistcel is staafvormig en 3 -4 µm breed en 7 - 14 µm lang. Het genoom heeft drie chromosomen en is ongeveer 14,1 miljoen basenparen groot, heeft 4970 eiwitcoderende genen en ten minste 450 nietcoderende RNA 's. Er zijn ongeveer 4.970 open leesramen. Van Schizosaccharomyces pombe zijn ongeveer 160 natuurlijke stammen geïsoleerd. De meeste stammen zijn geïsoleerd uit appels, druiven en alcohol houdende dranken zoals het Braziliaanse Cachaça. De gist komt ook voor in de gefermenteerde thee komboecha..

De vegetatieve cellen zijn cilindrisch, groeien aan de top en vermeerderen zich ongeslachtelijk door een enkelvoudige celdeling (binaire deling), waarbij twee even grote dochtercellen ontstaan.

Door voedselgebrek begint de geslachtelijke voortplanting met de versmelting van twee vegetatieve cellen tot een ascus. Er wordt geen ascocarp of weefsel tussen de asci gevormd. Na de versmelting van twee vegetatieve cellen volgt karyogamie en meiose. De vier celkernen delen zich nog een keer, waardoor er vier ascosporen gevormd worden.

 src=

Celdelingstadia bij vegetatieve vermeerdering van Schizosaccharomyces pombe

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia-auteurs en -editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia NL

Schizosaccharomyces pombe ( norvegèis )

fornì da wikipedia NN

Schizosaccharomyces pombe er ein gjærsopp som økslar seg ved fisjon.

S. pombe var den sjette eukaryoten som fekk heile genomet sitt sekvensert, etter mellom anna mennesket. Sekvenseringa var på 13,8 megabasar og vart publisert i 2002. S. pombe har tre kromosom og eit mitokondriegenom på 20 kilobasar.

Kjelder

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia NN

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( norvegèis )

fornì da wikipedia NN

Schizosaccharomyces pombe er ein gjærsopp som økslar seg ved fisjon.

S. pombe var den sjette eukaryoten som fekk heile genomet sitt sekvensert, etter mellom anna mennesket. Sekvenseringa var på 13,8 megabasar og vart publisert i 2002. S. pombe har tre kromosom og eit mitokondriegenom på 20 kilobasar.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia NN

Schizosaccharomyces pombe ( polonèis )

fornì da wikipedia POL
 src=
Cykl życiowy

Schizosaccharomyces pombegatunek grzybów należący do rodziny Schizosaccharomycetaceae[1].

Systematyka

Pozycja w klasyfikacji według Index Fungorum: Schizosaccharomyces, Schizosaccharomycetaceae, Schizosaccharomycetales, Schizosaccharomycetidae, Schizosaccharomycetes, Taphrinomycotina, Ascomycota, Fungi[1].

Niektóre synonimy nazwy naukowej[2]:

  • Saccharomyces mellacei A. Jörg. 1899
  • Saccharomyces pombe (Lindner) A. Jörg. 1898
  • Schizosaccharomyces acidodevoratus Tschalenko 1941
  • Schizosaccharomyces formosensis Nakaz. 1914
  • Schizosaccharomyces liquefaciens Osterw. 1925
  • Schizosaccharomyces mellacei (A. Jörg.) Lindner 1901
  • Schizosaccharomyces taito Nakaz. 1919

Charakterystyka

Jest to, podobnie jak Saccharomyces cerevisiae, organizm modelowy w biologii molekularnej i komórki, komórek eukariotycznych.

Organizm ten to jednokomórkowy eukariota o komórkach wydłużonego, pałeczkowatego kształtu. Wielkość komórek waha się w granicach 2-3 mikrometrów średnicy i 7-14 mikrometrów długości.

Komórki utrzymują swój wydłużony kształt poprzez spolaryzowany wzrost oraz następujący później podział wzdłuż krótkiej osi (podobnie jak większość bakterii), co owocuje dwoma komórkami o jednakowej wielkości (w przeciwieństwie do pączkowania drożdży piekarniczych). Właściwość ta, przy jednoczesnym zachowaniu klasycznych cech organizmu eukariotycznego, czyni z S. pombe doskonałe narzędzie do badania cyklu komórkowego, mechanizmów spolaryzowanego wzrostu oraz mechanizmów naprawy DNA oraz powstawania mutacji.

S. pombe zostały wyizolowane w 1893 przez Lindera z afrykańskiego piwa warzonego z prosa. Nazwa gatunkowa wywodzi się z języka Suahili w którym pombe oznacza właśnie piwo. Jako model do badań cyklu komórkowego zostały po raz pierwszy zastosowane przez Mitchisona w latach 1950.

Badacz S. pombe Paul Nurse razem z Lee Hartwellem i Timothym Huntem w roku 2001 zostali uhonorowani Nagrodą Nobla w dziedzinie fizjologii i medycyny za ich badania nad regulacją cyklu komórkowego.

Pełna sekwencja genomu S.pombe została opublikowana w 2002 przez konsorcjum pod przewodnictwem Instytutu Sangera. Był to szósty organizm eukariotyczny, którego genom zsekwencjonowano w całości i opublikowano. Stało się to impulsem do bardzo szerokich badań z użyciem S. pombe jako analoga komórek organizmów wyższych.

Porównanie S. pombe z S. cerevisiae

  • S. cerevisiae ma ~ 5600 otwartych ramek odczytu (ORF), gdy S. pombe ma ich ~ 4800
  • S. cerevisiae ma 16 chromosomów, a S. pombe 3
  • S. cerevisiae jest zwykle diploidem, kiedy S. pombe jest zazwyczaj haploidem
  • S. cerevisiae jest głównie w fazie G1 cyklu komórkowego (co za tym idzie przejście G1-S jest ściśle kontrolowane), podczas gdy S. pombe jest zazwyczaj w fazie G2 cyklu (i ściśle kontrolowane jest przejście G2-M)

Przypisy

  1. a b Index Fungorum (ang.). [dostęp 2012-11-17].
  2. Species Fungorum (ang.). [dostęp 2016-02-16].

Linki zewnętrzne

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autorzy i redaktorzy Wikipedii
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia POL

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( polonèis )

fornì da wikipedia POL
 src= Cykl życiowy

Schizosaccharomyces pombe – gatunek grzybów należący do rodziny Schizosaccharomycetaceae.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autorzy i redaktorzy Wikipedii
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia POL

Schizosaccharomyces pombe ( portughèis )

fornì da wikipedia PT

Schizosaccharomyces pombe, também chamada "levedura de fissão", é uma espécie de levedura. É usada como organismo modelo em biologia molecular e celular. Trata-se de um eucariota unicelular, cujas células têm forma de bastão, medindo tipicamente entre 3 e 4 micrómetros de diâmetro e 7 a 14 micrómetros de comprimento. Estima-se que o seu genoma, com cerca de 14,1 milhões de pares de bases, contenha 4970 genes codificadores de proteínas e pelo menos 450 ARNs não-codificantes[1].

As células mantêm a sua forma crescendo exclusivamente a partir das extremidades e dividindo-se por fissão para produzirem duas células-filhas de tamanhos iguais, o que as torna uma ferramenta poderosa no estudo do ciclo celular.

Foi isolada pela primeira vez em 1893 por Paul Lindner a partir da cerveja de milhete da África Oriental. O nome da espécie deriva da palavra suaíli para cerveja, pombe. Foi desenvolvida como modelo experimental na década de 1950 por Urs Leupold, para o estudo da genética[2][3], e por Murdoch Mitchison para o estudo do ciclo celular[4][5].

O investigador da levedura de fissão Paul Nurse fundiu com sucesso as escolas independentes da genética da levedura de fissão e da investigação do ciclo celular. Juntamente com Lee Hartwell e Tim Hunt, Nurse ganhou o Prémio Nobel de Fisiologia ou Medicina pelo seu trabalho sobre a regulação do ciclo celular.

A sequência do genoma de S. pombe foi publicada em 2002, por um consórcio liderado pelo Wellcome Trust Sanger Institute, tornando-se o sexto organismo modelo eucariota cujo genoma foi totalmente sequenciado.

Em 2006, foi publicada a localização de todas as proteínas em S. pombe, feita utilizando proteína verde fluorescente como marcador molecular.

  • Este artigo foi inicialmente traduzido, total ou parcialmente, do artigo da Wikipédia em inglês, cujo título é «Schizosaccharomyces pombe», especificamente .

Referências

  1. Wilhelm et al. Dynamic repertoire of a eukaryotic transcriptome surveyed at single-nucleotide resolution. Nature (2008) vol. 453 (7199) pp. 1239-43
  2. Leupold U. (1950) Die Vererbung von Homothallie und Heterothallie bei Schizosaccharomyces pombe. CR Trav Lab Carlsberg Ser Physiol 24:381-480.
  3. Leupold U. (1993) The origins of Schizosaccharomyces pombe genetics. In: Hall MN, Linder P. eds. The Early Days of Yeast Genetics. New York. Cold Spring Harbor Laboratory Press.. p 125-128.
  4. Mitchison JM. (1957) The growth of single cells. I. Schizosaccharomyces pombe. Exp Cell Res 13:244-262.
  5. Mitchison JM. (1990) My favourite cell: The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe. Bioessays 4:189-191.
 title=
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores e editores de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia PT

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( portughèis )

fornì da wikipedia PT

Schizosaccharomyces pombe, também chamada "levedura de fissão", é uma espécie de levedura. É usada como organismo modelo em biologia molecular e celular. Trata-se de um eucariota unicelular, cujas células têm forma de bastão, medindo tipicamente entre 3 e 4 micrómetros de diâmetro e 7 a 14 micrómetros de comprimento. Estima-se que o seu genoma, com cerca de 14,1 milhões de pares de bases, contenha 4970 genes codificadores de proteínas e pelo menos 450 ARNs não-codificantes.

As células mantêm a sua forma crescendo exclusivamente a partir das extremidades e dividindo-se por fissão para produzirem duas células-filhas de tamanhos iguais, o que as torna uma ferramenta poderosa no estudo do ciclo celular.

Foi isolada pela primeira vez em 1893 por Paul Lindner a partir da cerveja de milhete da África Oriental. O nome da espécie deriva da palavra suaíli para cerveja, pombe. Foi desenvolvida como modelo experimental na década de 1950 por Urs Leupold, para o estudo da genética, e por Murdoch Mitchison para o estudo do ciclo celular.

O investigador da levedura de fissão Paul Nurse fundiu com sucesso as escolas independentes da genética da levedura de fissão e da investigação do ciclo celular. Juntamente com Lee Hartwell e Tim Hunt, Nurse ganhou o Prémio Nobel de Fisiologia ou Medicina pelo seu trabalho sobre a regulação do ciclo celular.

A sequência do genoma de S. pombe foi publicada em 2002, por um consórcio liderado pelo Wellcome Trust Sanger Institute, tornando-se o sexto organismo modelo eucariota cujo genoma foi totalmente sequenciado.

Em 2006, foi publicada a localização de todas as proteínas em S. pombe, feita utilizando proteína verde fluorescente como marcador molecular.

Este artigo foi inicialmente traduzido, total ou parcialmente, do artigo da Wikipédia em inglês, cujo título é «Schizosaccharomyces pombe», especificamente .
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Autores e editores de Wikipedia
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia PT

Schizosaccharomyces pombe ( Szl )

fornì da wikipedia SZL

Schizosaccharomyces pombe je grzib[2], co go ôpisoł Lindner 1893. Schizosaccharomyces pombe nŏleży do zorty Schizosaccharomyces i familije Schizosaccharomycetaceae.[3][4] Żŏdne podgatōnki niy sōm wymianowane we Catalogue of Life.[3]

Przipisy

  1. CABI databases. [dostymp 24 stycznia 2013].
  2. Lindner (1893), In: Wochenschr. Brau. 10:1298
  3. 3,0 3,1 Bisby F.A., Roskov Y.R., Orrell T.M., Nicolson D., Paglinawan L.E., Bailly N., Kirk P.M., Bourgoin T., Baillargeon G., Ouvrard D. (red.): Species 2000 & ITIS Catalogue of Life: 2019 Annual Checklist.. Species 2000: Naturalis, Leiden, the Netherlands., 2019. [dostymp 24 września 2012].
  4. Species Fungorum. Kirk P.M., 2010-11-23
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia SZL

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( Szl )

fornì da wikipedia SZL

Schizosaccharomyces pombe je grzib, co go ôpisoł Lindner 1893. Schizosaccharomyces pombe nŏleży do zorty Schizosaccharomyces i familije Schizosaccharomycetaceae. Żŏdne podgatōnki niy sōm wymianowane we Catalogue of Life.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia authors and editors
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia SZL

Schizosaccharomyces pombe ( turch )

fornì da wikipedia TR
Binominal adı Schizosaccharomyces pombe
(Lindner, 1893)

Schizosaccharomyces pombe, veya "fisyon mayası", tek hücreli bir maya türüdür. Biyologlar tarafından ökaryotik canlıların moleküler biyoloji ve hücre biyolojisini çalışmak için bir model organizma olarak kullanılır. Hücreler çubuk şeklinde, 2-3 mikrometre çapında, 7-14 mikrometre uzunluğundadır. Bu hücreler hücre uçlarında uzayarak şekillerini korurlar, hücre ortasından bölünürek eşit büyüklükte iki yavru hücre oluştururlar.

S. pombe 1893'te Paul Lindner tarafından Doğu Afrika'da darı birasından izole edilmiştir. Pombe ismi Svahili dilinde bira demektir. 1950'li yıllarda Murdoch Mitchison tarafından ilk defa hücre bölünmesini araştırmak için deneysel bir organizma olarak kullanılmıştır.

Fisyon mayası araştırmacılarından Paul Nurse, (başka organizmalarda çalışmış Lee Hartwell ve Tim Hunt ile beraber) hücre döngüsü üzerindeki çalışmalarından dolayı 2001 yılında Nobel Fizyoloji veya Tıp Ödülünü almıştır.

S.pombe'nin genom dizini Sanger Institute önderliğindeki bir konsorsiyum tarafından yayımlanmış, genomu tamamen okunmuş altıncı model organizma olmuştur.

Ekmek mayası (Saccharomyces cerevisiae) ile karşılaştırılması

  • S. cerevisiae nın 5600 açık okuma çerçevesi, Sch. pombe nin 4970 açık okuma çerçevesi vardır.
  • Gen sayılarının benzer olmasına rağmen, S. cerevisiae 250 intron bulundururken Sch. pombe'de bu sayı yaklaşık 5000'dir.
  • S. cerevisiae nin 16 kromozomu, Sch. pombe nin 3 kromozomu vardır.
  • S. cerevisiae genelde diploiddir Sch. pombe ise genelde haploiddir.
  • S. cerevisiae hücre döngüsünde başlıca G1 evresindedir (dolayısıyla G1-S geçişi sıkı kontrol altındadır) , Sch. pombe ise genelde G2 evresindedir (dolayısıyla G2-M geçişi sıkı kontrol altındadır)

Bilimde yeri

Hücre bölünmesi insan dahil diğer ökaryotlarda da benzer mekanizmalarla gerçekleştiğinden bu süreçle ilgili S. pombe'de yapılan keşifler insana kolaylıkla uygulanabilmektedir. Kanser, kontrolsuz hücre bölünmesi olduğu için bu maya türünden elde edilen bilgilerin pek çok tıbbi uygulaması olmuştur. Ayrıca, genom dizinine bakıldığı zaman insanda diyabet ve sistik fibroz gibi hastalıklarda bozukluğu gösterilmiş genlerin S. pombe'de de olduğu bulunduğundan bu mayanın başka alanlarda da bilime önemli katkıları olacaktır.

Dış bağlantılar


Bu madde İngilizce Wikipedia'nin Schizosaccharomyces pombe maddesinin 08.08.2006 tarihli sürümününün çevirisidir.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia yazarları ve editörleri
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia TR

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( turch )

fornì da wikipedia TR

Schizosaccharomyces pombe, veya "fisyon mayası", tek hücreli bir maya türüdür. Biyologlar tarafından ökaryotik canlıların moleküler biyoloji ve hücre biyolojisini çalışmak için bir model organizma olarak kullanılır. Hücreler çubuk şeklinde, 2-3 mikrometre çapında, 7-14 mikrometre uzunluğundadır. Bu hücreler hücre uçlarında uzayarak şekillerini korurlar, hücre ortasından bölünürek eşit büyüklükte iki yavru hücre oluştururlar.

S. pombe 1893'te Paul Lindner tarafından Doğu Afrika'da darı birasından izole edilmiştir. Pombe ismi Svahili dilinde bira demektir. 1950'li yıllarda Murdoch Mitchison tarafından ilk defa hücre bölünmesini araştırmak için deneysel bir organizma olarak kullanılmıştır.

Fisyon mayası araştırmacılarından Paul Nurse, (başka organizmalarda çalışmış Lee Hartwell ve Tim Hunt ile beraber) hücre döngüsü üzerindeki çalışmalarından dolayı 2001 yılında Nobel Fizyoloji veya Tıp Ödülünü almıştır.

S.pombe'nin genom dizini Sanger Institute önderliğindeki bir konsorsiyum tarafından yayımlanmış, genomu tamamen okunmuş altıncı model organizma olmuştur.

Ekmek mayası (Saccharomyces cerevisiae) ile karşılaştırılması S. cerevisiae nın 5600 açık okuma çerçevesi, Sch. pombe nin 4970 açık okuma çerçevesi vardır. Gen sayılarının benzer olmasına rağmen, S. cerevisiae 250 intron bulundururken Sch. pombe'de bu sayı yaklaşık 5000'dir. S. cerevisiae nin 16 kromozomu, Sch. pombe nin 3 kromozomu vardır. S. cerevisiae genelde diploiddir Sch. pombe ise genelde haploiddir. S. cerevisiae hücre döngüsünde başlıca G1 evresindedir (dolayısıyla G1-S geçişi sıkı kontrol altındadır) , Sch. pombe ise genelde G2 evresindedir (dolayısıyla G2-M geçişi sıkı kontrol altındadır)
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Wikipedia yazarları ve editörleri
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia TR

Schizosaccharomyces pombe ( ucrain )

fornì da wikipedia UK

Опис

Schizosaccharomyces pombeодноклітинний еукаріот, паличкоподібної форми. За розміром має приблизно від 2 до 3 мікрон в діаметрі і від 7 до 14 мікрон в довжину. S. pombe зазвичай зустрічається при спиртному бродіння цукру в субтропічних регіонах[1].

Організм був знайдений та описаний в 1893 році, коли група Лабораторії Асоціації пивоварів в Німеччині досліджувала осад від виготовлення просяного пива, імпортованого із Східної Африки, що мало сумнівний кислий смак[2]. П. Лінднер був першим, хто описав Schizosaccharomyces pombe. За назву він вибрав слово «пиво» мовою суахілі, pombe. Цей організм був ідентифікований як дріжджі, і став відомим як дріжджі, що діляться, тому що це він відтворюється за допомогою симетричного поділу на відміну від брунькування у більшості інших дріжджів, зокрема пивних дріжджів Saccharomyces cerevisiae. Назва Schizosaccharomyces, від лат. Schizo- — «інший», «різний», вже використовувалося для опису інших видів, що діляться симетрично[2].

Використання як модельного організму

Дослідження цього організму, включаючи секвенування генома, були важливими через те, що S. pombe — простий одноклітинний організм, який, проте, розділяє багато спільних рис з клітинами складніших еукаріотів[3]. Дослідники ідентифікували багато генів S. pombe, пов'язаних з хворобами людини, зокрема кістозний фіброз, спадкову глухоту і діабет[3]. Найбільша група генів, пов'язана із хворобами людини — 23 гена, залучені в утворення раку. Ці гени беруть участь в ремонті ДНК і регуляції клітинниго циклу — всі ці процеси впливають на підтримку стабільності генома[3]. Ці відкриття дуже важливі, тому що дозволяють дослідникам більше дізнатися про еволюцію як одноклітинних, так багатоклітинних еукаріотичних організмів.

На підтвердження важливості досліджень цього організму свідчить той факт, що Пол Нерс, отримав в 2001 році Нобелівську премію або фізіології і медицини (разом із Лі Гартвеллом і Тімом Гантом) за дослідження регулювання клітинного циклу та відкриття циклін-залежних кіназ, працюючи саме з S. pombe.[4]

Геном

S. pombe був шостим еукаріотичним організмом, чий геном був повністю секвенований. S. pombe має дуже малий і компактний для еукаріотів геном, що містить 13,8 мін. пар основ, 4824 гени, та розділений на 3 хромосоми: I (5,7 Mbp), II (4,6 Mbp) і III (3,5 Mpb). Це найменше число кодуючих білки генів серед усіх відомих еукаріотів[3]. Всі 3 хромосоми — лінійні, але кругові хромосоми спостерігаються в деяких мутантах. Це відбувається, якщо S. pombe втрачає прості повтори на самих кінцях хромосом або субтеломені елементи, у цьому випадку хромосоми зливаються своїми кінцями, формуючі круглі хромосоми[5]. Три центромери займають 35, 65 і 110 kbp відповідно на кожній хромосомі, залишаючи 12,5 унікальної послідовності[3].

4730 інтронів розподілені серед 43 % генів, максимум 15 інтронів в межах єдиного гена, 614 мають два або більше інтронів. Дослідження інтронів S. pombe важливі для розуміння їх виникнення та розповсюдження. Велике число інтронів забезпечує можливості для альтернативного сплайсінга, що дає кілька варіантів тих же самих білків, що важливо як у регуляторних шляхах, так і забезпечує збільшення кількості типів білків у клітині.

Відома цінність S. pombe для дослідження функцій генів, пов'язаних з хворобами людини. Гени цього організму кодують білки, що виробляють продукти схожі до 289 відомих білків, мутації або вилучення яких приводять до хвороб людини[3]. 172 білків S. pombe мають схожість цими білками людини. Серед них 23 гени залучені у виникнення раку. Інші — залучені в хвороби обміну речовин (12 генів), неврологічі (13 генів), серцеві хвороби (1 ген) і хвороби нирок (1 ген)[3].

Структура клітини та метаболізм

S. pombeхемоорганотроф, тобто використовує органічні сполуки як джерело енергії і не вимагає світла для росту. Ці організми — факультативні аероби, тобто можуть рости як за аеробними, так і за анаеробними умовами, крім того, фони проявляють бродіння за аеробними умовами за наявністю додаткового цукру[6]. Спиртова гідрогеназа (ADH) каталізує редукування ацетальдегіду до етанолу на останньому кроці спиртного бродіння. Ця реакція пов'язана з окисленням NADH і забезпечує NAD+ для окислення гліцеральдегід-3-фосфата в процесі глуколізу. Тому, виробництво етанолу важливе для підтримання окислювально-відновлювального балансу в цитоплазмі.

S. pombe є природним ауксотрофом інозитолу. Інозитол важливий для росту всіх клітин еукаріотів, тому що він використовується для синтезу важливих мембранних фосфоліпідів, фсіногліпіду і глікозилфосфатиділінозитолу. Ці речовини грають важливу роль в шляхах передічі сигналів. Вважається, що S. pombe як ауксотроф інозитолу, тому що його природне оточення зазвичай містить велику кількість фітієвої кислоти, яка може використовуватися як джерело інозитолу за певними умовами.

Екологія

S. pombe знаходять переважно в алкогольних напоях, і таким чином він не крає важливою ролі у природі. Проте, це — один з видів, що грають важливу роль в бродінні чайного гриба (Kombucha). Чайний гриб — це традиційний метод бродіння підсолоджуваного чаю, що залучає симбіоз дріжджів і оцтовокислих бактерій. Вивчення екології дріжджів в бродінні чайного грибу показує, що S. pombe легко вступає в симбіоз з іншими видами дріжджів (наприклад B. bruxellensis, C. stellata, T. delbrueckii і Z. bailii). S. pombe і інші дріжджі перероблюють цукор в чай на етанол, а етанол потім окисляють оцтовокислі бактерії, виробляючи оцтову кислоту. S. pombe важливий у суспільстві через його здатність терпіти високі концентрації цукру. Ізольовані S. pombe, T. delbrueckki і Z. bailii витримують концентрацію клюкози до 60 % і зазвичай використовуються в бродінні солодких і шампанських вин. Із течінням бродіння, види з низькою кислотною толерантністю поступово відмирають, S. pombe, з помірною толерантністю до кислих умов, через 10 день. Загалом, осмотолерантний S. pombe та інші починають бродіння чайного гриба, але процес закінчується іншими, толерантноми до кислоти видами[7].

Примітки

  1. Eijkman, C. Microbiological Aspects of Arrack Production in Batavia.. Centralblatt für Bakteriologie und Parasitenkunde, 1894. Band 16. p. 97-103.
  2. а б Lindner, V. Schizosaccharomyces Pombe n. sp., ein neuer Gährungserreger.. Wochenschrift für Brauerei. 1893. Volume 10. p. 1298-1300.
  3. а б в г д е ж Wood, V. et al. (2002). The genome sequence of Schizosaccharomyces pombe.. Nature 415: 871–880.
  4. Benjamin Yang. Three scientists who discovered key elements in cell cycle regulation won Nobel Prize in Medicine. Discovery Medicine, Vol. 1, No. 2, p2, 2001(англ.)
  5. Zhou, J., Qi, H., Schulz et al. (2002). Schizosaccharomyces pombe pfh1+ Encodes an Essential 5' to 3' DNA Helicase That Is a Member of the PIF1 Subfamily of DNA Helicases. Molecular Biology of the Cell 13: 2180–2191.
  6. Sakurai, M., Tohda, H., Kumagai, H., and Giga-Hama, Y. (2004). A distinct type of alcohol dehydrogenase, adh4+, complements ethanol fermentation in an adh1-deficient strain of Schizosaccharomyces pombe. FEMS Yeast Research 4 (6): 649–654.
  7. Teoh, A.L., Heard, G., Cox, J. (2004). Yeast ecology of Kombucha fermentation. International Journal of Food Microbiology 95 (2): 119–126.

Посилання

MicrobeWiki: Schizosaccharomyces pombe

Основні модельні організми в генетиці Фаг лямбда | Кишкова паличка | Хламідомонада | Tetrahymena | Дріжджі (Пивні дріжджіSchizosaccharomyces pombe) | Neurospora | Кукурудза | Arabidopsis | C. elegans | Дрозофіла | Даніо-реріо | Пацюк сірий | Миша хатня
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Автори та редактори Вікіпедії
original
visité la sorgiss
sit compagn
wikipedia UK

Schizosaccharomyces pombe ( russ; russi )

fornì da wikipedia русскую Википедию
Царство: Грибы
Подцарство: Высшие грибы
Отдел: Аскомицеты
Подотдел: Taphrinomycotina
Класс: Схизосахаромицеты (Schizosaccharomycetes O.E.Erikss. & Winka, 1997)
Порядок: Schizosaccharomycetales O.E.Erikss. et al., 1993
Семейство: Schizosaccharomycetaceae Beij. ex Klöcker, 1905
Вид: Schizosaccharomyces pombe
Международное научное название

Schizosaccharomyces pombe Lindner, 1893

Commons-logo.svg
Изображения
на Викискладе
NCBI 4896EOL 187820MB 212377

Schizosaccharomyces pombe (лат.) — вид дрожжей. Одноклеточный представитель царства грибов, относится к классу Schizosaccharomycetes (делящиеся дрожжи). Клетки имеют палочковидную форму и размеры 3—4 мкм в диаметре и 7—14 мкм в длину. Клетки растут только вдоль свой длинной оси и делятся пополам, сохраняя таким образом свою форму. Используется как модельный организм в молекулярной биологии и цитологии.

S. pombe были выделены в чистую культуру в 1893 году Линднером из восточноафриканской бузы. Название происходит от слова «пиво» на языке Суахили — Pombe. Впервые были использованы как модельный организм для изучения клеточного цикла Мердоком Мичизоном в 1950-х. Пол Нерс, Леланд Хартвелл и Тимоти Хант получили в 2001 году Нобелевскую премию по физиологии и медицине за работы по регуляции клеточного цикла, выполненную на S. pombe.

Последовательность нуклеотидов в геноме S. pombe была расшифрована в 2002 году консорциумом во главе с институтом Sanger. S. pombe стали шестым эукариотическим организмом, геном которого был полностью секвенирован. Это позволило идентифицировать многие гомологичные человеческим гены, ответственные за болезни (включая диабет и муковисцидоз). В 2006 году при помощи зелёного флуоресцентного белка как молекулярной метки была установлена внутриклеточная локализация всех белков в S. pombe. На S. pombe также ведётся изучение изменений клеточного цикла, связанных с повреждением ДНК.

Сравнение с почкующимися дрожжами Saccharomyces cerevisiae

  • S. cerevisiae имеет ~ 5600 открытых рамок считывания, Sch. pombe имеет ~ 4800 открытых рамок считывания
  • S. cerevisiae имеет 16 хромосом, Sch. pombe имеет 3 хромосомы
  • S. cerevisiae — обычно диплоид, в то время как Sch. pombe является обычно гаплоидный
  • S. cerevisiae находится главным образом в состоянии G1 (следовательно G1-S, переход надёжно управляется), в то время как Sch. pombe находится обычно в состоянии G2 (следовательно G2-M, переход находится под надёжным контролем).


Грибы Это заготовка статьи по микологии. Вы можете помочь проекту, дополнив её.
Улучшение статьи
Для улучшения этой статьи желательно:
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Авторы и редакторы Википедии

Schizosaccharomyces pombe: Brief Summary ( russ; russi )

fornì da wikipedia русскую Википедию

Schizosaccharomyces pombe (лат.) — вид дрожжей. Одноклеточный представитель царства грибов, относится к классу Schizosaccharomycetes (делящиеся дрожжи). Клетки имеют палочковидную форму и размеры 3—4 мкм в диаметре и 7—14 мкм в длину. Клетки растут только вдоль свой длинной оси и делятся пополам, сохраняя таким образом свою форму. Используется как модельный организм в молекулярной биологии и цитологии.

S. pombe были выделены в чистую культуру в 1893 году Линднером из восточноафриканской бузы. Название происходит от слова «пиво» на языке Суахили — Pombe. Впервые были использованы как модельный организм для изучения клеточного цикла Мердоком Мичизоном в 1950-х. Пол Нерс, Леланд Хартвелл и Тимоти Хант получили в 2001 году Нобелевскую премию по физиологии и медицине за работы по регуляции клеточного цикла, выполненную на S. pombe.

Последовательность нуклеотидов в геноме S. pombe была расшифрована в 2002 году консорциумом во главе с институтом Sanger. S. pombe стали шестым эукариотическим организмом, геном которого был полностью секвенирован. Это позволило идентифицировать многие гомологичные человеческим гены, ответственные за болезни (включая диабет и муковисцидоз). В 2006 году при помощи зелёного флуоресцентного белка как молекулярной метки была установлена внутриклеточная локализация всех белков в S. pombe. На S. pombe также ведётся изучение изменений клеточного цикла, связанных с повреждением ДНК.

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
Авторы и редакторы Википедии

分裂酵母 ( Giaponèis )

fornì da wikipedia 日本語
分裂酵母 Fission yeast.jpg
Schizosaccharomyces pombe
分類 : 菌界 Fungi : 子嚢菌門 Ascomycota 亜門 : タフリナ菌亜門 Taphrinomycotina : シゾサッカロミケス綱 Schizosaccharomycetes[1] : シゾサッカロミケス目 Schizosaccharomycetales[2] : シゾサッカロミケス科 Schizosaccharomycetaceae[3] : シゾサッカロミケス属 学名 Schizosaccharomyces
Linder (1893)[4] タイプ種 S. pombe シノニム
  • Octosporomyces Kudriawzew (1960)[5]
  • Quadrisporomyces Sekunova (1960)
  • Hasegawaea Yamada & Banno (1987)[6]

分裂酵母 (ぶんれつこうぼ) は子嚢菌に属する二分裂によって増殖する酵母の総称。分類学上は、シゾサッカロミケス属(Schizosaccharomyces)に対応し、本属のみをもってシゾサッカロミケス科シゾサッカロミケス目シゾサッカロミケス綱を構成する。学名のうちSchizo-が「分裂」を意味する。

系統[編集]

出芽酵母とは3から4億年以上前に分化したと考えられ、これは分裂酵母と動物との違いに比べられるほど大きな差と言われる。

分類[編集]

2010年時点で4種から構成されている。

  • S. cryophilus
  • S. japonicus (syn. Hasegawaea japonicus)
  • S. octosporus (syn. Octosporomyces octosporus)
  • S. pombe

Schizosaccharomyces pombe[編集]

1893年に P. Lindner によって東アフリカミレットビール雑穀を原料とした醸造酒)から単離された最初の分裂酵母。pombe はスワヒリ語シコクビエなどの雑穀を用いて作られた伝統的なビールの意。 通常一倍体で生活し環境条件等によって接合、減数分裂、胞子形成を行う。分裂の周期は約3時間。 一倍体は長さ13 μm直径3 μm程度、二倍体はそれぞれ長さ22μm、直径4 μm程度の筒状の形をし、その中央にを持つ。DNA染色を行った細胞では偏った核小体のため核が三日月型に観察できることがあり、これは間期を区別する特徴として使われる。三本の染色体を持ち、第一染色体は5.7 Mb、第二染色体は4.6 Mb、第三染色体は3.5 Mbで、全体で13.8 Mbのゲノムを持つ。 2002年真核生物としては6番目になるゲノム配列決定が行われた。4割の遺伝子イントロンを持つことや、タンパク質アミノ酸配列ヒトとの類似度も出芽酵母より高いことなどから、出芽酵母よりヒトに近いモデル生物とされることもある。また、この生物を材料として細胞周期の理解が大きく前進した。

出典[編集]

  1. ^ Eriksson, O.E. & K. Winka (1997). “Supraordinal taxa of Ascomycota”. Myconet 1: 1–16.
  2. ^ Eriksson, O.E. et al. (1993). “Molecular evidence for the evolutionary hiatus between Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe”. Syst. Ascom 11: 119–162.
  3. ^ Klöcker, Albert (1905). “Systematik der Familien der Saccharomycetaceen und der Schizosaccharomycetaceen”. In Lafar, Franz. Handbuch der Technischen Mykologie. 4. p. 189. http://biodiversitylibrary.org/page/8361291.
  4. ^ a b Linder, P. (1893). “Schizosaccharomyces pombe n.sp., ein neuer Gährungserreger”. Wochenschrift für Brauerei 10: 1298–1300.
  5. ^ Kudriawzew, W.I. (1960). Die Systematik der Hefen. Berlin: Akademie-Verlag.
  6. ^ Yamada & Banno (1987). “Hasegawaea gen. nov., an ascosporogenous yeast genus for the organisms whose asexual reproduction is by fission and whose ascospores have smooth surfaces without papillae and which are characterized by the absence of coenzyme Q and by the presence of linoleic acid in cellular fatty acid composition”. J. Gen. Appl. Microbiol. 33: 295–298. doi:10.2323/jgam.33.295.
  7. ^ Helston et al. (2010). “Schizosaccharomyces cryophilus sp. nov., a new species of fission yeast”. FEMS Yeast Res. 10 (6): 779–786. doi:10.1111/j.1567-1364.2010.00657.x.
  8. ^ Yukawa & Maki (1931). “Schizosaccharomyces japonicus nov. spec.”. La Bul Sci Falkultato Terkultura 4: 218–226.
  9. ^ Beijerinck, M.W. (1894). “Schizosaccharomyces octosporus, eine achtsporige Alkoholhefe”. Zentralblatt Bakteriologie Parasitenkunde: 49–58.
 title=
licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
ウィキペディアの著者と編集者

分裂酵母: Brief Summary ( Giaponèis )

fornì da wikipedia 日本語

分裂酵母 (ぶんれつこうぼ) は子嚢菌に属する二分裂によって増殖する酵母の総称。分類学上は、シゾサッカロミケス属(Schizosaccharomyces)に対応し、本属のみをもってシゾサッカロミケス科、シゾサッカロミケス目、シゾサッカロミケス綱を構成する。学名のうちSchizo-が「分裂」を意味する。

licensa
cc-by-sa-3.0
drit d'autor
ウィキペディアの著者と編集者