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Comprehensive Description ( İngilizce )

Smithsonian Contributions to Zoology tarafından sağlandı
Alpheus heterochaelis Say

Alpheus heterochaelis Say, 1818:243.—Williams 1965b:66, fig. 54.

TYPE-LOCALITY.—Amelia Island, Nassau County, Florida.

DISTRIBUTION.—North Carolina to Surinam; sublittoral. The true range of this species is not yet well defined. It is common along the southeastern and Gulf coasts of the United States from North Carolina to Texas (including Key West, Florida), but I have seen only two lots from the West Indies—one from Cuba and one from Curaçao—that could be assigned to A. heterochaelis with confidence. The specimens recorded by Holthuis (1959) from Surinam undoubtedly belong to this species. There is some question, however, about those recorded by the same author (1956) from Cananeia, Estado de São Paulo, Brazil, because the males of that series do not have the dactyl of the minor first chela “balaeniceps”-shaped. At least some of the lots recorded by Rathbun (1900) from between Estado do Rio Grande do Norte and Estado de Alagoas, Brazil, are assignable to A. armillatus and A. nuttingi, and some of the material recorded by the same author (1901) from Puerto Rico is A. armillatus and A. viridari. The two specimens from Isla de Providencia listed by Schmitt (1939) belong to A. nuttingi.

*128. Alpheus intrinsecus Bate

Alpheus intrinsecus Bate, 1888:557, pl. 100: fig. 1.—Crosnier and Forest 1966:286, fig. 26.

MATERIAL.—Tobago (Sta. 6–59: 1 ).

HABITAT.—The single specimen was found on or in the interstices of coral rock covered with algae.

TYPE-LOCALITY.—Off Salvador, Estado da Bahia, Brazil.

DISTRIBUTION.—Puerto Rico to Estado de São Paulo, Brazil; eastern Atlantic from Senegal to Congo; to a depth of 30 meters.

*129. Alpheus malleator Dana

Alpheus malleator Dana, 1852:557.—Crosnier and Forest 1966:240, fig. 10.

MATERIAL.—Grenada (Sta. 8–56: 1 ).

HABITAT.—The single specimen was concealed in an intertidal conglomerate rock and coral ledge.

TYPE-LOCALITY.—Rio de Janeiro, Brazil?

DISTRIBUTION.—Puerto Rico to Estado de São Paulo, Brazil; eastern Atlantic from Senegal to Congo; eastern Pacific from the Gulf of California, Ecuador, and the Galapagos Islands; littoral and upper sublittoral.

*130. Alpheus normanni Kingsley

Alpheus normanni Kingsley, 1878a:93.—Williams 1965b: 65, fig. 53.

Crangon normanni.—Chace 1937:122.

MATERIAL.—Tortola (Sta. 117–56: 1 )-—Barbuda (Sta. 85–56: 1 ; Sta. 108–58: 1 ).—Saint Christopher (Sta. 103–56: 2 ovig. ).—Antigua Island (Sta. 74–56: 1 ; Sta. 109–59: 8 , 2 ovig. ; Sta. 112–59: 1 , 2 ovig.).—Dominica (Sta. 75–59: 1 juv.).—Carriacou Island (Sta. 17–56: 1 ovig. ).—Tobago (Sta. 4–59: 1 , 1 ovig. ; Sta. 8–59: 1 , 2 ovig. ; Sta. 31–59: 5 , 2 [1 ovig.]).—Isla de Cozumel (Sta. 100–60: 1 spec.).—Bahía de la Ascensión (Sta. 91–60: 1 ).

HABITAT.—This species was found most frequently on sand and mud flats covered with turtle-grass and Porites. Some specimens were taken on a mud bottom under rocks and oysters and some occurred in and among reef corals.

TYPE-LOCALITY.—Pacific coast of Panama.

DISTRIBUTION.—Virginia and Bermudas to Tobago and westward to the Yucatan Peninsula; eastern Pacific in the Gulf of California and at Panama; to a depth of 73 meters.

*131. Alpheus nuttingi (Schmitt)

Crangon nuttingi Schmitt, 1924c: 78, pl. 2: figs. 4–6.

MATERIAL.—Barbuda (Sta. 111–58: 2 )—Antigua Island (Sta. 110–59: 2 ).—Guadeloupe (Sta. 68–56: 1 ; Sta. 69–56: 17 10 [9 ovig.]).—Saint Lucia Island (Sta. 60–59: 1 , 1 ovig. ).—Tobago Cays (Sta. 21–56: 6 7 [6 ovig.]).

HABITAT.—Most of the specimens listed above were cracked from coral and coral rock, but a few were found on sandy mud flats studded with boulders or Porites.

TYPE-LOCALITY.—Pelican Island, Barbados.

DISTRIBUTION.—Florida Keys to Estado de Alagoas, Brazil, and westward to Isla de Providencia and Panama; sublittoral.

DISTRIBUTION.—Virtually pantropical; to a depth of 18 meters. In the western Atlantic, from the Bermudas and the northeastern Gulf of Mexico to Tobago.

*133. Alpheus peasei (Armstrong)

Alpheus (Dicnesia) candei.—Verrill 1922:68, fig. 56, pl. 19: figs. 3a–d, pl. 20: fig. 1, pl. 21: figs. 6, 6a, pl. 24: figs. 2–4, pl. 29: figs. 1a—t. [Not A. candei Guérin-Méneville, 1855.]

Crangon peasei Armstrong, 1940:1.

MATERIAL.—Anguilla (Sta. 55–58: 2 , 2 [1 ovig.]).—Barbuda (Sta. 112a–58: 4 , 2 ).—Saint Christopher (Sta. 103–56: 1 , 3 [2 ovig.]).—Antigua Island (Sta. 73–56: 2 , 3 ovig. ).—Dominica (Sta. 62–56: ly : Sta. 75–59: 1 , 2 ovig., 5 juv.).—Saint Lucia Island (Sta. 65–59: 1 , 1 ovig. ).—Tobago Cays (Sta. 23–56: 1 , 1 ovig.).—Tobago (Sta. 8–59: 5 [3 ovig.]).—Isla de Cozumel (Sta. 34–60: 1 ; Sta. 115–60: 2 , 3 ovig.).—Bahía de la Ascensión (Sta. 52–60: 1 , 1 ovig., 2 juv.; Sta. 67–60: 1 , 1 ; Sta. 85–60: 1 ovig. ; Sta. 95–60: 1 , 1 ovig. , 1 juv.).—Bahía del Espíritu Santo (Sta. 41–60: 1 spec).

HABITAT.—Most of the specimens listed above were found on, under, or in the interstices of rocks and dead coral from the intertidal zone to a depth of 7 meters. One pair was extracted from a sponge in 3 feet of water.

TYPE-LOCALITY.—Castle Harbour, Bermudas.

DISTRIBUTION.—Bermudas and Florida Keys to Tobago and westward to Isla de Providencia and the Yucatan Peninsula; littoral and sublittoral.

*134. Alpheus ridleyi Pocock

Alpheus Ridleyi Pocock, 1890:518.

Alpheus nigrospinatus Rankin, 1898:249, pl. 30: fig. 6.

Alpheus ridleyi.—Crosnier and Forest 1966:230, 232, 233, 236, 237.

MATERIAL.—Anguilla (Sta. 55–58: 1 ).—Antigua Island (Sta. 73–56: 1 , 3 [2 ovig.]).—Saint Lucia Island (Sta. 47–56: 1y ; Sta. 60–59: 1 ).—Tobago Cays (Sta. 22–56: 1 ).—Tobago (Sta. 8–59: 2 , 1 ovig. ).—Isla de Cozumel (Sta. 115–60: 1 )—Bahía de la Ascensión (Sta. 67–60: 1 juv.).

HABITAT.—This species seems to have been collected most frequently under boulders and pieces of coral on sandy beaches, but it was also found in coral rock at depths of 4 feet or more.

TYPE-LOCALITY.—Arquipélago de Fernando de Noronha, Brazil.

DISTRIBUTION.—Bahamas to Fernando de Noronha, Brazil, and westward to the Yucatan Peninsula; littoral and sublittoral.

MATERIAL.—Antigua Island (Sta. 110–59: 2 ovig. ).—Grenada (Sta. 8–56: 1 holotype, USNM 135361).—Tobago (Sta. 15–59: 4 , 3 [2 ovig.]; Sta. 26–59: 1 ).

In addition to the above, I have seen a small male that seems to belong to this species from Cape Florida, Key Biscayne, Florida; it was collected 22 August 1969 by Gary Hendrix.

DESCRIPTION.—Rostrum (Figures 21a, b) small, triangular, reaching little beyond margins of ocular hoods, marked dorsally by low carina extending posteriorly about as far as posterior margins of ocular hoods. Ocular hoods strongly produced anteriorly, unarmed, bounded mesially by shallow but distinct adrostral depressions and laterally by similarly distinct grooves. Anterolateral margin of carapace nearly vertical for short distance below ocular hood, slanting posteroventrally near lateral midline of basal segment of antennal peduncle. Posterior margin of carapace with cardiac notch.

Pleura of 5 anterior abdominal somites broadly rounded. Sixth somite sharply acute ventral to insertion of uropod, bluntly acute dorsal to insertion. Telson (Figure 21c) nearly three-fourths as broad as long, posterior margin slightly more than half as wide as anterior margin; 2 pairs of rather stout dorsal spines, anterior pair inserted slightly anterior to midlength of telson, posterior pair slightly nearer to posterior margin than to anterior pair; posterior margin convex, armed with 2 pairs of stout lateral spines, mesial pair twice, or more than twice, as long as lateral pair, space between spines bearing double row of long setae.

Eyes entirely concealed by ocular hoods.

Antennular peduncle (Figure 21d) with stylocerite short, not nearly reaching distal margin of basal segment. Second segment subequal in length to first, about twice as long as third.

Antennal scale (Figure 21e) about three times as long as wide; outer margin strongly concave proximally, faintly convex distally, distal spine very stout, considerably wider than distal portion of blade, not reaching as far as end of antennular peduncle; blade narrowing abruptly with sinuous margin in distal half, falling far short of tip of spine. Antennal peduncle slightly overreaching antennular peduncle; basal segment with sharp slender lateral tooth below base of antennal scale.

Mouth parts as figured (Figures 21f–k). Mandible with 9 marginal teeth and vestige of tenth on incisor process. Third maxilliped overreaching antennal scale by two-thirds of terminal segment, exopod barely overreaching antepenultimate segment.

Major first pereiopod (Figure 21l) overreaching antennal scale by chela and carpus. Chela (Figure 21m) compressed, notched dorsally and ventrally, and grooved on both lateral surfaces. Movable finger opening and closing somewhat obliquely, rather strongly arched, truncately rounded distally, usually with distinct groove in distal part of each lateral surface; opposable margin with large, hooked, blunttipped tooth fitting into socket in fixed finger. Palm with well-defined depression on lateral surface spreading from dorsal notch to narrowly acute apex ventrally and continuing proximally as broad groove with subparallel margins disappearing proximal to oblique suture; depression bounded ventrally by rounded ridge delimited ventrally by longitudinal sinuous depression extending distally to near base of movable finger and obscurely joining similar depression on fixed finger; continuation of ventral notch sharply defined proximally, trending distally into depression on fixed finger. Mesial surface of palm with deep, sharply defined, elongate, triangular depression spreading from dorsal notch and bounded ventrally by strong, anteriorly acute boss accentuated by sinuous longitudinal depression extending proximally from articulation with movable finger nearly to midlength of chela; narrow oblique groove running ventrally and proximally from dorsal margin opposite articulation with finger and joining longitudinal depression at apex of boss; ventral notch continued on mesial surface as well-defined, obliquely U-shaped depression. Notches in dorsal and ventral margins distinct and slightly overhung proximally. Merus of major cheliped with flexor margins unarmed distally. Minor first cheliped (Figure 21n) overreaching antennal scale by chela and carpus. Movable finger rounded, usually slightly more than half as long as palm in males, often less than half as long as palm in females. Palm not noticeably compressed, without grooves or depressions, distal angle on mesial side of articulation with finger rounded, subrectangular. Merus with flexor margins unarmed distally. Second pereiopod (Figure 22a) overreaching antennal scale by chela, carpus, and most of merus. Movable finger considerably shorter than palm (Figure 22b). Carpus about three times as long as chela, subdivided into 5 articles decreasing in length as follows: 2, 1, 5, 4, 3. Merus slightly longer than 3 proximal articles of carpus and distinctly longer than ischium. Third pereiopod (Figure 22c) overreaching antennal scale by dactyl, propodus, and half of carpus; dactyl (Figure 22d) simple and unarmed, somewhat less than half as long as propodus; propodus with row of 6 strong spines on flexor margin and about 4 similar spines in adjacent discontinuous row. Carpus about as long as propodus; merus as long as carpus and fully half of propodus, slightly less than three times as long as wide, with small blunt tooth at distal end of flexor margin; ischium unarmed. Fourth pereiopod (Figures 22e, f) overreaching antennal scale by dactyl, propodus, and one-third of carpus, very similar to third pereiopod, but distal tooth on flexor margin of merus usually less distinct or absent. Fifth pereiopod (Figure 22g) much smaller than third and fourth, reaching only to midlength of antennal scale; dactyl (Figure 22h) not much more than one-third as long as propodus; propodus with spines on flexor margin clustered in distal third of length; carpus slightly longer than propodus; merus very slightly longer than carpus and without tooth at distal end of flexor margin.

Second pleopod of male (Figure 22i) with appendix masculina (Figure 22j) distinctly overreaching appendix interna. Uropod (Figure 21c) with lateral margin of lateral branch terminating in 2 widely separated teeth flanking long, uncolored movable spine; mesial branch of uropod with series of inconspicuous spines, in addition to setae, on distal margin.

Eggs numerous and small, measuring about 0.5 by 0.7 mm.

COLOR.—Color notes on the small male (carapace length 4.0 mm) from Key Biscayne, Florida, have been kindly contributed by the collector, Gary Hendrix: Carapace and abdomen mostly translucent and colorless. Carapace with band of bluish chromatophores on rostrum and anterior margin of carapace; hepatopancreas green; cluster of bluish chromatophores in dorsal midline near posterior margin of carapace. Abdomen with bluish-gray to greenish transverse bands (formed by numerous small blue chromatophores surrounding expanded and much sparser red chromatophores) near anterior margin of first somite and along posterior margins of 5 posterior somites; telson with 3 characteristic longitudinal stripes of grayish green. Antennules and antennal scale transparent. Antennal peduncle with scattered blue chromatophores. Major first pereiopod with chela marked by broad, brownish to chocolate-brown band covering most of extensor margin of palm and extending obliquely to distal half of flexor margin of propodus; chela white elsewhere; carpus and merus with few brown spots on white background. Minor first pereiopod with chela mostly brown, except for white proximal half of movable finger; carpus and merus as in major cheliped. Second pereiopods very conspicuously colored with bright blue. Three posterior pairs of pereiopods translucent and colorless. Lateral branch of uropod with subdistal, transverse, grayish-green band; mesial branch with similar oblique or nearly longitudinal band.

POSTURE.—Gary Hendrix noted that this species maintains a rather unusual posture about 90 percent of the time. The major first chela is directed upward at an angle of 45 degrees, the second pereiopods are held high and flexed in an arc, the third and fourth pereiopods are held together and angled forward in a partially flexed attitude, the fifth pereiopods are similarly flexed but lean posteriorly, and the abdomen is flexed under the thorax.

SIZE.—Males with carapace lengths, to base of rostrum, of 3.6–6.8 mm (holotype 6.0 mm); females, 5.2–7.0 mm; ovigerous females, 5.8–7.0 mm.

HABITAT.—In coral and conglomerate rock in the intertidal zone, sometimes exposed at low tide.

TYPE-LOCALITY.—Grand Anse Bay outside Saint Georges Harbour, Grenada, in partially exposed conglomerate rock and coral ledge along shore.

DISTRIBUTION.—Known only from the type-series from the Florida Keys, Antigua Island, Grenada, and Tobago.
bibliyografik atıf
Chace, Fenner Albert, Jr. 1972. "The shrimps of the Smithsonian-Bredin Caribbean Expeditions with a summary of the West Indian shallow-water species (Crustacea: Decapoda: Natantia)." Smithsonian Contributions to Zoology. 1-179. https://doi.org/10.5479/si.00810282.98

Alpheus heterochaelis ( Danca )

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Alpheus heterochaelis er en blandt mange rejer som kaldes knipsereje eller pistolreje. Ved at smælde sine klosakse sammen kan den lave varme kollapsende eller imploderende gasbobler med en temperatur på mindst 5.000 kelvin. Det kaldes også sonoluminescens (rejeluminescens).

Eksterne henvisninger

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Alpheus heterochaelis: Brief Summary ( Danca )

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Alpheus heterochaelis er en blandt mange rejer som kaldes knipsereje eller pistolreje. Ved at smælde sine klosakse sammen kan den lave varme kollapsende eller imploderende gasbobler med en temperatur på mindst 5.000 kelvin. Det kaldes også sonoluminescens (rejeluminescens).

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Alpheus heterochaelis ( İngilizce )

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Alpheus heterochaelis, the bigclaw snapping shrimp, is a snapper or pistol shrimp in the family Alpheidae. It is found in the western Atlantic Ocean and the Gulf of Mexico.

Description

The bigclaw snapping shrimp has a small rostrum and no spines on the edge of its carapace. The big claw or chela which gives it its common name can be either the right or left claw and is disproportionally large, measuring half the length of the body. It has a deep notch on either side beneath the finger joint. The other claw is unmodified and of normal size. The bigclaw is the largest species of snapping shrimp in its home range, growing to a maximum length of 5.5 centimetres (2.2 in), but most adults are considerably smaller than this. Its colour is a translucent dark green with orange and blue tips to the uropods.[2]

Distribution and habitat

The bigclaw snapping shrimp is found in tropical and semitropical waters in the Gulf of Mexico, the West Indies, Bermuda, and the western Atlantic Ocean from Cape Hatteras south to Florida and Brazil.[1] It lives close to the seabed in shallow waters favouring reefs, seagrass meadows, salt marshes and muddy areas. It often conceals itself in a natural aperture during the day though it is unclear whether it can dig itself a burrow.[2]

Biology

The bigclaw snapping shrimp produces a loud, staccato concussive noise with its snapping claw. The sound is produced when the claw snaps shut at great speed creating a high-speed water jet. This creates a small, short-lived cavitation bubble and it is the immediate collapse of this bubble that creates the sound.[3] A spark is formed at the same time. The snapping noise serves to deter predators and to stun prey, and is also used for display purposes.[2]

The bigclaw snapping shrimp feeds on worms, small crustaceans and fish such as gobies and pearlfish. It is itself eaten by the weakfish (Cynoscion regalis). It is often associated with the black-clawed mud crab (Panopeus herbstii), sharing the crab's burrow and remaining uneaten, even though this crab eats similar-sized shrimps of other species.[2]

Bigclaw snapping shrimps mostly live as monogamous pairs. The female is only receptive for a short time just after moulting. The eggs hatch about four weeks after being laid and the larvae do not feed, but instead rely on their egg yolks. They develop very quickly and pass through their three larval stages in about five days. The newly metamorphosed juvenile shrimps have equal sized chelae; one of these enlarges at a later stage.[2]

References

  1. ^ a b De Grave, Sammy (2010). "Alpheus heterochaelis Say, 1818". WoRMS. World Register of Marine Species. Retrieved 2012-10-12.
  2. ^ a b c d e Masterson, J. (2008). "Alpheus heterochaelis: Bigclaw Snapping Shrimp". Smithsonian Marine Station at Fort Pierce. Retrieved 2020-08-19.
  3. ^ Versluis, Michel; Schmitz, Barbara; von der Heydt, Anna; Lohse, Detlef (2000). "How Snapping Shrimp Snap: Through Cavitating Bubbles". Science. 289 (5487): 2114–2117. doi:10.1126/science.289.5487.2114. PMID 11000111.
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Alpheus heterochaelis: Brief Summary ( İngilizce )

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Alpheus heterochaelis, the bigclaw snapping shrimp, is a snapper or pistol shrimp in the family Alpheidae. It is found in the western Atlantic Ocean and the Gulf of Mexico.

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Alpheus heterochaelis ( Fransızca )

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Alpheus heterochaelis est une espèce de crevettes marines de la famille des Alpheidae, dont la technique de chasse est celle des crevettes-pistolet.

Dénomination

Généralement présenté comme appartenant à la « famille » des crevettes-pistolet, appellation vulgaire qui regroupe plusieurs taxons, Alpheus heterochaelis est également dénommé cardon grandes pinces ( bigclaw snapping shrimp en anglais), du fait de sa pince proéminente[1].

Habitat

Alpheus heterochaelis est une crevette à grosses pinces vivant dans les eaux de l'océan Atlantique ou du golfe du Mexique[2],[3]. Il vit près du fond marin dans les eaux peu profondes favorisant les récifs, les prairies marines, les marais salés et les zones boueuses.

Elle se trouve plus précisément le long de la côte médio-atlantique des États-Unis, depuis les Outer Banks de Caroline du Nord jusqu'au sud de la Floride[4],[5]. Son aire de répartition s'étendrait de la partie inférieure de la baie de Chesapeake au comté d'Aransas, au Texas, à Cuba, à Curaçao, au Suriname, aux îles des Caraïbes et à Sao Paulo, au Brésil[2]. Mais dans une réévaluation des habitats des Alpheus, Christoffersen (1984) a déclaré que les spécimens identifiés comme A. heterochaelis présents dans le nord du golfe du Mexique sont en fait A. estuariensis[6]. Des études électrophorétiques ont révélé la présence de deux espèces dans le nord du golfe du Mexique. Une des espèces était A. heterochaelis, l'autre était Alpheus angulatus[7].

Parmi la diversité des espèces microbenthiques enregistrées dans certains secteurs côtiers de Mumbai et de ses environs. Alpheus euphrosyne, Alpheus heterochaelis et une espèce de balane (Balanus amphitrite) ont été trouvées dans et sur les rochers et les roches du rivage de Marine Drive[8].

Une grande partie de la population des crevettes à grandes pinces vit dans des eaux de mer chaude subtidales à une profondeur de 30 mètres[4]. A. heterochaelis vit souvent enfouie sous les décombres de coraux ou parmi les amas d'huîtres des estrans[9]. Elles se regroupent dans des milieux côtiers ainsi que dans des récifs où elles peuvent se terrer sous des rochers, des algues ou d’autres couvertures pour se protéger durant la journée[4]. Elle se limite à des terriers et à des dépressions peu profondes sous les coquilles d'huîtres adjacentes à l'habitat des marais salés[10].

Ces crevettes possèdent une grande tolérance à des concentrations de sel variées, la salinité de leur habitat varie de mésohaline (5-18 ppt) à hyperhaline (>40 ppt)[4].

Alpheus heterochaelis fait partie des crustacés dominants qui ont colonisé les récifs artificiels lors d’une étude de conception de récif qui maximise le nombre d'organismes abrités[11].

Description physique

Les crevettes Alpheus heterochaelis sont généralement d'un vert translucide foncé avec des uropodes (appendices abdominaux des crustacés) aux extrémités orange et bleues. Le rostre est petit, le bord de la carapace est lisse et sans épines. La pince la plus grande est fortement entaillée sur les bords supérieur et inférieur et elle atteint une longueur presque la moitié de celle du corps. Les pinces du mâle sont plus grandes et plus larges que celles des femelles de taille égale (Nolan et Salmon 1970, Herberholz et Schmitz 1998)[12].

Cette crevette à grandes pinces est une des plus grandes de toutes les crevettes de la famille des Alpheidae. La longueur moyenne des adultes mâles et femelles, du rostre à l’extrémité de la queue, varie de 3 à 5,5 cm[13]. La seule différence morphologique entre les sexes est une pince légèrement plus grande pour le mâle par rapport à celle de la femelle[4],[14].

Le corps de la crevette est composé de 3 paires de pattes, 2 paires antennes et une paire de pinces.

Les deux paires d'antennes sont composées d’antennules courtes (premières antennes) et des antennes postérieures ou latérales à celles-ci (secondes antennes) qui sont souvent beaucoup plus longues[15].

La paire de pinces comporte une pince modifiée et une pince non modifiée. La pince modifiée n’apparait que chez les crevettes adultes[4].

La pince modifiée est le trait le plus spécifique chez les crevettes pistolets. Elle ressemble à un gant de boxe vert tacheté et peut atteindre la moitié de la taille de la crevette[9]. En ouvrant sa pince et en coinçant la plus petite partie de la pince, elle est capable de « tirer » en claquant les deux parties de la pince ensemble[4]. Cette pince modifiée est composée de 2 parties; la partie fixe s'appelle « propus » et la partie mobile, le « dactyle »[13],[14],[16].

La fermeture de leurs pinces est si rapide qu'elles forment des bulles de vapeur d'eau par cavitation. Lorsque les bulles de cavitation s’effondrent, elles libèrent de l'énergie sous forme de lumière, de son et d'onde de choc. Elles utilisent cette faculté pour se protéger, chasser ou communiquer[17].

Ces crevettes possèdent aussi des capuchons orbitaux qui sont des extensions de leur carapace qui recouvrent leurs yeux. La surface de ces capuchons peut devenir plus aérophobe en utilisant des « anti-reflective nipple arrays » similaires à ceux utilisés par les invertébrés terrestres comme surfaces anti-reflets. Cela à pour effet de protéger les yeux des crevettes des ondes produites par les bulles de cavitation lorsque celles-ci communiquent entre elles ou lorsqu’elles s’affrontent[17],[18].

Biologie

Elle est connue pour ses intenses claquements de pinces qui vont jusqu'à provoquer des ondes de choc, étourdissant les proies, les rivaux alentour et les prédateurs. Ses yeux présentent également des caractéristiques très originales dans la monde animal[19].

Dans la revue scientifique Biology Letters (en) publiée par la Royal Society, des chercheurs de l'université de Columbia aux États-Unis ont mesuré les impulsions électriques produites par l'œil de cette crevette alors que celui-ci était soumis à une lumière clignotante. Ce crustacé peut parfaitement discerner une lumière qui clignote à une fréquence de 160 Hz et cela reste sans égal chez les animaux aquatiques[20].

Développement

Le développement post-embryonnaire des crustacés décapodes est généralement caractérisé par le passage par plusieurs stades larvaires, avec de petits incréments de changement structurel (morphogenèse) à partir de la morphologie initiale et des augmentations concomitantes de taille (croissance), pour aboutir à une altération structurelle plus drastique (métamorphose), donnant une "postlarve" ou "mégalope" qui est plus proche de la forme adulte (Williamson, 1982). Chez les crustacés adultes, le stade qui suit une mue est simplement plus grand, mais chez les animaux en développement, le corps est modifié morphologiquement par rapport à la forme prémolte. L'ecdysis, c'est-à-dire la chute de l'ancienne cuticule, sépare un stade larvaire du stade précédent[5].

Alpheus heterochaelis présente un excellent "système" de développement qui peut être utilisé pour élucider le mode de contrôle des processus de développement. Le développement larvaire d'A. heterochaelis de la Caroline du Nord, décrit par Knowlton (1973), présente des caractéristiques uniques de développement, parmi lesquelles une phase larvaire abrégée comprenant seulement trois stades larvaires. Le temps de gestation après fécondation des œufs est de 28 jours. Après l’éclosion, les jeunes crevettes entament un cycle de métamorphose de trois stades larvaires. La période larvaire entière ne dure que 4-5 jours, le premier stade ne dure que 1 à 2 heures pendant lesquelles l'organisme grossit. Le deuxième stade larvaire dure 28 heures où se poursuit le développement des yeux et des appendices de la crevette. Les larves d'A. heterochaelis éclosent avec une grande quantité de vitellus et d'huile stockés qu'elles utilisent apparemment comme seule source d'énergie pendant toute la période larvaire. Ainsi, les variations de croissance résultant de différences dans la quantité de nourriture externe disponible ou de conditions de stress alimentaire sont éliminées. L'alimentation exogène ne commence pas avant le stade postlarvaire, lorsque les pièces buccales se transforment en organes d'alimentation fonctionnels. De plus, pendant la phase larvaire, ces animaux ne grandissent pas et la postlarve est en fait légèrement plus courte par rapport à la longueur du dernier (troisième) stade larvaire. Le troisième et dernier stade de développement larvaire dure environ 2 à 3 jours mais aucune information sur les détails du développement au cours du troisième stade larvaire n'a pu être trouvée[4],[5].

Une expérience a montré que l’ablation des pédoncules oculaires des larves de A. Heterochaelis a eu pour effet une augmentation de la taille du corps des crevettes. Celles qui ont subi l’ablation au deuxième stade (2 heures après l’éclosion) ont une taille moyenne de 5,76 cm par rapport à celles qui l’ont subi 70 heures après l’éclosion avec un taille moyenne de 4,97 cm[5].

L'ablation du pédoncule oculaire entraîne l'apparition de formes larvaires-postlarvaires intermédiaires et une diminution du temps entre les mues. Cette ablation entraîne également une augmentation proportionnellement plus importante de la taille à chaque ecdysis chez les adultes et chez les larves. Chez les stades ultérieurs des décapodes, il existe des preuves d'une corrélation entre le moment de l'ablation et l'expansion relative de la taille du corps[5].

Cette augmentation de taille est due à une altération de la régulation hydrominérale, entraînant un plus grand afflux d'eau lors de l'ecdysis, donc un plus grand étirement du tégument[5].

Reproduction

Les crevettes à grandes pinces sont monogames et leur cycle de reproduction est directement lié au cycle de mue de la crevette femelle. Quelques heures après la mue, la femelle est sexuellement réceptive et envoie des signaux chimiques[21] qui signalent l'ouverture de cette fenêtre d'accouplement[4].

Les femelles ne peuvent se reproduire que tous les 17 à 23 jours, ce qui correspond à leur mue, et ne sont réceptives que pendant quelques heures après l'ecdysis. Les mâles, par contre, peuvent s'accoupler plus souvent (Knowlton, 1978), ce qui entraîne un sex-ratio opérationnel biaisé par les mâles. Cela fait de la disponibilité des femelles un facteur limitant pour la reproduction. De plus, les femelles investissent plus de temps et d'efforts dans la reproduction que les mâles, car elles portent la ponte attachée à leurs pléopodes pendant environ deux semaines, jusqu'à l'éclosion des larves[22].

La crevette Alpheus heterochaelis partage habituellement son abri avec un congénère du sexe opposé. En laboratoire, les paires mâle-femelle restent ensemble pendant plusieurs semaines, et les données sur le terrain pour un congénère suggèrent qu'ils restent ensemble pendant des mois[22].

Choix du partenaire

Le choix du partenaire respecte certains critères comme la capacité à défendre des ressources ou se défendre contre les intrus. Une expérience a montré que les femelles préféraient et se disputaient les mâles de tailles corporelles plus grandes car ils sont plus à même de défendre un abri contre d'autres congénères. Pour ce qui s’agit des mâles de plus petites tailles, il a été montré que les femelles ont tendance à s’accoupler plus fréquemment avec des petits mâles qui possèdent un abri que ceux qui n'en possèdent pas. Cependant, les mâles de grande taille expulsent plus facilement les mâles de petites tailles de leurs abris[22],[23].

Les différences de taille observées chez les crevettes appariées résultent d'une sélection naturelle. La grande taille de la pince modifiée du mâle par rapport à la taille du corps s'explique par une pression de sélection favorisant son accouplement avec des femelles plus grandes qui peuvent produire plus de descendants[21].

Comportement

A. Heterochaelis est une espèce très territoriale et est souvent confronté à des intrusions. Cela même à des affrontements entre le mâle défenseur et l’intrus[4].

Les duels entre crevettes à grande pince commencent avec une phase de reconnaissance et d’identification de chaque individu. Dans le cas où ce face-à-face se fait entre deux mâles ou entre un mâle en défense appartenant à un couple mâle-femelle et une femelle intruse, l'une des crevettes deviendra la dominante et la crevette soumise se retirera. Si l’interaction se produit entre une crevette mâle et une crevette femelle non appariées, elles formeront souvent un couple monogame[4].

A.heterochaelis est capable de reconnaître sa dominance ou sa soumission face à un adversaire. Un ancien perdant ne se bat pas contre un ancien gagnant, mais s'échappe immédiatement après un contact. Cependant, si un ancien perdant rencontre un adversaire inexpérimenté, le perdant se bat contre lui[24].

Lors d’une étude, les grands animaux gagnaient plus fréquemment que les petits, et cet effet augmente avec les différences de taille relative. Il s'agit d'un résultat attendu puisque la capacité à infliger des dommages augmente avec la taille. Le claquement est un acte agressif. Puisque les gagnants accomplissent plus d'actes agressifs que les perdants, on s'attend à ce que les gagnants fassent preuve de plus d'agressivité que les perdants[25].

Prédation

Les crevettes à grande pince sont la proie de nombreux poissons de plus grande taille, notamment le poisson Cynoscion regalis et le tambour rouge Sciaenops ocellatus. La taille plus grande de ces poissons rend inefficace la capacité de la crevette à étourdir les organismes en tirant avec sa pince modifiée[4].

Hughes (1995, 1996) a montré qu'il existe une corrélation positive entre la taille des pinces et le fait de gagner une rencontre agonistique[22].

La pince "pistolet"

La pince de l’Alpheus heterochaelis peut atteindre jusqu’à 2,8 cm de longueur, soit environ la moitié de sa taille corporelle.

Les mâles ont un rapport longueur de la pince modifiée/longueur totale du corps plus important que les femelles. Les femelles ont tendance à avoir un corps plus long et les mâles à avoir des griffes plus grandes. L'intensité du son produit par la grande pince est positivement corrélée à la taille de la griffe[21].

Des études cinématographiques révèlent que la grande pince se ferme dans un délai de 1,67 à 5,00 millisecondes pendant la production du claquement. Le jet d'eau qui s'ensuit se déplace à une vitesse d'environ 1,5 à 4,0 mm/sec et est dirigé vers un adversaire[21].

La crevette à grande pince produit un fort son de claquement par une fermeture extrêmement rapide de sa pince modifiée. Le bruit du claquement peut être entendu jour et nuit, avec des niveaux sonores pouvant atteindre 190 à 220 dB (crête à crête) à une distance de 1 m[13],[26]. Une étude a révélé l'origine des bruits émis par la crevette : les bulles de cavitation[9].

Cette étude sur la pince de la crevette Alpheus heterochaelis a vu le jour il y a quelques années, lorsque Barbara Schmitz, zoologiste à l'Université technique de Munich en Allemagne, filmait des crevettes dans son laboratoire et a remarqué le curieux flash d'une bulle sur certaines images. Lors d'une réunion en 1999, elle a contacté Detlef Lohse, qui étudie la dynamique des bulles. Ils ont décidé de collaborer[9].

Expérience

Afin d'observer les bulles en action, les chercheurs de Twente, Michel Versluis et Anna von der Heydt, ont attaché sept crevettes sur une plate-forme à l'intérieur de l'aquarium du laboratoire de Schmitz. Ils ont ensuite placé une caméra à haute vitesse (40 000 images par seconde) au-dessus, ou parfois au-dessous, de l'aquarium et ont suspendu un hydrophone, ou microphone sous-marin, dans l'eau. À plusieurs reprises, les chercheurs ont chatouillé la pince de chaque crevette avec un pinceau, en enregistrant sa réaction, pour un total de 108 expériences[9].

À chaque fois, la pince de la crevette s'est refermée, suivie, des centaines de microsecondes plus tard, par l'effondrement bruyant d'une bulle dans le jet d'eau qui s'ensuivait. La vidéo montre une bulle d'air qui se forme entre la pince d'une crevette qui se referme et qui s'envole avec le jet d'eau avant que la pince ne se referme. Quelque 300 microsecondes plus tard, la bulle gonfle jusqu'à environ 3 millimètres puis éclate, laissant un nuage de bulles plus petites qui se dissipent rapidement. Sur le plan audio, l'éclatement de la bulle, ou cavitation, émet invariablement un fort claquement. "Ce que nous entendons doit être le bruit des bulles", dit Schmitz. "Les enregistrements sont tout à fait convaincants"[9].

Fonctionnement

Avant de claquer, la pince s’ouvre en armant le dactyle dans une position de 100° grâce à la co-contraction d'un muscle ouvreur et d'un muscle rapprocheur, ce qui augmente la tension jusqu'à ce qu’un second muscle rapprocheur se contracte. La durée moyenne d'armement des griffes (générant une tension musculaire) avant le claquement est d'environ 500 ms. Il en résulte une fermeture extrêmement rapide de la pince en l’espace d’environ 750 microsecondes et un son court et très intense est produit lorsque les deux surfaces de la pince se heurtent[13],[14].

Les crevettes de l'étude ont fermé leurs pinces à des vitesses atteignant 108 kilomètres par heure, précise Lohse[9]. Un jet d'eau à grande vitesse est formé lorsque le piston du dactyle est enfoncé dans la cavité du propus, déplaçant ainsi l'eau[13]. Schein (1975) a évalué des vitesses de jet d'eau de 1,5 à 4 m/s et une largeur de jet d'eau de 20 à 700 à une distance de 0,5 à 3 cm de l'extrémité de la griffe du vivaneau dans une petite boîte de Pétri en verre en utilisant une analyse de film de 100 images par seconde[14].

Le son que produit la crevette provient uniquement de l'effondrement d'une bulle de cavitation générée par le jet d'eau rapide résultant de la fermeture rapide de la pince. La vitesse du jet d'eau est si élevée que la pression correspondante tombe en dessous de la pression de vaporisation de l'eau. L'eau de mer contient de minuscules bulles d'air, appelées noyaux. Une telle microbulle, si elle est située entre le dactyle et le propus de la pince de la crevette, va grossir lorsqu'elle est entraînée dans la région de basse pression générée par le jet d'eau. Par la suite, il s'effondre violemment lorsque la pression remonte[13].

"Ces bulles sont minuscules, mais elles ont une énorme énergie", remarque Lohse, le physicien Detlef Lohse de l'Université de Twente aux Pays-Bas qui a étudié ce phénomène. Les crevettes sont peut-être les premiers animaux connus à créer de puissantes bulles de "cavitation", plus communément produites par les hélices des navires[9].

Utilisation

Le jet d'eau est reçu et analysé par les poils sensoriels de la pince des crevettes congénères. Par conséquent, le "snapping" joue un rôle important dans la communication intraspécifique. Il peut (1) signaler la présence d'un congénère ; (2) identifier le genre ; (3) indiquer la taille et l'emplacement de l'animal qui claque[25].

En outre, le claquement n'est pas associé à la recherche de nourriture mais est plutôt utilisé pour défendre un abri ou un territoire et pour étourdir, voire tuer, des animaux proies tel que des vers et des poissons gobies, des crevettes et des petits crabes de vase[13],[14].

Le "claquement" à large bande de courte durée généré par leur pince modifiée est l'un des sons bioacoustiques les plus forts de l'environnement marin[27].

Une étude chez Alpheus heterochaelis a révélé que les individus isolés produisent des claquements en l'absence de provocation externe, et que le taux de claquement individuel est lié à la température, à l'heure du jour et au sexe[27],[28].

Ces dernières années, alors que la technologie et l'intérêt pour la surveillance acoustique passive des communautés marines se sont développés, il a été proposé que les sons des crevettes à grande pince puissent servir de mesure de la composition ou de la qualité de l'habitat, cependant, des relations cohérentes entre les crevettes à grande pince et les caractéristiques de l'habitat n'ont pas encore été fermement établies[27].

Durant la Seconde Guerre mondiale, la marine a lancé quelques-unes des premières études acoustiques sur les crevettes, dont le crépitement constant étouffait les sonars de détection des sous-marins[9].

Rôle écologique

L’impact de l’Alpheus heterochaelis sur l’écosystème est encore incertain aujourd’hui.

Dans certaines zones où les prédateurs de la crevette sont présents, une symbiose se crée entre la crevette à grande pince et des poissons tel que le godies, Cryptocentrus cryptocentrus. Pendant que le poisson profite des galeries créées par la crevette, l’A. heterochaelis profite des signaux tactiles du gobies l’informant de la présence de prédateurs[4]. Il a été avancé que les crevettes à grande pince s'engagent dans ces partenariats parce que leur vision est altérée par leur capuchon orbital, une extension de leur carapace qui couvre leurs yeux[18].

La crevette A. Heterochaelis peut être parasitée par des isopodes Entoniscidés (Epicaridea). Ce sont des parasites internes qui vivent dans l'hémocoele de crustacés décapodes, tels que les vrais crabes, les bernard-l'ermite, et des crevettes alpheidae[29].

Alpheus heterochaelis participe également à une symbiose avec le crabe de boue à pinces noires (Panopeus herbstii), qui construit et entretient des terriers dans les marais salés des États du centre de l'Atlantique, aux États-Unis. Une étude a montré que 11% des terriers creusés par ce crabe abritaient des crevettes à grande pince et que le Panopeus consomme volontiers d'autres crustacés des marais (c'est-à-dire des crevettes grises et des crabes violonistes) mais il ne s'attaque pas aux crevettes à grande pince[10].

Impact de l’homme

La production sonore des crevettes semble être influencée par les niveaux de pH. Une expérience soumettant les crevettes à des conditions futures élevées de CO2 a récemment été signalée comme diminuant le taux de claquement d'une Alpheidae, ce qui suggère que l'acidification des océans pourrait potentiellement entraîner des paysages sonores plus silencieux[27].

Notes et références

  1. Site futura-sciences.com, article de Marie-Céline Ray sur la crevette-pistolet, consulté le 10 décembre 2020.
  2. a et b M R Mcclure et M. R. Mcclure, « Alpheus angulatus, a new species of snapping shrimp from the Gulf of Mexico and northwestern Atlantic, with a redescription of A. heterochaelis Say, 1818 (Decapoda: Caridea, Alpheidae) », Proceedings of the Biological Society of Washington, vol. 108,‎ 1995, p. 84–97 (lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  3. Matthew R. McClure et Ira F. Greenbaum, « Allozymic Variation and Biogeography of Snapping Shrimp (Alpheus) from the Gulf of Mexico and Northwestern Atlantic Coasts », The Southwestern Naturalist, vol. 44, no 4,‎ 1999, p. 462–469 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  4. a b c d e f g h i j k l et m (en) Seth Ratliff, « Alpheus heterochaelis (bigclaw snapping shrimp) », sur Animal Diversity Web (consulté le 29 mai 2021)
  5. a b c d e et f Paul S. Gross et Robert E. Knowlton, « Variation in Larval Size After Eyestalk Ablation in Larvae of the Snapping Shrimp Alpheus Heterochaelis », Journal of Crustacean Biology, vol. 19, no 1,‎ 1er janvier 1999, p. 8–13 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  6. (en) Christoffersen, M.L, « The Western Atlantic snapping shrimps related to Alpheus heterochaelis Say (Crustacea, Caridea) with the description of a new species. », Papéis Avulsos de Zoologia 35.,‎ 1984, p. 189-208
  7. Mary K. Wicksten et Matthew R. McClure, « Morphological Variation of Species of the Edwardsii Group of Alpheus in the Northern Gulf of Mexico and Northwestern Atlantic (Decapoda: Caridea: Alpheidae) », Journal of Crustacean Biology, vol. 17, no 3,‎ 1er juillet 1997, p. 480–487 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  8. (en) « Present Status of Intertidal Biodiversity in and around Mumbai (West Coast of India) », sur sciendo.com (DOI , consulté le 29 mai 2021)
  9. a b c d e f g h et i (en) Kathryn Brown, « For Certain Shrimp, Life's a Snap », Science, vol. 289, no 5487,‎ 22 septembre 2000, p. 2020–2021 (ISSN et , PMID , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  10. a et b Brian R. Silliman, Craig A. Layman et Andrew H. Altieri, « Symbiosis between an Alpheid Shrimp and a Xanthoid Crab in Salt Marshes of Mid-Atlantic States, U.S.A. », Journal of Crustacean Biology, vol. 23, no 4,‎ 1er décembre 2003, p. 876–879 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  11. Joshua F. Borntrager et Terence M. Farrell, « THE EFFECT OF ARTIFICIAL REEF SIZE ON SPECIES RICHNESS AND DIVERSITY IN A FLORIDA ESTUARY », Florida Scientist, vol. 55, no 4,‎ 1992, p. 229–235 (ISSN , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  12. « Indian River Lagoon Species Inventory Home », sur irlspecies.org (consulté le 29 mai 2021)
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  15. Rachel Vickery, Kathleen Hollowell et Melissa Hughes, « Why have long antennae? Exploring the function of antennal contact in snapping shrimp », Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, vol. 45, no 3,‎ 1er mai 2012, p. 161–176 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  16. (en) Bonnie Ann Nolan, Michael Salmon, « The behavior and ecology of snapping shrimp (Crustacea: Alpheus heterochelis and Alpheus normanni) », sur www.researchgate.net
  17. a et b (en) « The orbital hoods of snapping shrimp have surface features that may represent tradeoffs between vision and protection », Arthropod Structure & Development, vol. 61,‎ 1er mars 2021, p. 101025 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  18. a et b Alexandra C. N. Kingston, Rebecca L. Lucia, Luke T. Havens et Thomas W. Cronin, « Vision in the snapping shrimp Alpheus heterochaelis », Journal of Experimental Biology, vol. 222, no jeb209015,‎ 8 novembre 2019 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  19. Science-et-vie.com, « Cette crevette a les yeux les plus rapides du monde aquatique - Science & Vie », sur www.science-et-vie.com, 24 juin 2020 (consulté le 29 mai 2021)
  20. Julie Kern, « Cette crevette voit 160 images par seconde », sur Futura (consulté le 29 mai 2021)
  21. a b c et d Howard Schein, « Aspects of the aggressive and sexual behaviour of alpheus heterochaelis say », Marine Behaviour and Physiology, vol. 3, no 2,‎ 1er janvier 1975, p. 83–96 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  22. a b c et d Nasreen Rahman, David W. Dunham et C. K. Govind, « Mate Choice in the Big-Clawed Snapping Shrimp, Alpheus heterochaelis Say, 1818 », Crustaceana, vol. 77, no 1,‎ 2004, p. 95–111 (ISSN , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  23. Michael R. Conover et Don E. Miller, « The importance of the large chela in the territorial and pairing behaviour of the snapping shrimp, Alpheus Heterochaelis », Marine Behaviour and Physiology, vol. 5, no 3,‎ 1er janvier 1978, p. 185–192 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  24. Michael Obermeier et Barbara Schmitz, « Recognition of Dominance in the Big-Clawed Snapping Shrimp (Alpheus heterochaelis Say 1818) Part II: Analysis of Signal Modality », Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, vol. 36, no 1,‎ 1er janvier 2003, p. 17–29 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  25. a et b Howard Schein, « The Role of Snapping in Alpheus heterochaelis Say, 1818, the Big-Clawed Snapping Shrimp », Crustaceana, vol. 33, no 2,‎ 1977, p. 182–188 (ISSN , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  26. « ShieldSquare Captcha », sur hkvalidate.perfdrive.com (DOI , consulté le 29 mai 2021)
  27. a b c et d Ashlee Lillis et T. Aran Mooney, « Loudly heard, little seen, and rarely understood: Spatiotemporal variation and environmental drivers of sound production by snapping shrimp », Proceedings of Meetings on Acoustics, vol. 27, no 1,‎ 10 juillet 2016, p. 010017 (DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  28. Ashlee Lillis, Jessica N. Perelman, Apryle Panyi et T. Aran Mooney, « Sound production patterns of big-clawed snapping shrimp (Alpheus spp.) are influenced by time-of-day and social context », The Journal of the Acoustical Society of America, vol. 142, no 5,‎ 1er novembre 2017, p. 3311–3320 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)
  29. A. M. Brockerhoff, « Occurrence of the Internal Parasite Portunion sp. (Isopoda: Entoniscidae) and Its Effect on Reproduction in Intertidal Crabs (Decapoda: Grapsidae) from New Zealand », The Journal of Parasitology, vol. 90, no 6,‎ 2004, p. 1338–1344 (ISSN , lire en ligne, consulté le 29 mai 2021)

Annexes

Article connexe

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Alpheus heterochaelis: Brief Summary ( Fransızca )

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Alpheus heterochaelis est une espèce de crevettes marines de la famille des Alpheidae, dont la technique de chasse est celle des crevettes-pistolet.

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Alpheus heterochaelis ( İtalyanca )

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Il gambero pistola (Alpheus heterochaelis Say, 1818) è un crostaceo della famiglia Alpheidae;[1] originario dell'oceano Atlantico occidentale, è diffuso nella Carolina del Nord, nelle Isole Bermuda, in Brasile e nelle Indie occidentali.[2]

Il gambero pistola deve il suo nome alla peculiare caratteristica di una delle sue chele, indifferentemente la destra o la sinistra, che è molto più grande dell'altra; con essa, aprendola e poi chiudendola velocemente, il crostaceo può produrre delle onde d'urto di devastante potenza, letali per piccoli animali. Il fenomeno è causato dall'esplosione delle bolle di cavitazione generatesi nel flusso d'acqua, che può raggiungere la velocità di 115 km/h, la pressione sonora di 210 dB e la temperatura di circa 4 400 °C.[3]

Altra peculiarità dell'Alpheus heterochaelis è quella di avere gli occhi tra i "più veloci" del regno animale, avendo una frequenza d'aggiornamento di 160 Hz, ovvero in ogni secondo 160 immagini passano attraverso il nervo ottico dell'animale.[4]

Sebbene il nome di "gambero pistola" sia spesso riferito a tale specie, in generale si identificano con lo stesso nome anche altri crostacei delle famiglie Alpheidae e Palaemonidae,[5] che condividono con l'Alpheus heterochaelis la stessa peculiarità, come ad esempio il Synalpheus parneomeris,[6] e il Synalpheus pinkfloydi.[7]

Distribuzione

Il gambero è originario dell'oceano Atlantico occidentale ed è diffuso nelle acque della Carolina del Nord, nelle Isole Bermuda, in Brasile e nelle Indie occidentali, maggiormente abbondante all'inizio dell'estate per poi diminuire verso la fine di luglio.[2]

L'Alpheus heterochaelis predilige un habitat protetto con fondali poco profondi quali barriere coralline, letti di ostriche, fondali fangosi o ricoperti di alghe o conchiglie, paludi salate oppure fangose.[2]

Descrizione

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Esemplare di Alpheus heterochaelis della lunghezza di circa 28 mm

Il carapace del gambero solitamente ha una lunghezza compresa tra i 6 mm e i 20 mm, anche se sono stati osservati esemplari adulti di dimensioni ben più considerevoli, che raggiungevano lunghezze comprese tra i 3 cm e i 5 cm. Il carapace è traslucido, liscio e senza spine, di colore verde scuro. Gli uropodi terminano con la punta arancione e blu e il rostro è di piccole dimensioni. Ha la peculiare caratteristica che una delle sue chele, indifferentemente la destra o la sinistra, è molto più grande dell'altra e raggiunge dimensioni pari a circa la metà del corpo; tale fenomeno è detto "eterochelia". Studi condotti su esemplari di gamberi pistola non hanno identificato organi uditivi.[2]

La chela maggiore, detta "schioccante" è asimmetrica; una parte è fissa (propus) mentre l'altra metà (dattilo) può flettersi incastrandosi come uno stantuffo in un piccolo alloggiamento della parte fissa. Contraendo un apposito muscolo, il gambero mette in tensione il dattilo, sganciandolo dall'alloggiamento del propus al momento dello "sparo". L'energia accumulata durante la tensione si rilascia con potenza generando un flusso d'acqua verso l'obiettivo, contenente bolle di cavitazione; il flusso può raggiungere la velocità di 115 km/h, la pressione sonora di 210 dB e la temperatura di circa 4 400 °C, e colpisce l'avversario o la preda con effetti spesso letali.[3] Il fenomeno, in determinate condizioni, può provocare sonoluminescenza.[8] Il forte suono prodotto è causato non tanto dal rapido rilascio della chela, ma dal collasso delle bolle di cavitazione prodotte.[9]

La chela dell'animale, per proteggersi dall'elevato stress meccanico e termico prodotto dal suo schiocco, è costituita da un materiale composito a sandwich, con elevato potere di isolamento termico e di assorbimento dell'energia meccanica.[10]

Il contemporaneo schioccare delle chele degli esemplari di un banco di gamberi pistola può interferire con le apparecchiature sonar militari, problema questo evidenziato nel corso della seconda guerra mondiale, o con l'ascolto, effettuato per fini naturalistici, dei suoni emessi da specie animali più grandi, quali balenottere.[11]

Biologia

Gli Alpheus heterochaelis vivono principalmente in coppie monogame il cui maschio, maggiormente aggressivo e potente, si occupa di proteggere la compagna. La femmina è ricettiva solo per poche ore, subito dopo la muta. Le uova si schiudono circa quattro settimane dopo essere state deposte e le larve si nutrono esclusivamente dei loro tuorli. Si sviluppano molto rapidamente e attraversano i loro tre stadi larvali in circa cinque giorni. I giovani esemplari hanno chele di dimensioni uguali; con il tempo una di queste due si ingrandisce fino a raggiungere la lunghezza pari a circa la metà del corpo.[2]

Con la chela maggiore, il gambero pistola riesce a produrre delle onde d'urto simili a proiettili, con cui stordisce le prede quali vermi, gamberetti, granchi o altri crostacei e piccoli pesci, conducendo la caccia specialmente di notte.[2] Gli eventuali scontri tra gli esemplari maschi di Alpheus heterochaelis si risolvono senza danni evidenti, poiché la distanza alla quale i due avversari si fronteggiano assicura che i getti d'acqua scambiati reciprocamente risultino inoffensivi; è quindi una lotta ritualizzata che vede vincitore l'esemplare più aggressivo.[2]

Applicazioni in ingegneria

L’Alpheus heterochaelis è stato oggetto di molte ricerche scientifiche, alcune delle quali allo scopo di utilizzare le peculiarità di tale specie animale in ambito ingegneristico. Una di queste ricerche, condotta dall'agenzia statunitense Defense Advanced Research Projects Agency (DARPA), si concentra sull'utilizzo dell'Alpheus heterochaelis come sistema radar per individuare sottomarini nemici.[12]

Nella cultura popolare

Note

  1. ^ (EN) De Grave, Sammy, Alpheus heterochaelis, in WoRMS (World Register of Marine Species).
  2. ^ a b c d e f g Indian River Lagoon Species Inventory: Alpheus heterochaelis
  3. ^ a b Matt Simon
  4. ^ (EN) Snapping Shrimp Have Some Of The Fastest Eyes In The Animal Kingdom, su IFLScience. URL consultato il 12 aprile 2021.
  5. ^ Focus - Le due armi segrete del gambero "pistolero"
  6. ^ (EN) The Journal of the Acoustical Society of America - The acoustics of the snapping shrimp Synalpheus parneomeris in Kaneohe Bay
  7. ^ Focus - Il gambero Pink Floyd uccide con il suono.
  8. ^ (EN) D. Lohse, B. Schmitz e M. Versluis, Snapping shrimp make flashing bubbles, in Nature, n. 413, 2001.
  9. ^ Versluis M, Schmitz B, von der Heydt A, Lohse D, How snapping shrimp snap: through cavitating bubbles, in Science 2000; 289(5487): 2114-7.
  10. ^ (EN) The snapping shrimp dactyl plunger: a thermomechanical damage-tolerant sandwich composite.
  11. ^ Trevor Cox, Pianeta acustico: Viaggio fra le meraviglie sonore del mondo, La scienza è facile, edizioni Dedalo, 2015, p. 104, ISBN 978-88-220-6858-3.
  12. ^ (EN) Rosie McCall, DARPA's New Scheme Involves Turning Snapping Shrimp Into Sub-Detecting Alert Systems (Yes, Really), su IFL Science, 26 marzo 2019.
  13. ^ (EN) Clauncher = Pistol Shrimp, su cheezburger.com. URL consultato il 20 settembre 2020.
  14. ^ (EN) Clauncher and Clawitzer, su Pokémaniacal, 13 luglio 2014. URL consultato il 20 settembre 2020.
  15. ^ Marco Perisse, Il gambero pistola e il suo super potere (raccontato dal film «Project Power» su Netflix), in GQ, 17 agosto 2020. URL consultato il 14 settembre 2020.

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Il gambero pistola (Alpheus heterochaelis Say, 1818) è un crostaceo della famiglia Alpheidae; originario dell'oceano Atlantico occidentale, è diffuso nella Carolina del Nord, nelle Isole Bermuda, in Brasile e nelle Indie occidentali.

Il gambero pistola deve il suo nome alla peculiare caratteristica di una delle sue chele, indifferentemente la destra o la sinistra, che è molto più grande dell'altra; con essa, aprendola e poi chiudendola velocemente, il crostaceo può produrre delle onde d'urto di devastante potenza, letali per piccoli animali. Il fenomeno è causato dall'esplosione delle bolle di cavitazione generatesi nel flusso d'acqua, che può raggiungere la velocità di 115 km/h, la pressione sonora di 210 dB e la temperatura di circa 4 400 °C.

Altra peculiarità dell'Alpheus heterochaelis è quella di avere gli occhi tra i "più veloci" del regno animale, avendo una frequenza d'aggiornamento di 160 Hz, ovvero in ogni secondo 160 immagini passano attraverso il nervo ottico dell'animale.

Sebbene il nome di "gambero pistola" sia spesso riferito a tale specie, in generale si identificano con lo stesso nome anche altri crostacei delle famiglie Alpheidae e Palaemonidae, che condividono con l'Alpheus heterochaelis la stessa peculiarità, come ad esempio il Synalpheus parneomeris, e il Synalpheus pinkfloydi.

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Alpheus heterochaelis ( Felemenkçe; Flemish )

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Alpheus heterochaelis is een garnalensoort uit de familie van de Alpheidae.[1] De wetenschappelijke naam van de soort is voor het eerst geldig gepubliceerd in 1818 door Say.

Bronnen, noten en/of referenties
  1. De Grave, S. (2012). Alpheus heterochaelis Say, 1818. Geraadpleegd via: World Register of Marine Species op http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=158348
Geplaatst op:
22-03-2013
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Alpheus heterochaelis ( Vietnamca )

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Alpheus heterochaelis là một loài tôm gõ mõ trong họ Alpheidae. Loài này được tìm thấy ở phía tây Đại Tây Dươngvịnh Mexico. Loài này có đôi càng to, mỏ nhỏ và không có gai ngạnh trên bên rìa mai của nó. Đây là loài tôm gõ mox lớn nhất trong chi trong phạm vi phân bố của nó, có chiều dài tối đa 5,5 cm. Nó có màu xanh lá cây tối mờ với màu cam và xanh biển đến khúc đuôi[2]. Loài tôm này được tìm thấy ở vùng biển nhiệt đới và cận nhiệt đới trong vịnh Mexico, Tây Ấn, Bermuda, và phía tây Đại Tây Dương từ phía nam Cape Hatteras đến Florida và Brasil. Chúng sinh sống gần đáy biển trong vùng nước nông có rạn san hô, đồng cỏ cỏ biển, đầm lầy nước mặn và các khu vực bùn. Nó thường che giấu mình trong một lỗ hổng tự nhiên trong ngày mặc dù người ta không biết rõ loài này có thể tự đào hang không[2].

Chú thích

  1. ^ De Grave, Sammy (2010). Alpheus heterochaelis Say, 1818”. Cơ sở dữ liệu sinh vật biển. Truy cập ngày 12 tháng 10 năm 2012.
  2. ^ a ă Masterson, J. (2008). Alpheus heterochaelis: Bigclaw Snapping Shrimp”. Smithsonian Marine Station at Fort Pierce. Truy cập ngày 12 tháng 10 năm 2012.

Tham khảo


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Alpheus heterochaelis: Brief Summary ( Vietnamca )

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Alpheus heterochaelis là một loài tôm gõ mõ trong họ Alpheidae. Loài này được tìm thấy ở phía tây Đại Tây Dươngvịnh Mexico. Loài này có đôi càng to, mỏ nhỏ và không có gai ngạnh trên bên rìa mai của nó. Đây là loài tôm gõ mox lớn nhất trong chi trong phạm vi phân bố của nó, có chiều dài tối đa 5,5 cm. Nó có màu xanh lá cây tối mờ với màu cam và xanh biển đến khúc đuôi. Loài tôm này được tìm thấy ở vùng biển nhiệt đới và cận nhiệt đới trong vịnh Mexico, Tây Ấn, Bermuda, và phía tây Đại Tây Dương từ phía nam Cape Hatteras đến Florida và Brasil. Chúng sinh sống gần đáy biển trong vùng nước nông có rạn san hô, đồng cỏ cỏ biển, đầm lầy nước mặn và các khu vực bùn. Nó thường che giấu mình trong một lỗ hổng tự nhiên trong ngày mặc dù người ta không biết rõ loài này có thể tự đào hang không.

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Depth range ( İngilizce )

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Shallow-waters (0-100 m)

Referans

Poupin, J. (2018). Les Crustacés décapodes des Petites Antilles: Avec de nouvelles observations pour Saint-Martin, la Guadeloupe et la Martinique. Muséum national d'Histoire naturelle, Paris, 264 p. (Patrimoines naturels ; 77).

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Distribution ( İngilizce )

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Distribution of subprovince extends northward of the Carolinian subprovince of Cape Hatteras through Florida

Referans

North-West Atlantic Ocean species (NWARMS)

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Habitat ( İngilizce )

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Hard bottom (rock and rubbles)

Referans

Poupin, J. (2018). Les Crustacés décapodes des Petites Antilles: Avec de nouvelles observations pour Saint-Martin, la Guadeloupe et la Martinique. Muséum national d'Histoire naturelle, Paris, 264 p. (Patrimoines naturels ; 77).

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