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Virus / infection vector
Deformed Wing virus is spread by Varroa destructor
Other: major host/prey

Virus / infection vector
Kakugo virus is spread by Varroa destructor

Animal / parasite / ectoparasite / blood sucker
Varroa destructor sucks the blood of pupa of Apis mellifera

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Comprehensive Description ( англиски )

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The mite Varroa destructor is an economically devastating ectoparasite of the Western Honeybee (Apis mellifera). It was originally known only from Apis cerana (which is found in southern and eastern Asia), but expanded its host range to include A. mellifera during the first half of the 20th century, spreading rapidly around the world, and is currently considered the single greatest threat to apiculture. Varroa mites have been considered a problem for beekeeping since around the late 1960s; by the 1970s, they had reached Western Europe and South America and by the 1980s they had reached the United States. On A. cerana, both V. jacobsoni and V. destructor apparently only parasitize drone (i.e., male) brood, whereas, for unknown reasons, the two mtDNA lineages of V. destructor that are capable of reproducing on A. mellifera utilize both drone and worker brood. (Rosenkranz et al. 2010 and references therein) Today, it can be safely assumed that all honey bee colonies within the mite’s range harbor varroa mites. As a consequence of mite infestation, dramatic colony losses have repeatedly occurred in affected countries (vanEngelsdorp and Meixner 2010 and references therein).

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Development ( англиски )

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From hatching out of the egg until the adult molt, developmental time is about 5.8 and 6.6 days for female and male mites, respectively. The mother mite creates a hole in the cuticle of the pupa for the nymphs to feed through. This behavior is part of ‘‘parental care” and necessary because the soft chelicerae of the nymphal stages cannot perforate the pupal cuticle and the male’s chelicerae are modified for sperm transfer. (Rosenkranz et al. 2010 and references therein).

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Life Cycle ( англиски )

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Varroa destructor lacks a free-living stage, being totally dependent on its honeybee host. There are two distinct phases in the life cycle of females: A phoretic phase on adult bees (during which the mite is transported by its host) and a reproductive phase within the sealed drone and worker brood cells. Males and nymphs are found only within the sealed brood cells in which bees are developing. The mites suck substantial amounts of hemolymph ("blood") from both adult bees and from the developing bees within the sealed brood cells. Shortly after leaving the brood cell on a young bee, the mites preferentially infest nurse bees for transport to the brood cells. Freshly hatched infested bees are less attractive than older ones and the middle-aged nurse bees are the most infested group of adult bees in breeding colonies. Drone brood are infested at a much higher rate than worker brood. Efforts to identify cues used by varroa females that cause them to switch from bees to brood, which might be used to develop an effective varroa trapping system, have so far been largely unsuccessful (Rosenkranz et al. 2010 and references therein).

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Lookalikes ( англиски )

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Varroa destructor resembles V. jacobsoni, with which it was confused until the end of the 20th century. Relative to V. jacobsoni, V. destructor is significantly larger and differs substantially with respect to mtDNA COI sequence, as well as at other genetic loci investigated. Varroa jacobsoni is rarely found on A. mellifera. Only a couple of lineages of V. destructor appear to have shifted hosts from A. cerana to A. mellifera. Varroa destructor now occurs nearly everywhere A. mellifera is found, but as of 2010 it had not yet been detected in Australia.

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Morphology ( англиски )

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Rosenkranz et al. (2010) review the morphology and reproductive systems of Varroa mites. These mites show a distinct sexual dimorphism in body form and males are smaller in all developmental stages and have proportionally longer legs than females.

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Phylogeography ( англиски )

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Only two of several known mitochondrial haplotypes of Varroa destructor have been found to be capable of reproducing on Apis mellifera (the others being limited to V. destructor's original host, A. cerana). Solignac et al. (2005) analyzed microsatellite markers and mtDNA of V. destructor from 45 populations in 17 countries. They found that the two V. destructor halotypes on A. mellifera also have characteristic and diagnistic alleles at numerous microsatellite loci. They also found genetic evidence suggesting that there has been at least one host transfer from A. mellifera back to A. cerana.

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Reproduction ( англиски )

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Once inside a 5th instar honeybee larva brood cell and several hours after it has been capped, the female Varroa mite begins to suck hemolymph ("blood") from the larva. Within a few hours, internal egg development is initiated and about 70 hours after the cell is capped, the mite lays her first egg. This first egg is normally unfertilized (females store sperm internally and are able to control whether or not an egg is fertilized). Like honeybees themselves, Varroa mites have a haplo-diploid sex determination system in which unfertilized (and hence haploid, i.e., with a single set of chromosomes) eggs develop into males and fertilized (and hence diploid, i.e., with two sets of chromosomes) eggs develop into females. The first egg is typically unfertilized and develops into a haploid male, while subsequent eggs are fertilized (and therefore female) and laid in 30 hour intervals. Up to five eggs in worker brood and up to six eggs in drone brood are considered typical. (Rosenkranz et al. 2010 and references therein)

Varroa mites become sexually mature immediately after the last molt. Males reach maturity before the females and wait for the first adult female, which molts to adulthood some 20 hours later. Before copulation starts, the male cleans his chelicerae (fang-like mouthparts characteristic of mites, spiders and relatives). He touches the female with his first pair of legs and climbs onto her back. He then slips around to her underside, a repositioning that is often facilitated by the female raising her body. In this "belly-to-belly" position, the male locates the female's gonopores (which are distinct from the genital opening through which the eggs are deposited). He then takes the spermatophore out of his genital opening and transfers it into the gonopore of the female using his chelicerae. Multiple mating is common until the next female is mature and available. (Rosenkranz et al. 2010 and references therein)

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Risk Statement ( англиски )

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Varroa destructor has a variety of negative impacts on honeybees (and, therefore, on human apiculture). The loss of hemolymph during development within the brood cell significantly decreases the weight of the hatching bee, which has a variety of downstream effects such as shortened lifespan of workers. This mite is also a vector for a variety of honeybee viruses, such as Deformed Wing Virus (DWV) and Israeli acute paralysis virus (IAPV) (vanEngelsdorp and Meixner 2010 and references therein). There is strong suspicion that V. destructor plays a significant role in Colony Collapse Disorder (Schäfer et al. 2010), having a synergistic effect in combination with other causes such as other pathogens, environmental factors, and stressful colony management practices. Some feral, unmanaged A. mellifera populations appear to have evolved a degree of resistance to varroa mites, after initial sharp declines, through natural selection and there is some hope that studying these examples could provide valuable insights that could be applied to managed colonies. (Rosenkranz et al. 2010 and references therein) On the other hand, a number of authors have noted that the level of mite infestation that causes significant colony damage appears to have decreased over time in at least some areas (vanEngelsdorp and Meixner 2010 and references therein). Clearly, the host-parasite relationship is complex and may vary through space and time as it evolves.

Cook et al. (2007) estimated that preventing Varroa destructor from establishing in Australia over the next 30 years would avoid costs of between 16 million and 40 million dollars (U.S.) per year.

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Systematics and Taxonomy ( англиски )

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The genus Varroa includes at least four species of obligate ectoparasitic mites. Varroa jacobsoni was described from Java in 1904 as a parasite of Apis cerana and has a wide distribution on this bee throughout Asia and on A. nigrocincta in Indonesia. Varroa underwoodi was first described from A. cerana in Nepal in 1987. Varroa rindereri was described from Apis koschevnikovi in Borneo in 1996. Varroa destructor was described from both A. cerana (its original host) and A. mellifera (a new host) in 2000; prior to its recognition, V. destructor was mistakenly lumped together with V. jacobsoni and most literature referring to V. jacobsoni prior to 2000 probably refers to the species now known as V. destructor. (Anderson and Trueman 2000; Rosenkranz et al. 2010 and references therein) Oldroyd (1999) discusses aspects of the evolution of the varroa mite-honeybee association and notes that A. mellifera is the only Apis species believed to have escaped natural parasitism.

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Varroa destructor ( каталонски; валенсиски )

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Imatge al microscopi (LTSEM) de Varroa destructor sobre una abella
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Varroa sobre pupes
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Varroa sobre pupes
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Varroa destructor sobre larva d'abella.

Varroa destructor és un àcar paràsit extern que ataca les abelles Apis cerana i Apis mellifera. La malaltia causada se'n diu varroosi i és la principal malaltia que actualment afecta les abelles, està estesa per la major part de les zones amb apicultura del món.

La varroa era només un paràsit habitual de l'abella asiàtica (Apis cerana). Al segle XIX, a l'est de Rússia, les abelles habituals de l'apicultura (Apis mellifera) portades a aquesta zona, entraren en contacte amb les asiàtiques i el paràsit passà d'unes a les altres. Els eixams infectats, en traslladar-se, han estès la varroa a gran part del món. Per ara no han arribat a Austràlia.

Varroa destructor només es pot multiplicar en colònies d'abelles. Ataca el cos de l'abella i la debiliten xuclar-li l'hemolimfa. En aquest procés l'àcar estén virus ARN com és el virus de deformació de les ales a l'abella. Una infestació significant porta a la mort de tota la colònia d'abelles, això passa normalment de finals de tardor fins al principi de primavera. La varroa és el paràsit de més importància econòmica en l'apicultura. Pot contribuir a l'anomenat “desordre del col·lapse de la colònia” que amenaça els ruscos de tota Amèrica del Nord.

Descripció física

L'adult de la varroa és de color marró vermellós amb una forma aplanada, fa 1-1,8 mm de llarg i 1,5-2 mm d'amplada; té vuit potes.

Reproducció, infecció i mortalitat de la colònia

La varroa es reprodueix en cicles de 10 dies. La femella de la varroa entra a una cel·la de cria d'abella. Tan aviat com les abelles tapen la cel·la, la varroa pon ous a la larva d'abella, principalment en mascles, (abellots). Les varroes joves surten de l'ou aproximadament en el mateix temps que les joves abelles es desenvolupen i deixen la cel·la i les varroes es van estenent entre altres abelles adultes i larves. Els adults xuclen la "sang" (hemolimfa) de les abelles adultes per alimentar-se, deixant ferides obertes. Les abelles atacades són més propenses a infeccions. Amb l'excepció d'algunes línies genètiques d'abelles (de Rússia o del Magreb per exemple) les abelles de l'espècie dominant en l'apicultura mundial Apis mellifera són quasi completament indefenses enfront d'aquests paràsits (Les abelles de Rússia, segurament per haver entrat en contacte amb el paràsit des de fa dos-cents anys, són d'un terç a un 50% menys susceptible a la reproducció aquest àcar[1]). L'abella asiàtica Apis cerana, que ha estat en contacte amb la varroa durant mil·lennis, ha desenvolupat estratègies de neteja contra el paràsit de manera que la vida de la colònia no corre perill.

En dotze setmanes el nombre de varroes es pot multiplicar per dotze. Quan arriba la tardor i deixa d'haver-hi abelles mascles, la varroa pon ous en les abelles femelles i pot eliminar tota la colònia.

Dates d'introducció de la varroa

Identificació

Varroa destructor fins fa poc s'identificava amb Varroa jacobsoni[1][2][3]. Les dues espècies ataquen a Apis cerana. fins a l'any 2000 no es van considerar com espècies separades, però la que parasita Apis mellifera és Varroa destructor.

Control o mesures preventives

Alguns sistemes, molt intensius en l'ús de mà d'obra, permeten fer que l'àcar faci la posta en un lloc preparat i poder destruir-la amb mitjans fisics.

La lluita química té dos problemes principals: deixar residus en la mel i l'aparició de resistències al producte químic per part del paràsit que acaben fent-lo inútil.

Productes químics naturals: Àcid oxàlic i timol (extret de la farigola). El timol mata pràcticament el 100% de la varroa sense afectar gairebé les abelles.[5]

Referències

  1. ^ Anderson, D & Trueman, J. W. H. (2000). "Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species." Experimental & Applied Acarology, 24, 165-189.
  2. ^ ZHANG, ZHI-QIANG Notes on Varroa destructor (Acari: Varroidae) parasitic on honeybees in New Zealand Systematic & Applied Acarology Special Publications (2000) 5, 9-14
  3. ^ Delaplane, Keith S. Varroa destructor: Revolution in the Making University of Georgia; Bee World; 2001; 82(4): 157-159

Notes

Enllaços externs

 src= A Wikimedia Commons hi ha contingut multimèdia relatiu a: Varroa destructor Modifica l'enllaç a Wikidata
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Varroa destructor: Brief Summary ( каталонски; валенсиски )

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 src= Imatge al microscopi (LTSEM) de Varroa destructor sobre una abella  src= Varroa sobre pupes  src= Varroa sobre pupes  src= Varroa destructor sobre larva d'abella.

Varroa destructor és un àcar paràsit extern que ataca les abelles Apis cerana i Apis mellifera. La malaltia causada se'n diu varroosi i és la principal malaltia que actualment afecta les abelles, està estesa per la major part de les zones amb apicultura del món.

La varroa era només un paràsit habitual de l'abella asiàtica (Apis cerana). Al segle XIX, a l'est de Rússia, les abelles habituals de l'apicultura (Apis mellifera) portades a aquesta zona, entraren en contacte amb les asiàtiques i el paràsit passà d'unes a les altres. Els eixams infectats, en traslladar-se, han estès la varroa a gran part del món. Per ara no han arribat a Austràlia.

Varroa destructor només es pot multiplicar en colònies d'abelles. Ataca el cos de l'abella i la debiliten xuclar-li l'hemolimfa. En aquest procés l'àcar estén virus ARN com és el virus de deformació de les ales a l'abella. Una infestació significant porta a la mort de tota la colònia d'abelles, això passa normalment de finals de tardor fins al principi de primavera. La varroa és el paràsit de més importància econòmica en l'apicultura. Pot contribuir a l'anomenat “desordre del col·lapse de la colònia” que amenaça els ruscos de tota Amèrica del Nord.

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Kleštík včelí ( чешки )

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Kleštík zhoubný[1] nebo kleštík včelí[2] [3] [4] (Varroa destructor Anderson & Trueman, 2000), nesprávně též roztoč zhoubný, je parazitický roztoč včely východní a včely medonosné. Způsobuje onemocnění varroázu. Je totiž přenašečem virových onemocnění.[5] Patří do rodu Varroa, společně s dalším včelím parazitem, kleštíkem Jakobsonovým (Varroa jacobsoni).

Český název

RNDr. Antonín Kůrka uvádí v roce 2005 v publikaci „České názvy živočichů VI. Pavoukovci (Arachnida) II. Roztoči (Acari)“ český název kleštík zhoubný.

Doc. Ing. Antonín Přidal, Ph.D., uvádí v roce 2006 v publikaci „Odborná včelařská terminologie: názvosloví živočichů a parazitismus“ a v roce 2007 v publikacích „Parazitismus, nemoci včel a názvosloví živočichů“ a „Vysvětlení nomenklatoriky a taxonomie v čeledi Varroidae (kleštíkovití)“ český název kleštík včelí[pozn. 1] a jako „nesprávná označení“ Varroa jacobsoni auct., roztoč Varroa, roztoč včelí, včelík zhoubný.

Biologie

Popis

Samičky kleštíka jsou viditelné pouhým okem. Jsou příčně oválné, široké 1,5-1,9 mm a dlouhé 1,1-1,5 mm. Zpočátku jsou žlutobílé, později červenohnědé až hnědé. Jsou lesklé. S fyziologickým dozráváním se u nich vyvine hnědý a tvrdý hřbetní štít. Nečlánkovaný hřbetní štít plně překrývá čtyři páry noh a ústní ústrojí.
Samečci kleštíka jsou velcí 0,8 mm a jsou šedobílí s měkkou pokožkou. Jejich tělo je okrouhlé.

Šíření parazita

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Kleštík na těle včely, pod elektronovým mikroskopem

Původním hostitelem kleštíka včelího (Varroa destructor) je včela východní (Apis cerana Fabricius, 1793).

K přenosu z včely východní na včelu medonosnou došlo pravděpodobně na začátku 20. století po dokončení transsibiřské magistrály. Následná migrační vlna z evropské části Ruska na Dálný východ způsobila kontakt dvou dosud geograficky izolovaných druhů. Do oblastí přirozeného výskytu včely východní, konkrétně do Přímořského kraje (část Ruska u Japonského moře), pronikla včela medonosná[6]. Dosud nenápadný kleštík našel na novém druhu včely optimální podmínky k životu, a tak se ocitl v centru pozornosti biologů a včelařů. Včela medonosná má z hlediska evolučního ke včele východní asi nejblíže, není však ani geneticky ani jinak vybavená k potlačení rozvoje tohoto cizopasníka. Bez zásahu člověka je invaze kleštíka do včelstva včely medonosné zničující. Existují ale náznaky, že evoluce včely se s tím dokáže vyrovnat za celkem krátkou dobu.[7]

Postupně s převozem napadených včelstev a prodejem matek včely medonosné se kleštík rozšířil i do oblastí; kde včela východní nežije. V padesátých letech byl tento roztoč zjištěn v Číně a v šedesátých letech byl na Dálném východě Ruské federace zcela běžný. Z Asie se kleštík šířil velmi rychle i do Evropy. V roce 1976 byl zavlečen až na území Maďarska a ve stejném roce pronikl do nejvýchodnějších okresů Slovenska. V roce 1977 byl kleštík zjištěn v Německu, kam byl zavlečen dovozem včely východní z Pákistánu, a v roce 1982 ve Francii. Prvního kleštíka v tehdejším Československu objevil v roce 1978 Hanko při systematické kontrole měli (spad na dně úlu) z pohraničních oblastí s Ukrajinskou SSR. Na jaře roku 1981 přes všechna ochranná opatření byl kleštík zavlečen převozem včelstev do okresu Ústí nad Orlicí. Odtud se postupně rozšířil po celém Česku.

Kleštík se šíří jako „nežádoucí pasažér“ na těle trubců. Pro trubce je charakteristické zalétání do cizích úlů, a tak se stávají hlavními přenašeči parazita. Podobně dělnice přenášejí přichyceného kleštíka do včelstev při zalétávání, loupežích a rojením.
Rozšiřování kleštíka jiným blanokřídlým hmyzem, případně přenos z jedné včely na druhou na květu nebo i na matku vracející se ze snubního proletu nebyl dosud zaznamenán.

Kleštík včelí se může šířit i přemisťováním plástů a úlů mezi včelařskými provozy. Na plástech, v nichž je plod, přežívá samička roztoče až 40 dnů, na uhynulých včelách 11-17 dnů. Mimo včelu žije cizopasník v závislosti na vnějších podmínkách 6-7 dnů.

Vývojový cyklus

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Kleštík na těle pokročilého stádia včelího plodu

Vývojový cyklus kleštíka probíhá na včelím plodu. V určité chvíli před zavíčkováním přechází z dospělé včely do plodové buňky oplozená samička (jedna ale i více). Do trubčích buněk proniká 40 hodin před zavíčkováním, do dělničích 18 hodin. Po zavíčkování se přisaje na včelí larvu a živí se její hemolymfou. Asi po 60 hodinách od zavíčkování se roztoč larvy pustí a naklade 2–5 vajíček ke stěně buňky na takové místo, aby je včelí larva resp. předkukla netísnila. Z vajíčka se líhne šestinohá larva roztoče; dalšími stadii jsou protonymfa a deuteronymfa. Během sedmi dnů se vyvinou pohlavně zralí samečci a během devíti dnů samičky. Důležitým orientačním bodem v buňce je místo s výkaly samičky. Zdržuje se na něm nejprve samička, ale později je vyhledají vylíhnutí mladí jedinci, kteří se zde shromažďují za účelem páření. Dceřiné samičky dosahují pohlavní dospělosti za 24 hodin. Samečci po spáření ještě v buňce hynou a oplozené samičky se uchycují na včele dokončující svůj vývoj. Spolu s ní opouštějí buňku.

Na dospělé dělnici nebo trubci žijí samičky několik dnů (foretická fáze), než se opět přemístí do buněk a začnou klást vajíčka (reprodukční fáze). Všechna vývojová stadia kleštíka se živí hemolymfou včel a včelího plodu. Tím nejen ochuzují tělo včely o živiny, ale způsobují i ztráty hemolymfy skrze četná poranění na těle včely. Kleštík přenáší i původce dalších nakažlivých nemocí včel.

Samičky roztoče žijí asi dva měsíce. Přes zimu přežívají na včelách asi 200 dnů. Přibližně 10 % samiček během zimy uhyne a lze je nalézt v zimní měli na dně úlu. Z počtu takto zjištěných mrtvolek lze usuzovat na pravděpodobnou intenzitu napadení včelstva.

Klinické příznaky

Na podložce úlu lze pozorovat mrtvé i živé roztoče. Při silném napadení se na česně objevují těžce se pohybující včely s deformovanými křídly, končetinami a nepřirozeně vysunutým sosákem. Rozmnožování parazita je poměrně pomalé. Proto se klinické příznaky zjišťují nejdříve za 2-3 roky od nakažení. Pokud počet roztočů dosáhne řádu tisíců a více, včelstvo není schopné přežít zimní období.

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Kleštík včelí – pohled shora a zepředu
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Kleštík včelí – břišní a ústní partie

Protiopatření

Varroáza se tlumí plošně léčebnými metodami, které Státní veterinární správa České republiky upřesňuje interním metodickým pokynem a provádějí je pověření vyškolení pracovníci Českého svazu včelařů. Nařízená opatření jsou zákonného charakteru a jsou pro včelaře povinná. Výjimky nahražení nařízeného léčiva pouze kyselinou mravenčí se povolují pouze pro biochovy a to pouze výjimečně a za předpokladu zajištění minimálního výskytu roztoče.

Základem léčby je ošetření včelstev v zimě v období bez plodu. Účinné látky (léčivo Varidol s účinnou látkou Amitraz nebo léčivo M1-AER s účinnou látkou Tau-Fluvalinát) jsou do včelstva vpravovány fumigací nebo aerosolem. Při použití aerosolu se používá jako nosná látka pro odpařování voda nebo lékařský aceton při nižších teplotách. Účinnost zimních opatření se kontroluje vyšetřením měli ze dna úlů. V oblastech se silnou intenzitou nákazy je nutné nařídit letní léčení po vytočení medu. Toto léčení se provádí dotykovými pásky s dlouhodobým účinkem na bázi pyrethroidů. Doplňkovým způsobem léčení je použití odparných desek nebo speciálních odpařovačů s kyselinou mravenčí.

K tlumení varroázy se musí použít celý komplex opatření, jehož jednotlivé části působí celoplošně a po celý rok. Na celém území Česka je síť monitorovacích pracovišť, kde se sleduje účinnost přípravků a vznik případných rezistencí kleštíka proti některému z nich.

Jako perspektivní cíl v boji z kleštíkem se jeví šlechtění varroatolerantních včel. Dr. Mike Allsopp z Jihoafrické republiky v r. 2006 zveřejnil výsledky svých výzkumů u dvou plemen včely medonosné. U afrických plemen (včela medonosná kapská Apis mellifera capensis a včela medonosná středoafrická Apis mellifera scutellata) prokázal velmi rychlý nástup a upevnění varroatolerantních mechanismu. Zkoumaná včelstva byla ponechána svému přirozenému vývoji bez jakýchkoliv léčebných zásahů. Rozvoj schopnosti těchto včel (A. m. capensis 3-5 let, A. m. scutellata 6-7 let) udržet populaci cizopasníka v únosné míře úzce souvisí s prohloubením a genetickým upevněním čistícího pudu. Včely rozpoznají napadený zavíčkovaný plod a z včelstva ho odstraní i s cizopasnými roztoči.[8]

Mezi protiopatření patří i provádění tzv. Varroamonitoringu - sledování výskytu kleštíka v jednotlivých lokalitách, které lze využít k predikci šíření Varoázy a případnému zintenzivnění léčení.


Odkazy

Poznámky

  1. Název kleštík včelí je však dle Antonína Kůrky český název pro Varroa jacobsoni.

Reference

  1. KŮRKA, Antonín. České názvy živočichů VI. Pavoukovci (Arachnida) II. Roztoči (Acari). Praha: Národní muzeum (zoologické oddělení PM), 2005. 207 s. ISBN 80-7036-182-4.
  2. PŘIDAL, Antonín. Odborná včelařská terminologie: názvosloví živočichů a parazitismus. Včelařství. 2006, roč. 59, čís. 7, s. příloha 7-8.
  3. PŘIDAL, Antonín. Parazitismus, nemoci včel a názvosloví živočichů. Moderní včelař. Předjaří 2007, roč. 4, čís. 1, s. 27-29. ISSN 1214-5793.
  4. PŘIDAL, Antonín. Vysvětlení nomenklatoriky a taxonomie v čeledi Varroidae (kleštíkovití) [online]. Včelařské noviny, rev. 13. června 2007. Dostupné online.
  5. http://phys.org/news/2016-04-multi-year-honey-bee-parasites-disease.html - First multi-year study of honey bee parasites and disease reveals troubling trends
  6. ČERMÁK, Květoslav. Varroóza u včely východní. Moderní včelař. Prosinec 2011, roč. 8, čís. 6/zima, s. 176. ISSN 1214-5793.
  7. http://phys.org/news/2015-08-honey-bees-rapidly-evolve-disease.html - Honey bees rapidly evolve to overcome new disease
  8. PŘIDAL, Antonín, ČERMÁK Květoslav. Varroatolerance u kapského a středoafrického plemena včely medonosné. Moderní včelař. Zima 2009, roč. 6, čís. 6, s. 171-172. ISSN 1214-5793.

Literatura

VESELÝ, Vladimír. Včelařství. Praha: Brázda, 2003. ISBN 80-209-0320-8. Kapitola Varroáza včel, s. 218-221.

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Kleštík včelí: Brief Summary ( чешки )

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Kleštík zhoubný nebo kleštík včelí (Varroa destructor Anderson & Trueman, 2000), nesprávně též roztoč zhoubný, je parazitický roztoč včely východní a včely medonosné. Způsobuje onemocnění varroázu. Je totiž přenašečem virových onemocnění. Patří do rodu Varroa, společně s dalším včelím parazitem, kleštíkem Jakobsonovým (Varroa jacobsoni).

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Varroa-mide ( дански )

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Varroamide er en snylter, der angriber honningbier, og som har forvoldt store vanskeligheder for biavlen siden den spredte sig til Europa og Nordamerika i 80'erne fra Asien. Uden indgreb overfor mideangreb fra biavleren kan bifamilier ikke overleve i Danmark. Der arbejdes på at fremavle biracer, der bedre modstår angreb fra Varroamiderne. I avlen indgår især indiske bier, som har evne til selv at befri sig for miderne.

Bekæmpelsesmetoder

I Danmark er det ikke tilladt at bruge nogen form for pesticider mod miderne. Bekæmpelsen deler sig i to hovedgrupper:

Mekanisk bekæmpelse

Drohnenpuppen mit Varroamilben 71a.jpg

Fjernelse af droneyngel. Varroamiderne angriber yngelen. På grund af dronelarvernes længere vækstperiode foretrækker miderne droneyngel. Biavleren kan tilskynde bierne til at bygge droneceller i en bestemt ramme, der kan være delt i tre felter. Biavleren fjerner vokstavlen med ung droneyngel fra et af de tre felter ca. en gang om ugen. Derved fjerner han også de Varroamider, der har angrebet droneyngelen.

Kemisk bekæmpelse

Biavleren kan bekæmpe miderne med kemiske stoffer, der er naturligt forekommende i biernes miljø. Myresyre kan tilføres bifamilien i nøje kontrollerede mængder i efteråret efter honninghøst. Dampene dræber miderne både på bierne og på yngelen, men kan også skade bierne, hvis mængden er for stor eller temperaturen for høj.

Mælkesyre er effektiv og skånsom, men kan ikke anvendes, når der er yngel, da mælkesyren ikke kan trænge gennem yngelens voksforsegling.

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Varroa-mide: Brief Summary ( дански )

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Varroamide er en snylter, der angriber honningbier, og som har forvoldt store vanskeligheder for biavlen siden den spredte sig til Europa og Nordamerika i 80'erne fra Asien. Uden indgreb overfor mideangreb fra biavleren kan bifamilier ikke overleve i Danmark. Der arbejdes på at fremavle biracer, der bedre modstår angreb fra Varroamiderne. I avlen indgår især indiske bier, som har evne til selv at befri sig for miderne.

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Varroamilbe ( германски )

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Die Varroamilbe (Varroa destructor) ist eine (als adultes Weibchen) ca. 1,1 Millimeter lange und 1,6 Millimeter breite Milbe aus der Familie Varroidae, die als Parasit an Honigbienen (Apis mellifera und Apis cerana) lebt. Die Milbe entwickelt und vermehrt sich in der verdeckelten Brut im Bienenstock. Der Befall von Bienenvölkern durch die Milbenart wird als Varroose (alter Name: Varroatose) bezeichnet. Varroa destructor gilt als der bedeutsamste Bienenschädling weltweit.[1]

In Österreich ist die Tierseuche Varroose anzeigepflichtig, in der Schweiz unter Gr. 4 Zu überwachende Seuchen (Meldepflicht) eingestuft. In Deutschland ist sie in der Bienenseuchen-Verordnung zwar geregelt, aufgrund ihrer Ubiquität wird aber von einer Anzeige- oder Meldepflicht abgesehen.

Namensherkunft

Die Gattung ist nach dem römischen Gelehrten Marcus Terentius Varro (116–27 v. Chr.) benannt, der Schriften über die Landwirtschaft verfasste.[2]

Körperbau

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Varroamilbe auf einer Biene im Rasterelektronenmikroskop

Die Art ist durch einen markanten Sexualdimorphismus ausgezeichnet. Die Männchen sind erheblich kleiner und schmaler, von eher dreieckig-tropfenförmiger Gestalt, ihre Beine sind im Verhältnis zur Körpergröße deutlich länger. Sie sind schwächer sklerotisiert und hellgelb. 80 % aller Varroamilben sind weiblich, nur sie verlassen die Brutwabe und treten damit in Erscheinung, während die Männchen nach der Begattung dort verbleiben und sterben.

Wie bei den meisten Milben ist der Körper der Varroamilbe in zwei Abschnitte geteilt, die Idiosoma und Gnathosoma genannt werden.[4][5] Das Gnathosoma, an dem die Mundwerkzeuge sitzen, ist relativ klein und auf die Bauchseite zwischen die Hüften (Coxen) des ersten Beinpaars verlagert, es ist bei Betrachtung von oben nicht sichtbar. Das Idiosoma ist auf der Rückenseite von einem ungeteilten, stark sklerotisierten Schild bedeckt, der rotbraun ist. Auf der Bauchseite sitzen mehrere ebenfalls rotbraune Ventralschilde, die durch Nähte miteinander verbunden sind. Der Rückenschild des Weibchens ist queroval und deutlich breiter als lang, er ist dicht mit Borsten (Setae) bedeckt. Die Mundwerkzeuge bestehen aus zwei als Sinnesorgane dienenden Pedipalpen und zwei dreigliedrigen Cheliceren, die der Nahrungsaufnahme dienen. Das letzte Chelicerenglied ist als beweglicher, gezähnter Chelicerenfinger ausgebildet, mit ihm kann die Milbe die Körperwand ihrer Wirtsbiene aufschneiden. Der zweite, unbewegliche Chelicerenfinger fehlt (Familienmerkmal). Die Milbe besitzt vier Beinpaare, deren erstes sechsgliedrig ist, die übrigen sind siebengliedrig. Die kurzen, kräftigen Beine tragen keine Klauen, stattdessen sitzen auf der Oberfläche als Apotelen bezeichnete Strukturen, die zum Festhalten dienen. Das nach vorn gestreckte erste Beinpaar dient als Sinnesorgan. Es trägt neben verschiedenen Sinneshaaren, die als Mechano- und Chemorezeptoren dienen, ein grubenartiges Sinnesorgan, ähnlich dem Haller-Organ der Zecken.

Auf der Bauchseite des Idiosomas sitzt eine langgestreckte Einsenkung, das Peritrema. Diese ist mit den Stigmen des Tracheensystems verbunden, die auf der Bauchseite außen sitzen, und dient als Atemorgan.

Lebenszyklus und Entwicklung

Die Art ist in allen Lebensstadien parasitisch und kommt niemals frei lebend, sondern ausschließlich im Inneren von Bienenstöcken, oder auf Bienen, vor. Alle Nymphenstadien und die Männchen leben im Inneren von verdeckelten Brutzellen.[4] Nur die Weibchen kommen auch außerhalb der Zellen vor. Sie sitzen dann normalerweise an der Bauchseite des Hinterleibs von erwachsenen Bienen, meist in die Intersegmentalhaut zwischen den Bauchschilden eingebohrt, können aber auch andernorts am Körper sitzen. Gegen das Putzverhalten der Bienen sind sie durch den festen Rückenschild gut geschützt. Die Übertragung der Varroamilbe auf weitere Bienenvölker ist natürlicherweise nur bei direktem Körperkontakt durch fehlorientierte oder nahrungsraubende Arbeiterinnen in fremden Stöcken möglich. Die adulten Varroa-Weibchen saugen zur Nahrungsaufnahme an den Arbeiterinnen, für ihre Vermehrung sind sie aber an die Brutwaben des Bienenstockes gebunden.

Die Varroa-Weibchen verlassen die adulte Biene, während diese eine Brutzelle mit einer verpuppungsbereiten Altlarve (fünftes Larvenstadium) verdeckelt. Obwohl verschiedene Chemorezeptoren und aus Verhaltensexperimenten eine anlockende Wirkung von Bienenlarven, Kokonmaterial und Nahrungsvorräten auf die Milbe bekannt sind, wird der auslösende Reiz noch nicht im Detail verstanden. Brut von Drohnen wird bis zu achtmal stärker befallen als die von Arbeiterinnen, Königinnenbrut jedoch so gut wie nie. Die Milbe wandert durch den Zwischenraum zwischen der Bienenlarve und der Zellenwand zum Zellenboden, der den restlichen Nahrungsvorrat enthält, möglicherweise, um Abwehrverhalten der Bienen zu entgehen. Die Milbe beginnt an der Bienenlarve zu saugen, wenn der Nahrungsvorrat aufgebraucht ist. Sie legt etwa 50 Stunden nach der Verdeckelung ihr erstes Ei ab. Dieses bleibt unbefruchtet und entwickelt sich aufgrund der Geschlechtsbestimmung über Haplodiploidie zu einem Varroa-Männchen. Die folgenden Eier, die mit etwa 30 Stunden Abstand gelegt werden, werden befruchtet und entwickeln sich daher zu Weibchen. Eine Muttermilbe legt bei Arbeiterinnenlarven fünf, bei Drohnenlarven sechs weibliche Eier ab.

Das erste Entwicklungsstadium der Varroa ist eine sechsbeinige Larve, die sich vollständig innerhalb der Eischale entwickelt. Daraus entsteht im zweiten Entwicklungsstadium eine achtbeinige Protonymphe, die aus dem Ei schlüpft. Sie häutet sich zum dritten Entwicklungsstadium, der Deutonymphe, aus der die neue Generation adulter Milben hervorgeht. Beide Nymphenstadien werden gegen Ende ihrer Wachstumsperiode unbeweglich, dieses immobile Übergangsstadium wird als Chrysalis bezeichnet. Während die Nymphen weiß sind, besitzt das letzte Ruhestadium (Deutochrysalis) bereits die braune Farbe der adulten Milbenweibchen.

Weder Nymphen noch Männchen der Varroamilbe sind zur unabhängigen Nahrungsaufnahme fähig, denn ihre Mundwerkzeuge können das Integument der Bienenlarve nicht durchdringen; beim Männchen sind diese zu spezialisierten Begattungsorganen umgebildet und für die Nahrungsgewinnung nicht verwendbar. Sie sind darauf angewiesen, dass die Muttermilbe der Bienenlarve oder -puppe Wunden beibringt, an denen sie saugen können. Diese liegen normalerweise am fünften Segment der Wirtsbiene.

Die Milbenweibchen werden unmittelbar nach der Häutung zum Adulttier geschlechtsreif. Die Geschwister paaren sich in den Tagen, bevor die Biene schlüpft, mehrere Male untereinander. Das Männchen begattet die Weibchen im Inneren der noch verdeckelten Brutzelle, indem es eine Spermatophore direkt in die Gonophore des Weibchens überträgt, welche sie in einer Spermatheca speichert, um die weiteren Eier damit befruchten zu können. Das Männchen stirbt anschließend, ohne die Zelle je zu verlassen. Die Milbenweibchen verlassen die Zelle zusammen mit der schlüpfenden Biene nach etwa 12 Tagen, während das Männchen zurückbleibt.[6] Das Muttertier kann die Zelle ebenfalls für einen zweiten, seltener sogar einen dritten solchen Fortpflanzungszyklus, wieder verlassen. Trotz der relativ moderaten Fortpflanzungsrate und einem nicht unerheblichen Anteil von Milben, die sich aus unbekannten Gründen gar nicht fortpflanzen, kollabieren Bienenvölker unter gemäßigten Klimabedingungen etwa drei bis vier Jahre nach der Infektion mit Varroa destructor. In wärmerem, subtropischem oder tropischem Klima wächst die Milbenpopulation dagegen langsamer.

Verbreitung und Wirtsarten

Varroa destructor (lat., dt. zerstörerische Milbe) wurde im Jahr 2000 durch Anderson und Trueman beschrieben.[7] Zuvor wurden die Milben der bereits länger bekannten Art Varroa jacobsoni Oudemans, 1904 zugerechnet, die nur in Südostasien vorkommt. In älterer Literatur ist die Art deshalb unter diesem Namen aufgeführt.

Der ursprüngliche Wirt von Varroa destructor ist die Östliche Honigbiene (Apis cerana). Bei dieser Art werden ausschließlich die Larven von Drohnen befallen, eine Entwicklung an Arbeiterinnen erfolgt nicht.[4] Die Milbenart war auf das tropische Ostasien beschränkt, wo drei weitere Arten der Gattung, westlich bis Nepal, leben.[4][8] Auf die westliche Honigbiene, Apis mellifera, ging die Art durch in Kultur gehaltene Bienen über, die in die Heimat von Apis cerana eingeführt worden waren. Zusätzliche Wirte von Varroa destructor sind nicht bekannt.

Durch molekulargenetische Untersuchungen von Varroamilben wurden unterschiedliche Stammlinien der Art und ihrer nahe verwandten Schwesterart Varroa jacobsoni identifiziert, die verschiedene Teile ihres natürlichen Verbreitungsgebiets besiedeln. Nur zwei dieser Typen sind auf Apis mellifera übergegangen, von denen nur einer (der sog. koreanische Haplotyp) weltweit verschleppt worden ist. Die weltweit verbreiteten Milben sind, im Gegensatz zu denjenigen ihrer Ursprungsheimat, genetisch so uniform, dass sie als Klone betrachtet werden können.[9]

Heute ist Varroa destructor mit Ausnahme von Australien und der Antarktis[10] weltweit verbreitet. Die Art ist vor allem durch den Versand von Bienenvölkern und Königinnen verschleppt worden. Der erste Nachweis von der russischen Pazifikküste stammt von 1952, aus Japan von 1958. In Europa wurde sie zuerst 1967 in Bulgarien gefunden. Der erste deutsche Nachweis stammt aus dem Jahr 1977.[11]

In vielen Teilen Europas sind die Imker wegen der großflächigen Monokulturen der industrialisierten Landwirtschaft zum Wandern mit ihren Völkern gezwungen, was die schnelle Verbreitung des Parasiten begünstigt.

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Varroamilben auf einer Bienenpuppe
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Varroamilbe auf einer fliegenden Honigbiene

Erkrankung und Bienensterben

Milbenbefall schwächt die Bienen auf verschiedenen Wegen. Durch das Aussaugen der Hämolymphe verlieren befallene Larven direkt an Gewicht, die ausgeschlüpften Bienen bleiben um etwa ein Zehntel kleiner als gesunde Tiere. Nach einer neueren Studie ist der Hauptanteil der Nahrung das Fettgewebe, wenn sie auf erwachsenen Bienen parasitieren.[12] Die befallenen Tiere besitzen eine deutlich verkürzte Lebensspanne, haben schlechtere Lernleistungen und kehren häufiger in den Stock nicht zurück.

Zusätzlich werden durch den Milbenbefall schädigende Viren (z. B. Flügeldeformationsvirus) übertragen.[4][10] Von den achtzehn von Honigbienen bekannten pathogenen Viren werden fünf nachweislich durch Varroamilben als Vektor übertragen. Außerdem kann durch die Schädigung des Immunsystems der Biene vorher unterdrückter Pathogenbefall nun virulent werden. Meist wird angenommen, dass für den schließlich eintretenden Zusammenbruch des Bienenstaats weniger die Schädigung durch die Milbe selbst, sondern eher die Ausbreitung und Förderung der Pathogene verantwortlich ist. Auch der Befall mit dem Einzeller Nosema apis oder anderen Nosema-Arten trägt möglicherweise dazu bei.

Die Varroamilbe gilt als eine Hauptursache des in Deutschland seit einigen Jahren immer wieder im Herbst oder dem Winterhalbjahr auftretenden seuchenartigen Bienensterbens,[13][14][15] vor allem bei einer gleichzeitigen Belastung durch Neonicotinoide.[16]

Resistenzen

Varroa destructor schädigt ihren Ursprungswirt, die Östliche Honigbiene (Apis cerana), nur milde und unwesentlich (Varroatoleranz). Bei dieser Art werden ausschließlich Drohnenlarven befallen. Die Bienen sind bei der Entfernung des Parasiten erfolgreicher, außerdem verbleiben stark befallene Drohnen in der Zelle, ohne auszuschlüpfen, wodurch die Vermehrung der Milbe begrenzt bleibt. Bei der Westlichen Honigbiene (Apis mellifera) fehlen diese wohl durch Koevolution entstandenen Abwehrmechanismen weitgehend.

Jedoch wurden auch unter den Völkern der Westlichen Honigbiene solche gefunden, die natürlicherweise mit dem Parasitenbefall besser zurechtkommen als andere. Gut dokumentiert ist, dass Afrikanisierte Honigbienen resistenter sind als die Stammform.[17] Ähnlichens gilt für die Sizilianische Honigbiene (Apis mellifera siciliana)[18][19][20] In Europa existieren Populationen in Gotland (Schweden) und Avignon (Frankreich), die Milbenbefall, anders als üblich, viele Jahre tolerieren können.[21] Es gibt Zuchtprogramme für so genannte VSH-Bienen (englisch Varroa Sensitive Hygiene bees)[22] In den USA wurden zwei Stämme entwickelt, die beschädigte Puppen unter Deckeln erkennen und entfernen können, bevor sich der Befall weiter ausbreitet.[23][24] Der Stamm „IN“/Indiana wird an der Purdue University entwickelt, um Linien zu entwickeln, die anhaftende Varroamilben ausputzen und durch Bisse abtöten.[25] Unterdrückte Milbenvermehrung ist beispielsweise durch „Recapping“ der Brutzellen möglich.[26][27] Stärkere Resistenzen als die meisten westeuropäischen Zuchtlinien besitzen auch russische Stämme (Primorski-Bienen).

Die Züchtung resistenter bzw. toleranter Linien gilt als einzige langfristig erfolgversprechende Bekämpfungsmethode der Milbe und wird deshalb an verschiedenen Stellen durch Einkreuzen resistenterer Linien in die üblicherweise verwendeten Stämme versucht.

Bekämpfung

In jedem Fall ist es wichtig, durch laufende Kontrolle die Befallsstärke abzuschätzen. Dies geschieht durch Gemülldiagnose, indem die pro Tag auf den Boden der Bienenbeute abgefallenen toten Milben gezählt werden. Fallen im Juli 5 bis 10 Milben pro Tag, kann der Befall bereits kritisch sein. Genauer kann der Befall eines Bienenvolks mit dem Edlinger Varroaindikator[28] errechnet werden. Der Indikator errechnet aus dem Datum und der Anzahl toter Milben mehrerer Tage eine ungefähre Befallstärke und wie viele Milben bei einer Behandlung bekämpft werden können. Unterschieden wird darüber hinaus zwischen einem Bienenvolk mit und ohne Brut. Entwickelt wurde der Indikator über mehrere Jahre vom Imker Kurt Edlinger. Eine weitere Diagnosemöglichkeit zur Befallskontrolle ist die Puderzuckermethode. Mithilfe dieser Methode kann die Befallstärke schnell und sehr genau bestimmt werden. Würde Puderzucker zur Therapie benutzt werden, wäre das nach dem Arzneimittelgesetz zu beurteilen.[29]

Chemische Bekämpfungsmethoden

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Nassenheider Verdunster zur Behandlung der Varroose

Die Bekämpfung der Milben mit Akariziden, vor allem Phosphorsäureester und Pyrethroiden, gehörte zu den ersten Bekämpfungsstrategien. Inzwischen sind zahlreiche Populationen von Varroa destructor gegen eine Vielzahl dieser Präparate resistent.[4] Weitere Nachteile der Akarizidbehandlung sind Rückstände in Wachs und Honig und Bienenschädigungen durch gemeinsame Exposition gegenüber anderen in der Umwelt verbreiteten Chemikalien.

Teilweise gute Erfolge wurden für den Einsatz organischer Säuren wie Ameisensäure (flüssig; mischbar mit Wasser), Milchsäure (als Racemat flüssig; mischbar mit Wasser) und Oxalsäure (fest; bis 10 % löslich in Wasser) berichtet. Milchsäure verwendet man vorwiegend im Sommer zur Erstbehandlung von Jungvölkern (Ablegern), solange diese noch brutfrei sind; die Winterbehandlung mit Milchsäure ist möglich und sehr erfolgreich.[30] Ameisensäure wird auf verschiedene Weisen in die Völker eingebracht.

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Neue Arzneimittel mit Ameisensäure ermöglichen auch erstmals eine Behandlung während der Tracht, bei der anschließend der Honig noch geerntet werden darf.

Die Bieneninstitute warnen allerdings derzeit vor diesem Einsatz, weil noch nicht ausreichende Erfahrungen mit der verbliebenen Menge von Säureresten im Honig vorliegen. MAQS (MiteAwayQuickStrips, Gel+Ameisensäure) wirkt gerade am ersten Tag exponentiell, was im Jahr 2014 zu Verlusten auch von Königinnen geführt hat[31]. Oxalsäure bringt man in der Regel im November oder Dezember in flüssiger Form in die Wabengassen der unteren Brutzarge ein. Diese drei Säuren oder ihre Salze kommen natürlicherweise im Stoffwechsel von Pflanzen und Tieren vor und sogar in manchen Honigsorten. Eine andere Methode beruht auf dem Einsatz von ätherischen Ölen mit Thymol.

Diese Mittel können allerdings nur in Zeiträumen ohne Brut eingesetzt werden, der Erfolg ist auch vom Dampfdruck der Substanz im Stock abhängig. Dafür kommt es weder zu Resistenzbildungen noch zu Rückständen im Honig.

Ein ganz neu erforschter Ansatz ist die Fütterung der Bienen mit Lithiumchlorid; dies verspricht eine Abtötung der aufsitzenden Milben ohne Schädigung der Bienen. Die Behandlung muss jedoch erst weiter erprobt werden, um Auswirkungen auf die Brut und Rückstände im Honig auszuschließen und die Dosierung zu bestimmen.[32]

Gegen die Varroose zugelassene Mittel in Österreich

In Österreich sind seit dem 11. Juli 2014 fünf Tierarzneimittel zugelassen:[33]

  1. AMO Varroxal – (85 % Ameisensäure-Lösung) zum Verdunsten im Bienenstock für Honigbienen
  2. Apiguard – (Thymol) Gel für Bienen (rezept- und apothekenpflichtig)
  3. APILIFE VAR – (Thymol u. a.) imprägnierte Streifen für den Bienenstock für Honigbienen
  4. Dany’s BienenWohl – (3,5 % (m/m) Oxalsäuredihydrat-Lösung) zum Träufeln für Honigbienen
  5. THYMOVAR – (Thymol) 15 g Streifen für den Bienenstock, für Honigbienen
  6. VarroaMed – (Ameisensäure 5 mg/ml, Oxalsäure-Dihydrat 44 mg/ml) zum Träufeln für Honigbienen

Gegen die Varroose zugelassene Mittel in Deutschland

In Deutschland sind elf Mittel zugelassen:[34]

  1. Perizin (Wirkstoff: Coumaphos)
  2. Bayvarol (Pyretroid), (Wirkstoff: Flumethrin)
  3. Apiguard (Thymol)
  4. Thymovar (Thymol)
  5. ApiLiveVar (Thymol u. a.)
  6. Milchsäure 15% ad us.vet.
  7. Ameisensäure 60% ad us.vet.
  8. MAQS = MiteAwayQuickStrips (Gel+Ameisensäure)
  9. Oxalsäurehydratlösung ad us.vet.
  10. Oxuvar ad us.vet. (Oxalsäure)
  11. Apitraz und Apivar (Amitraz) (verschreibungspflichtig)

Die Präparate auf Basis von Ameisensäure, Milchsäure und Thymol sind frei verkäuflich und benötigen keinen Eintrag ins Bestandsbuch. Alle anderen sind rezept- und apothekenpflichtig.

In einem Land der Europäischen Union (EU) muss bei Therapienotstand (Definition im AMG) vorrangig ein Mittel eingesetzt werden, das in einem EU-Land zugelassen ist. 85%ige Ameisensäure darf deshalb seit 11. Juli 2014 in Deutschland nur noch als "AMO Varroxal 85% Ameisensäurelösung" eingesetzt werden und nur noch, wenn sie bei Therapienotstand vom Tierarzt verschrieben wird und weil sie seit diesem Stichtag im EU-Land Österreich (dort frei verkäuflich) als "Varroxal" zugelassen ist.

Gegen die Varroose zugelassene Mittel in Frankreich

In Frankreich sind 2016 sieben Mittel zugelassen (disposants d'une A.M.M.):

  1. Apivar (Wirkstoff: Amitraz)
  2. ApiLiveVar (Thymol, Eucalyptol, Menthol, Camphre)
  3. Apiguard (Thymol)
  4. Thymovar (Thymol)
  5. Apistan (Tau-Fluvalinat)
  6. MAQS = MiteAwayQuickStrips (Gel+Ameisensäure)
  7. Apitraz (Amitraz)

Biologische Bekämpfungsmethoden

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Drohnenrahmen (Zanderformat), 21 Tage nach dem Einsetzen.
Auf beiden Seiten befinden sich insgesamt etwa 1300 verdeckelte Drohnenzellen. Dazwischen befinden sich noch einige wenige unverdeckelte Zellen.

Die Drohnenbrut wird etwa 5- bis 10-mal häufiger als die Arbeiterbienenbrut von der Varroa-Milbe befallen, die Milben können sich durch die längere Brutzeit außerdem zahlreicher vermehren. Dies nutzen die Imker bei der Varroabekämpfung durch den Einsatz von sogenannten Drohnenrahmen. Während der Wachstumsphase des Bienenvolkes (Frühjahr bis Frühsommer) werden in die unterste Brutzarge einer Magazinbeute leere Rähmchen eingehängt, die von den Bienen vorzugsweise mit größeren Zellen ausgebaut werden, in denen sich nach der Eiablage durch die Königin Drohnenlarven entwickeln. Die bereits verdeckelte Drohnenbrut wird dann kurz vor dem Schlüpfen mitsamt den darin befindlichen Milben entfernt oder hypothermisch behandelt (eingefroren). Durch die Entnahme bzw. die gezielte hypothermische Behandlung von Drohnenbrut kann der Befall deutlich reduziert, aber nicht verhindert werden.[35] Ein negativer Nebeneffekt der systematischen Drohnenbrutentnahme besteht in einer Begünstigung, also einer Auslese, jener Milben, welche die Arbeiterinnenbrut aufsuchen.[36]

Die hyperthermische Behandlung nach Engels und Rosenkranz[37] ist eine gift- und säurefreie Methode zur Bekämpfung der Varroamilbe. Hier wird die Erkenntnis genutzt, dass Varroamilben, im Gegensatz zu Bienenpuppen, nicht so resistent gegen erhöhte Temperaturen sind. Bei der Behandlung wird die verdeckelte Bienenbrut gezielt überwärmt. Die exakte Einhaltung der Temperatur, eine langsame Erwärmung und Gewährleistung der relativen Luftfeuchtigkeit sind für den Erfolg der Behandlung entscheidend.[38]

Eine weitere gift- und säurefreie Methode ist das recht neue Fangwabenverfahren nach Woköck/Bojaschewsky.[39] Diese Methode ist arbeitsaufwändiger, jedoch ist eine Resistenzbildung der Milben ausgeschlossen, während durch natürliche Selektion die Fortpflanzungsfähigkeit der Milben eingeschränkt wird.

Zurzeit werden Möglichkeiten erforscht, den Bücherskorpion (Chelifer cancroides) und andere Pseudoskorpion-Arten zur Bekämpfung der Varroamilbe in Bienenbeuten einzusetzen.[40] Dabei wurde durch Beobachtungen bestätigt, dass Pseudoskorpione die Milben als Beute angreifen. Eine neuseeländische Arbeitsgruppe hat eine Methode entwickelt, mittels PCR einen Verzehr der Milbe durch den Skorpion auch dann nachzuweisen, wenn der Vorgang nicht direkt beobachtet wurde.[41] Die bisherigen umstrittenen[42][43][44] Experimente zur Ansiedlung von Chelifer und anderen Pseudoskorpionen in kommerziellen, behandelten Beuten zur Kontrolle von Varroa erbrachten allerdings bisher (Stand: 2016) negative Resultate.[45]

Beim Mullerbrett wird die Beute zweigeteilt. Auf die bestehende Beute wird erneut eine weitere Beute aufgesetzt. Dazwischen das Mullerbrett. Dieses besteht aus einem Rahmen, auf dem oben ein bienendichtes, und unten ein milbendichtes Gitter angebracht ist. Dann werden die bebrüteten Rämchen von der unteren Beute, ohne der Königin, auf die obere Beute gebracht. Flugbienen kehren jetzt nach unten zurück und pflegen ein neues Brutnest, die Ammenbienen bleiben oben bei der Brut. Varroamilben befinden sich nun großteils oben. Wenn die Bienen nun schlüpfen, suchen die Milben nach Brut kurz vor Verdeckelung (5 Tage), versuchen also in die untere Beute zu gelangen, bleiben jedoch beim Mullerbrett hängen und verhungern.[46]

Siehe auch

Literatur

Einzelnachweise

  1. Diana Sammataro, Uri Gerson, Glen Needham: Parasitic mites of honey bees: Life history, implications, and impact. In: Annual Review of Entomology. Bd. 45, 2000, S. 519–548, doi:10.1146/annurev.ento.45.1.519.
  2. A. C. Oudemans: Acarologische Aanteekeningen XIII. In: Entomologische Berichten., Bd. 1, 1904, S. 169–174.
  3. Friedrich Ruttner, Heinz Hänel: Active defense against Varroa mites in a Carniolan strain of honeybee (Apis mellifera carnica Pollmann). In: Apidologie. Bd. 23, Nr. 2, 1992, S. 173–187, Digitalisat (PDF; 2,37 MB).
  4. a b c d e f Peter Rosenkranz, Pia Aumeier, Bettina Ziegelmann: Biology and control of Varroa destructor. In: Journal of Invertebrate Pathology. Bd. 103, Supplement, 2010, S. S96–S119, doi:10.1016/j.jip.2009.07.016.
  5. M. D. Definado, E. W. Baker: Varroidae, a new family of mites on honey bees (Mesostigmata; Acarina). In: Journal of the Washington Academy of Sciences. Bd. 64, Nr. 1, 1974, , S. 4–10, Digitalisat.
  6. G. Donzè, M. Herrmann, B. Bachofen, P.R.M. Guerin (1996): Effect of mating frequency and brood cell infestation rate on the reproductive success of the honeybee parasite Varroa jacobsoni. In: Ecological Entomology 21: 17–26. doi:10.1111/j.1365-2311.1996.tb00261.x
  7. Denis L. Anderson, John W. H. Trueman: Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species. In: Experimental & Applied Acarology. Bd. 24, Nr. 3, 2000, S. 165–189, doi:10.1023/A:1006456720416.
  8. Lilia I. de Guzman, Thomas E. Rinderer: Identification and comparison of Varroa species infesting honey bees. In: Apidologie. Bd. 30, Nr. 2/3, 1999, S. 85–95, doi:10.1051/apido:19990201.
  9. Michel Solignac, Jean-Marie Cornuet, Dominique Vautrin, Yves Le Conte, Denis Anderson, Jay Evans, Sandrine Cros-Arteil, Maria Navajas: The invasive Korea and Japan types of Varroa destructor, ectoparasitic mites of the Western honeybee (Apis mellifera), are two partly isolated clones. In: Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. Bd. 272, Nr. 1561, 2005, S. 411–419, doi:10.1098/rspb.2004.2853.
  10. a b Elke Genersch: Honey bee pathology: current threats to honey bees and beekeeping. In: Applied Microbiology and Biotechnology. Bd. 87, Nr. 1, 2010, S. 87–97, doi:10.1007/s00253-010-2573-8.
  11. Friedrich Ruttner, Wolfgang Ritter: Das Eindringen von Varroa jacobsoni nach Europa im Rückblick. In: Allgemeine Deutsche Imkerzeitung. Bd. 14, Nr. 5, 1980, S. 130–134.
  12. Ramsey SD, Ochoa R, Bauchan G, Gulbronson C, Mowery JD, Cohen A, Lim D, Joklik J, Cicero JM, Ellis JD, Hawthorne D, vanEngelsdorp D: Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph. In: Proceedings of the National Academy of Sciences USA Bd. 116, Nr. 5, 2019, S. 1792–1801, doi: 10.1073/pnas.1818371116.
  13. Elke Genersch, Werner von der Ohe, Hannes Kaatz, Annette Schroeder, Christoph Otten, Ralph Büchler, Stefan Berg, Wolfgang Ritter, Werner Mühlen, Sebastian Gisder, Marina Meixner, Gerhard Liebig, Peter Rosenkranz: The German bee monitoring project: a long term study to understand periodically high winter losses of honey bee colonies. In: Apidologie. Bd. 41, Nr. 3, 2010, S. 332–352, doi:10.1051/apido/2010014.
  14. Hauptursache für das große Bienensterben gefunden. In: Welt Online, vom 24. März 2011.
  15. Richard Friebe: Volk der Bienen, quo vadis? In: faz.net, vom 6. April 2011.
  16. Lars Straub, Geoffrey R. Williams, Beatriz Vidondo, Kitiphong Khongphinitbunjong, Gina Retschnig, Annette Schneeberger, Panuwan Chantawannakul, Vincent Dietemann, Peter Neumann: Neonicotinoids and ectoparasitic mites synergistically impact honeybees. In: Scientific Reports. 9, 2019, doi:10.1038/s41598-019-44207-1.
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  25. author=Greg Hunt, J. Krispn Given, Jennifer M. Tsuruda, Gladys K. Andino: Breeding Mite-Biting Bees to Control Varroa. 23. März 2016. Abgerufen am 23. Februar 2018.
    Greg Hunt, J. Krispn Given, Jennifer M. Tsuruda, Gladys K. Andino: Breeding Mite-Biting Bees to Control Varroa. Bee Culture. April 2016. (PDF)
  26. Nadja Podbregar: Honigbienen: Mit gezielter Zucht gegen die Varroamilbe, auf: natur.de vom 10. Juli 2020, Quelle: Julius-Maximilians-Universität Würzburg
  27. Toleranzzucht in der Bienenstation, Julius-Maximilians-Universität Würzburg, Lehrstuhl für Verhaltensphysiologie und Soziobiologie vom 7. Juli 2020
  28. Edlinger Varroaindikator
  29. ADIZ 08/2011 S. 7–9.
  30. ADIZ 1987 und Imkerfreund 1991 S. 19–22.
  31. Wirkungsweisen der Ameisensäure
  32. Pressemitteilung der Universität Hohenheim vom 12. Januar 2018
  33. Österreichische Agentur für Gesundheit und Ernährungssicherheit GmbH: Varroabekämpfung (Memento des Originals vom 25. März 2016 im Internet Archive)  src= Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.ages.at, 2. Aufl. 2015, abgerufen am 24. März 2016
  34. Bayerische Landesanstalt für Weinbau und Gartenbau: Zugelassene Varroa-Bekämpfungsmittel, (Stand 30. Juni 2014)
  35. Varroa unter Kontrolle. (PDF) Arbeitsgemeinschaft der Institute für Bienenforschung e.V., 2007, S. 8, abgerufen am 28. März 2015 (Deutscher Landwirtschaftsverlag GmbH, Berlin; Biotechnische Bekämpfungsverfahren).
  36. J. Weiß, Vortrag im Pamina-Gymnasium Herxheim am 7. Oktober 2014
  37. Wolfgang Wimmer: Praxishandbuch der thermischen Varroa-Bekämpfung. 2. Auflage. Ecodesign Company, Wien 2015, ISBN 978-3-200-03995-7.
  38. Olga Cadosch: Wie wirkt die Hyperthermie? In: Schweizerische Bienen-Zeitung. Bd. 137, Nr. 5, 2014, S. 16–17, Digitalisat (PDF; 1,23 MB) (Memento des Originals vom 6. April 2015 im Internet Archive)  src= Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.varroahyperthermie.ch.
  39. Hans-Diethelm Woköck, Manfred Bojaschewsky: Das Fangwabenverfahren zur Behandlung der Varoatose. online (Memento vom 22. Februar 2013 im Webarchiv archive.today).
  40. Das Beenature-Project. Torben Schiffer, Otto-Hahn-Schule, Hamburg
  41. Ron F. van Toor, Shirley E. Thompson, Donna M. Gibson, Grant R. Smith (2015): Ingestion of Varroa destructor by pseudoscorpions in honey bee hives confirmed by PCR analysis. Journal of Apicultural Research 54 (5), online before print. doi:10.1080/00218839.2016.1184845
  42. Torben Schiffer: Beekeeping-rEvolution. Ein Projekt zur Wiederanerkennung der Honigbiene als Wildtier. In: beekeeping-revolution.com. BeeNature-Save the Bees, Verein zur Rettung der Honigbienen e. V., abgerufen am 14. Juli 2021.
  43. Torben Schiffer: Evolution der Bienenhaltung: Artenschutz für Honigbienen. Bienen besser verstehen. Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart 2020, ISBN 978-3-8186-0924-5.
  44. Torben Schiffer: Der wahre Preis des Honigs – Artenschutz für Honigbienen! In: Imkern heute. Das Fachmagazin für Bienenzucht-Wirtschaft und Forschung. Ausgabe 9, Herbst/Winter 2020. WV Buch-Kunst-Musik Verlag, 4. Dezember 2020, , S. 36–54 (beenature-project.com [PDF; 992 kB; abgerufen am 14. Juli 2021]).
  45. Ron van Toor, James Pinfold: Can chelifers be made to control varroa mites in beehives? Poster Presentation, 2016 New Zealand Apiculture Conference, Rotorua. PDF
  46. Christian Schmid, Meine Erfahrung mit dem Muller – Brett [1]
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Varroamilbe: Brief Summary ( германски )

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Die Varroamilbe (Varroa destructor) ist eine (als adultes Weibchen) ca. 1,1 Millimeter lange und 1,6 Millimeter breite Milbe aus der Familie Varroidae, die als Parasit an Honigbienen (Apis mellifera und Apis cerana) lebt. Die Milbe entwickelt und vermehrt sich in der verdeckelten Brut im Bienenstock. Der Befall von Bienenvölkern durch die Milbenart wird als Varroose (alter Name: Varroatose) bezeichnet. Varroa destructor gilt als der bedeutsamste Bienenschädling weltweit.

In Österreich ist die Tierseuche Varroose anzeigepflichtig, in der Schweiz unter Gr. 4 Zu überwachende Seuchen (Meldepflicht) eingestuft. In Deutschland ist sie in der Bienenseuchen-Verordnung zwar geregelt, aufgrund ihrer Ubiquität wird aber von einer Anzeige- oder Meldepflicht abgesehen.

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Varroamilbe ( алемански )

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D Varroamilbe (latynisch: Varroa destructor) isch es Spinnedier vo dr Familie vo de Varroidae, wo als Parasit bi de Imbi läpt.

Si isch öppe 1,1 Millimeter lang und 1,6 Millimeter breit. Ires ganze Läbe lang isch si i de Imbistöck oder uf de Hunggimbi sälber. D Imker luege se näbe de starche Insektegift als die zwöiti Ursach für d Schääde vo irne Völker a.

Dr Name vo däm Dier chunt vom Römer Marcus Terentius Varro, won es Buech über d Landwirtschaft gschribe het.

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e Varroamilbe auf eme Imbi

D Wiibli vo dr Varroamilbe läbe uf de Imbi und legge iri Eier i d Chammere, wo d Imbi drinn d Bruet lönd lo gross wärde. Us de Eier entwicklet sech zerscht e Larfe und denn e Nymphe, wo zletscht e usgwachseni Milbe wird.

Bim Wachse frässe d Dier dr Saft vo dr Imbibruet. Das macht, ass d Imbi weniger gsund sind und nid gnueg zum Überläbe vom Volch byträge. D Milbe verbreite au anderi Chrankete. Und drum goots, wenn ime Imbistock d Varroamilbe achunt, nume öppe drüü oder vier Joor bis s ganze Imbivolch z Grund goot. S Uufträtte vo de Milbe heisst bi de Fachlüüt d Varroose, si gilt als schlimmi Diersüüch. Wil me so vil Völcher verlüürt, redt me vom Imbistärbe.

D Varroamilbe het früener nume z Oschtasie gläpt, und zwar als Parasit vom Öschtleche Hunggimbi. Uf Europa isch si als Neozoe erscht im 20. Joorhundert mit em Handle vo Imbivölcher und Königinne cho. Es erschts Mol het me se schynts anne 1967 z Bulgarie gfunde.

Literatur

  • Gerhard Liebig: Einfach imkern. Leitfaden zum Bienen halten. 2. Auflage. Tübinger Chronik, Aichtal 2002, ISBN 3-9803568-6-8.

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Varroamilbe: Brief Summary ( алемански )

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D Varroamilbe (latynisch: Varroa destructor) isch es Spinnedier vo dr Familie vo de Varroidae, wo als Parasit bi de Imbi läpt.

Si isch öppe 1,1 Millimeter lang und 1,6 Millimeter breit. Ires ganze Läbe lang isch si i de Imbistöck oder uf de Hunggimbi sälber. D Imker luege se näbe de starche Insektegift als die zwöiti Ursach für d Schääde vo irne Völker a.

Dr Name vo däm Dier chunt vom Römer Marcus Terentius Varro, won es Buech über d Landwirtschaft gschribe het.

 src= e Varroamilbe auf eme Imbi

D Wiibli vo dr Varroamilbe läbe uf de Imbi und legge iri Eier i d Chammere, wo d Imbi drinn d Bruet lönd lo gross wärde. Us de Eier entwicklet sech zerscht e Larfe und denn e Nymphe, wo zletscht e usgwachseni Milbe wird.

Bim Wachse frässe d Dier dr Saft vo dr Imbibruet. Das macht, ass d Imbi weniger gsund sind und nid gnueg zum Überläbe vom Volch byträge. D Milbe verbreite au anderi Chrankete. Und drum goots, wenn ime Imbistock d Varroamilbe achunt, nume öppe drüü oder vier Joor bis s ganze Imbivolch z Grund goot. S Uufträtte vo de Milbe heisst bi de Fachlüüt d Varroose, si gilt als schlimmi Diersüüch. Wil me so vil Völcher verlüürt, redt me vom Imbistärbe.

D Varroamilbe het früener nume z Oschtasie gläpt, und zwar als Parasit vom Öschtleche Hunggimbi. Uf Europa isch si als Neozoe erscht im 20. Joorhundert mit em Handle vo Imbivölcher und Königinne cho. Es erschts Mol het me se schynts anne 1967 z Bulgarie gfunde.

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Varroa destructor ( англиски )

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Varroa destructor, the Varroa mite is an external parasitic mite that attacks and feeds on the honey bees Apis mellifera and Apis cerana. The disease caused by the mites is called varroosis.

The Varroa mite can reproduce only in a honey bee colony. It attaches to the body of the bee and weakens the bee by sucking fat bodies.[2] The species is a vector for at least five debilitating bee viruses,[2] including RNA viruses such as the deformed wing virus (DWV). A significant mite infestation leads to the death of a honey bee colony, usually in the late autumn through early spring. The Varroa mite is the parasite with possibly the most pronounced economic impact on the beekeeping industry. Varroa is considered to be one of multiple stress factors[3] contributing to the higher levels of bee losses around the world.

Physical description

The adult female mite is reddish-brown in color, while the male is white. Varroa mites are flat, having a button shape. They are 1–1.8 mm long and 1.5–2 mm wide, and have eight legs.[4] Varroa mites lack eyes.[5] One mite weighs approximately 0.453 mg.

Reproduction, feeding, infection, and hive mortality

Mites reproduce on a 10-day cycle. The female mite enters a honey bee brood cell. As soon as the cell is capped, the Varroa mite lays eggs on the larva. The young mites, typically several females and one male, hatch in about the same time as the young bee develops and leave the cell with the host. When the young bee emerges from the cell after pupation, the Varroa mites also leave and spread to other bees and larvae. The mite preferentially infest drone cells, allowing the mite to reproduce one more time with the extra three days it takes a drone to emerge compared to a worker bee. This can cause genetic defects such as useless wings or viruses and fungi in the bee.

Adult mites suck on the fat body of both adult bees and bee larvae for sustenance. As the fat body is crucial for many bodily functions such as hormone and energy regulation, immunity, and pesticide detoxification, the bee is left in a severely weakened state. Adult mites live and feed under the abdominal plates of adult bees primarily on the underside of the metasoma region on the left side of the bee. Adult mites are more often identified as present in the hive when on top of the adult bee on the mesosoma region, but research suggests that mites in this location are not feeding, but rather attempting to transfer to another bee.[2]

Preferred feeding location of V. destructor mites on adult host bees, figure 1 from Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph

Open wounds left by the feeding become sites for disease and virus infections. The mites are vectors for at least five and possibly up to 18 debilitating bee viruses,[2] including RNA viruses such as the deformed wing virus. With the exception of some resistance in the Russian strains and bees that have Varroa-sensitive hygiene (about 10% of colonies naturally have it), European Apis mellifera bees are almost completely defenseless against these parasites. (Russian honey bees are one-third to one-half less susceptible to mite reproduction).[6]

The model for the population dynamics is exponential growth when bee broods are available, and exponential decline when no brood is available. In 12 weeks, the number of mites in a western honey bee hive can multiply by (roughly) 12. Mites often invade colonies in the summer, leading to high mite populations in autumn.[7] High mite populations in the autumn can cause a crisis when drone rearing ceases and the mites switch to worker larvae, causing a quick population crash and often hive death.[8]

Low-temperature scanning electron micrograph of V. destructor on a honey bee host

Once infected with a V. destructor mite, the honey bee may be damaged two ways. Firstly, the mite's consumption of the fat body weakens both the adult bee and the larva; in particular, it significantly decreases the weight of both the hatching and adult bee. Additionally, infected adult worker bees have a shorter lifespan than ordinary worker bees, and they furthermore tend to be absent from the colony far more than ordinary bees, which could be due to their reduced ability to navigate or regulate their energy for flight. Secondly, the mites are vectors of various viruses, in particular the deformed wing virus.[9]

After the initial developmental stages, when the young bee matures, it leaves the brood cell and takes the mite with it. V. destructor then leaves the young bee for an older one, preferably for a nurse bee, because nurse bees spend more time near the brood, giving the mite more ample opportunity to reproduce. In fact, because the nurse bee spends more time around the drone brood rather than the worker brood, many more drones are infected with the mites.[9]

Varroa mites have been found on tricial larvae of some wasp species, such as Vespula vulgaris, and flower-feeding insects such as the bumblebee, Bombus pensylvanicus, the scarab beetle, Phanaeus vindex, and the flower-fly, Palpada vinetorum.[10] It parasitizes the young larvae and feeds on the internal organs of the hosts. Although the Varroa mite cannot reproduce on these insects, its presence on them may be a means by which it spreads short distances (phoresy).

Varroa mites on pupa
Varroa mites on pupae
Varroa destructor on bee larva

Introduction around the world

Varroa mites originally only occurred in Asia, on the Asian honeybee, Apis cerana, but this species has been introduced to many other countries on several continents, resulting in disastrous infestations of European honeybees.[11]

In early 2010, an isolated subspecies of honey bee was discovered in the oasis of Kufra (southeastern Libya), this newly discovered bee is the only known subspecies that is Varroa free.[21] The Hawaiian islands of Maui and Kauai are free of the mite.[22]

Identification

Until recently, V. destructor was thought to be a closely related mite species called Varroa jacobsoni. Both species parasitize the Asian honey bee, A. cerana. However, the species originally described as V. jacobsoni by Anthonie Cornelis Oudemans in 1904 is not the same species that also attacks A. mellifera. The jump to A. mellifera probably first took place in the Philippines in the early 1960s, where imported A. mellifera came into close contact with infected A. cerana. Until 2000, scientists had not identified V. destructor as a separate species. This late identification in 2000 by Anderson and Trueman corrected some previous confusion and mislabeling in the scientific literature.[1]

Varroosis

The infestation and subsequent parasitic disease caused by Varroa mites is called varroosis. Sometimes, the incorrect names varroatosis or varroasis are used. A parasitic disease name must be formed from the taxonomic name of the parasite and the suffix -osis[23] as provided in the Standardised Nomenclature by the World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology.[24] For example, the World Organisation for Animal Health (OIE) uses the name varroosis in the OIE Terrestrial Manual.[25]

Treatments have met with limited success. First, the bees were medicated with fluvalinate, a synthetic pyrethroid, which had about 95% mite falls. However, the last 5% became resistant to it, and later, almost immune. Fluvalinate was followed by coumaphos, which mites also have developed resistance to.[26]

Control or preventive measures and treatment

Honeybee coated with oxalic acid to protect it from mites

Monitoring

Several methods exist for monitoring levels of Varroa mites in a colony.[27] For a powdered sugar roll,[28] the sampler collects about 300 bees using a 1/2-cup measuring cup and places them in a jar with a wire mesh screen lid (1/8") along with 2 tablespoons of powdered sugar. They then gently swirl the bees for about a minute before turning the jar upside down and shaking for two minutes over a tray to capture the mites as they fall. Those mites are then counted, and the count is divided by three to find the number of mites per 100 bees. The sugar roll is typically done with the intent to prevent killing the sampled bees, but whether the vigorous shaking causes damage is not known.

For an alcohol wash, which is the most effective method, the sampler collects about 300 bees using the same cup. The bees are submerged in alcohol with a concentration of 70% or higher. A lid is placed over the jar to seal it, and the mixture is shaken vigorously for two minutes before it is poured over a 1/8" wire mesh screen into a tray. The mites are then counted, and the resulting number is also divided by three. This method kills all sampled bees. The sticky board method does not kill any bees. For this method, a sticky board with a thick coating of petroleum jelly is placed under the brood chamber under a screened bottom board (or similar 1/8" wire mesh screen). The board is retrieved after three days, and the beekeeper takes a count of the mites on the board. This number is divided by three to find the average 24-hour mite drop. This method does not kill any bees, but takes longer for results.

Chemical measures

Varroa mites can be treated with commercially available acaricides. Acaricides must be applied carefully to minimize the contamination of honey that might be consumed by humans. Proper use of miticides also slows the development of resistance by the mites.

Synthetic chemicals

Naturally occurring chemicals

  • Formic acid as vapor or pads (Mite-Away)
  • Powdered sugar (Dowda method), talc, or other "safe" powders with a grain size between 5 and 15 μm (0.20 and 0.59 mils) can be sprinkled on the bees.
  • Essential oils, especially lemon, mint, and thyme oil[31]
  • Sugar esters (Sucrocide) in spray application
  • Oxalic acid trickling method or applied as vapor[32]
  • Mineral oil (food grade) as vapor and in direct application on paper or cords
  • Beta acid found in hops in strip application (Hopguard)

However, the most effective long-term way of protecting bees against V. destructor is by breeding bees that are resistant to these mites.[9]

Physical, mechanical, behavioral methods

Varroa mites can also be controlled through nonchemical means. Most of these controls are intended to reduce the mite population to a manageable level, not to eliminate the mites completely.

  • Perforated bottom board method is used by many beekeepers on their hives. When mites occasionally fall off a bee, they must climb back up to parasitize another bee. If the beehive has a screened floor with mesh the right size, the mite falls through and cannot return to the beehive. The screened bottom board is also being credited with increased circulation of air, which reduces condensation in a hive during the winter. Studies at Cornell University done over two years found that screened bottoms have no measurable effect at all.[33] Screened bottom boards with sticky boards (glue traps) separate mites that fall through the screen and the sticky board prevents them from crawling back up.
  • Heating method, first used by beekeepers in Eastern Europe in the 1970s, later became a global method. In this method, hive frames are heated to at least 104 °F (40 °C) for several hours at a time, which causes the mites to drop from the bees.[34][35] When combined with the perforated bottom board method, this can control mites sufficiently to aid colony survival.[34] In Germany, anti-varroa heaters are manufactured for use by professional beekeepers. A thermosolar hive has been patented and manufactured in the Czech Republic.[35][36]
  • Limited drone brood cell method limits the brood space cell for Varroa mites to inhabit (4.9 mm across—about 0.5 mm smaller than standard), and also enhances the difference in size between worker and drone brood, with the intention of making the drone comb traps more effective in trapping Varroa mites. Small cell foundations have staunch advocates, though controlled studies have been generally inconclusive.
  • Comb trapping method (also known as the swarming method) is based on interrupting the honey bee brood cycle. It is an advanced method that removes capped brood from the hive, where the Varroa mites breed. The queen is confined to a comb using a comb cage. At 9-day intervals, the queen is confined to a new comb, and the brood in the old comb is left to be reared. The brood in the previous comb, now capped and infested with Varroa mites, is removed. The cycle is repeated. This complex method can remove up to 80% of Varroa mites in the hive.
  • Freezing drone brood method takes advantage of the Varroa mites' preference for longer living drone brood. The beekeeper puts a frame in the hive that is sized to encourage the queen to lay primarily drone brood. Once the brood is capped, the beekeeper removes the frame and puts it in the freezer. This kills the Varroa mites feeding on those bees. It also kills the drone brood, but most hives produce an excess of drone bees, so it is not generally considered a loss. After freezing, the frame can be returned to the hive. The nurse bees clean out the dead brood (and dead mites) and the cycle continues.
  • Drone brood excision method is a variation applicable to top bar hives. Honey bees tend to place combs suitable for drone brood along the bottom and outer margins of the comb. Cutting this off at a late stage of development ("purple eye stage") and discarding it reduces the mite load on the colony. It also allows for inspection and counting of mites on the brood.

Developments using Genetic Technologies

Researchers have been able to use RNA interference to knock out genes in the Varroa mite. Efforts also have been made to breed for changes in the honey bees.[37] Two strains have been developed in the United States that can detect damaged pupae under cappings and remove them before the infestation spreads further.[38][39] The “IN”/Indiana strain is under development at Purdue University to develop lines that groom off and bite phoretic Varroa to kill the mites.[40][41]

See also

References

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  2. ^ a b c d Ramsey, Samuel D.; Ochoa, Ronald; Bauchan, Gary; Gulbronson, Connor; Mowery, Joseph D.; Cohen, Allen; Lim, David; Joklik, Judith; Cicero, Joseph M.; Ellis, James D.; Hawthorne, David; vanEngelsdorp, Dennis (29 January 2019). "Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph". Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (5): 1792–1801. Bibcode:2019PNAS..116.1792R. doi:10.1073/pnas.1818371116. PMC 6358713. PMID 30647116.
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Varroa destructor: Brief Summary ( англиски )

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Varroa destructor, the Varroa mite is an external parasitic mite that attacks and feeds on the honey bees Apis mellifera and Apis cerana. The disease caused by the mites is called varroosis.

The Varroa mite can reproduce only in a honey bee colony. It attaches to the body of the bee and weakens the bee by sucking fat bodies. The species is a vector for at least five debilitating bee viruses, including RNA viruses such as the deformed wing virus (DWV). A significant mite infestation leads to the death of a honey bee colony, usually in the late autumn through early spring. The Varroa mite is the parasite with possibly the most pronounced economic impact on the beekeeping industry. Varroa is considered to be one of multiple stress factors contributing to the higher levels of bee losses around the world.

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Varroa destructor ( шпански; кастиљски )

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Varroa destructor es un ácaro parásito externo que ataca y se alimenta de las abejas Apis cerana y Apis mellifera. La enfermedad causada por los ácaros se llama varroasis y es la principal enfermedad que actualmente afecta las abejas, está extendida por la mayor parte de las zonas apícolas del mundo.

La varroa era sólo un parásito habitual de la abeja asiática (Apis cerana). A mediados del siglo XX, en el este de Rusia, las abejas habitualmente usadas en la apicultura (Apis mellifera) llevadas a esta zona, entraron en contacto con las asiáticas y el parásito pasó de unas a otras. Los enjambres infectados, al trasladarse, extendieron la varroa a gran parte del mundo, a excepción de Australia.

Varroa destructor sólo se puede reproducir en las colonias de abejas. Ataca el cuerpo de la abeja y la debilitan al chuparle la hemolinfa. En este proceso el ácaro extiende a la abeja virus ARN como es el virus de deformación de las alas. Una infestación significativa lleva a la muerte de toda la colonia de abejas, esto ocurre normalmente de finales de otoño hasta principios de primavera. La varroa es el parásito de más importancia económica en la apicultura. Puede contribuir al llamado "problema de colapso de colonias" que amenaza a las colmenas de toda Norteamérica y Europa.

Descripción física

El adulto de la varroa destructor es de color marrón rojizo con una forma aplanada, tiene entre 1 y 1,8 mm de largo y 1,5 a 2 mm de ancho; posee ocho patas.

Reproducción, infección y mortalidad de la colmena

La varroa se reproduce en ciclos de diez días. La hembra de la varroa entra en una celda de cría de abeja. Tan pronto como las abejas tapan la celda, la varroa pone huevos en la larva de abeja, principalmente en machos, (zánganos). Las varroas jóvenes salen del huevo aproximadamente al mismo tiempo que las jóvenes abejas se desarrollan y dejan la celda, así las varroas se van extendiendo entre otras abejas adultas y larvas. Los adultos chupan la "sangre" (hemolinfa) de las abejas adultas para alimentarse, dejando heridas abiertas. Las abejas atacadas son más propensas a infecciones. Con la excepción de algunas líneas genéticas de abejas (de Rusia o del Magreb por ejemplo) las abejas de la especie dominante en la apicultura mundial Apis mellifera están casi completamente indefensas frente a estos parásitos (Las abejas de Rusia, seguramente por haber entrado en contacto con el parásito desde hace doscientos años, son de un tercio a un 50% menos susceptibles a la reproducción de este ácaro).[1]​ La abeja asiática Apis cerana, que ha estado en contacto con la varroa durante milenios, ha desarrollado estrategias de limpieza contra el parásito de modo que la vida de la colonia no corre peligro.

En doce semanas el número de Varroas se puede multiplicar por doce. Cuando llega el otoño y deja de haber abejas machos, la varroa pone huevos en las abejas hembras y puede eliminar toda la colonia.

Fechas de introducción a nivel mundial

Identificación

Hasta hace relativamente poco tiempo, se pensaba que V. destructor era una especie de ácaro estrechamente relacionada con la llamada Varroa jacobsoni. Ambas especies parasitan a la abeja asiática, A. cerana. Sin embargo, la especie originalmente descrita como V. jacobsoni por Anthonie Cornelis Oudemans en 1904 no es la misma especie que también ataca a A. mellifera. El salto a la abeja melífera probablemente tuvo lugar por primera vez en Filipinas a principios de la década de 1960, donde la A. mellifera importada entró en contacto con colonias de A. cerana infectadas. Hasta el año 2000, los científicos no habían identificado V. destructor como una especie propia. Esta identificación tardía, en 2000, por Anderson y Trueman corrigió cierta confusión previa y la clasificación errónea en la literatura científica.[2]

Varroosis

La infestación y la posterior enfermedad parasitaria causada por los ácaros Varroa se llama varroosis. A veces, se usan los nombres incorrectos varroatosis o varroasis. Se debe formar un nombre de enfermedad parasitaria a partir del nombre taxonómico del parásito y el sufijo -osis[3]​ según lo dispuesto en la Nomenclatura estandarizada por la Asociación Mundial para el Avance de la Parasitología Veterinaria.[4]​ Por ejemplo, la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) utiliza el nombre varroosis en el Manual Terrestre de la OIE.[5]

Control o medidas preventivas

Algunos sistemas, muy intensivos en el uso de mano de obra, permiten hacer que el ácaro haga la puesta en un lugar preparado y poder destruirla con medios físicos. El tratamiento más utilizado en el mundo es StopVarroa, elaborado con ácido oxálico.[6]

La lucha química tiene dos problemas principales: deja residuos en la miel y la aparición de resistencias al producto químico por parte del parásito que acaban haciéndolo inútil.

Productos químicos naturales: Ácido oxálico y timol (extraído del tomillo). El timol mata prácticamente el 100% de la varroa sin afectar casi las abejas.[7]

Referencias

  1. «Search Content». Science News (en inglés).
  2. D. L. Anderson & J. W. H. Trueman (2000). «Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species». Experimental and Applied Acarology 24 (3): 165-189. PMID 11108385. doi:10.1023/A:1006456720416.
  3. Kassai T., 2006, Nomenclature for parasitic diseases: cohabitation with inconsistency for how long and why?, Veterinary Parasitology, 138, 169–178, http://www.waavp.org/files/Nomenclature%20for%20parasitic%20diseases.pdf
  4. «Archived copy». Archivado desde el original el 4 de marzo de 2014. Consultado el 4 de marzo de 2014.
  5. http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/2.02.07_VARROOSIS.pdf
  6. «StopVarroa, el tratamiento anti-varroa número 1 en el mundo». 29 DICIEMBRE 2021.
  7. Mark Ward (8 de marzo de 2006). bbc.co.uk, ed. «Almond farmers seek healthy bees». Consultado el 2 de mayo de 2009.

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Varroa destructor: Brief Summary ( шпански; кастиљски )

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Varroa destructor es un ácaro parásito externo que ataca y se alimenta de las abejas Apis cerana y Apis mellifera. La enfermedad causada por los ácaros se llama varroasis y es la principal enfermedad que actualmente afecta las abejas, está extendida por la mayor parte de las zonas apícolas del mundo.

La varroa era sólo un parásito habitual de la abeja asiática (Apis cerana). A mediados del siglo XX, en el este de Rusia, las abejas habitualmente usadas en la apicultura (Apis mellifera) llevadas a esta zona, entraron en contacto con las asiáticas y el parásito pasó de unas a otras. Los enjambres infectados, al trasladarse, extendieron la varroa a gran parte del mundo, a excepción de Australia.

Varroa destructor sólo se puede reproducir en las colonias de abejas. Ataca el cuerpo de la abeja y la debilitan al chuparle la hemolinfa. En este proceso el ácaro extiende a la abeja virus ARN como es el virus de deformación de las alas. Una infestación significativa lleva a la muerte de toda la colonia de abejas, esto ocurre normalmente de finales de otoño hasta principios de primavera. La varroa es el parásito de más importancia económica en la apicultura. Puede contribuir al llamado "problema de colapso de colonias" que amenaza a las colmenas de toda Norteamérica y Europa.

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Varroalest ( естонски )

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Varroalest
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Varroalest mesilasevastsel

Varroalest (Varroa destructor) on parasiitne lest, kes nakatab mesilasi ja hauet, põhjustades varroatoosi (ladina varroatosis). Varroalestast on saanud tänapäeval kõige tõsisem meemesilaste haigusetekitaja, lisaks on põhjustanud suurt majanduslikku kahju.

Väline kirjeldus

Täiskasvanud emaslestad on silmaga nähtavad ja on isaslestadest suuremad.

Emaslest on läikiv, värvuselt pruun kuni punakaspruun, pikkus 1,1–1,2 mm ja laius 1,5–1,6 mm. Kehakujult on ta lame, mistõttu on tal lihtne mesilaste küljes püsida ja arenevasse mesilashaudmesse tungida.

Isaslesta pikkus on 0,7 mm ja laius 0,7 mm, värvuselt on ta heledamad. Täiskasvanud isased ei toitu, kuna nende suised on sellised, mis ei võimalda toitu kätte saada, väljapool hauet neid ei leidu.[1]

Arengutsükkel

30–60 tundi enne haudme kinni kaanetamist ronib emane lest kärjekannu ja hakkab toituma, ta on valmis munema. 3 päeva peale haudme kinni kaanetamist hakkab emane lest munema. Kokku muneb ta 4 kuni 6 muna. Emaslest elab suvel 2–3 kuud ning enamus neist jõuab muneda 2 korda. Talvel elavad emaslestad 5–8 kuud täiskasvanud mesilaste küljes.

Esimesena munetakse üks viljastumata muna ehk isaslest ja seejärel viljastatud munad ehk emaslestad. Koorunud kahjurivastsed läbivad 2 arengutsüklit (protonümf ja deutonümf), seejärel arenevad täiskasvanuks. Emase lesta areng lesehaudmel kestab 7 päeva ja töömesilase haudmel 6 päeva; isase lesta areng vastavalt 6 ja 5 päeva. Isaslest viljastab ühe emaslesta, maksimaalselt kaks emaslesta, seejärel isaslest sureb. Tütar lestad, pärast emaga kärjekannust lahkumist, lähevad 2 nädala pärast uude kärjekannu munema.[2]

Lestale on täiskasvanud mesilane vaheperemeheks ja transportijaks. Varroalest eelistab lesehauet, kuna isasmesilane ehk lesk areneb aeglasemalt. Lest ei elaks ilma mesilasteta ja haudmeta üle 5 päeva.

Varroalesta levik

Varroalestad levivad tarusiseselt ja mesilaste vahel täiskasvanud mesilaste abil.

Varroalesta levikule aitavad kaasa:

  • rändmesindus
  • tõuemade ja mesilasperede müük
  • taimede tolmendamiseks kasutatavad mesilaspered
  • mesinikud oma tavapärase mesindustegevustega
  • sülemlenud perede ära lendamine, lestad kukuvad teiste tarude vahele
  • mesilaste omavaheline röövimine (röövimine toimub toidu puudumisel).

Varroalesta toitumine

Varroalestad toituvad haudme ja täiskasvanud mesilaste hemolümfist, häirides perede heaolu ja nii tekitavad lestad mesilastele suuri füüsilisi vaevusi. Võib lõppeda mesilase surmaga.

Varroalesta leidumus mesilastel

Täiskasvanud mesilastel leidub lesti:

  • tiibade kinnituskohtadelt
  • pea ja rindmiku vahelt
  • rindmiku ja tagakeha vahelt
  • tagakeha loogete vahelt

Tagakeha loogete vahelt on lestadel hea ja lihtne tungida läbi peremeesorganismi ja imeda sealt hemolümfi.

Varroatoos

Varroatoosi põhjustab varroalest. Väljaspool hauet tungib lest enesekaitseks mesilase keha külge, kus mesilasel on teda raske eemaldada.

Lestad võivad olla ka mitmesuguste viiruste kandjad, näiteks deformeerunud tiibade viiruse, ägeda paralüüsi viiruse kandja jpt.

Haiguse tunnused

Lestadega mesilased lendavad raskelt/vaevaliselt ja muutuvad jõuetuks. Lestadega mesilaste eluiga on kuni poole võrra lühem lestavabade mesilase omast.

Madal tase

Madalat haigestumistaset on raske avastada.

Keskmine ja kõrge tase

Mesilastel:

  • deformeerunud ja/või atrofeerunud tiibadega mesilased
  • väikese tagakehaga
  • deformeerunud tiibadega surnud mesilased / nukud / arengujärgus mesilased
  • lestad mesilastel
  • vastsete/nukkude kalibalism
  • täpiline haudemuster / mosaiikne haue / ebaühtlane haue
  • parasiitide olemasolu
  • haudmekaanetis aukudega
  • helepruunid kuni pruunid surnud vastsed

Ekstreemselt kõrge tase

Ekstreemselt kõrge lestatuse taseme korral muutub pere jõuetuks ja hukkub.[3]

Ravi

Sipelghape ja oblikhape on inimese tervisele ohtlikud ning neid kasutades tuleb olla ülimalt ettevaatlik ja tarvitada ettevaatusabinõusid. Tänapäevaste ravimite efektiivsus on 80–95%, eeldusel, et ravitakse vastavalt juhendile.[1]

Viited

  1. 1,0 1,1 1,2 1,3 1,4 Oherd A., Vari L.. "Varroatoosi ja kaasnevate mesilashaiguste tõrje". 2015. Vaadatud 10.11.2019.
  2. "Varroa mites". BeeAware. Vaadatud 09.10.19.
  3. "Varroatoos". 28. 04.2019. Vaadatud 10.11.2019.
  4. 4,0 4,1 4,2 4,3 4,4 "Varroatoos". Vaadatud 10-11.2019.
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Varroalest: Brief Summary ( естонски )

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Varroalest (Varroa destructor) on parasiitne lest, kes nakatab mesilasi ja hauet, põhjustades varroatoosi (ladina varroatosis). Varroalestast on saanud tänapäeval kõige tõsisem meemesilaste haigusetekitaja, lisaks on põhjustanud suurt majanduslikku kahju.

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Varroapunkki ( фински )

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Varroapunkki (Varroa destructor) on mehiläisen ulkoloinen, joka vaurioittaa tarhamehiläisen toukkia ja aikuisia. Ensimmäisen kerran se löydettiin vuonna 1904 intianmehiläiseltä Kaakkois-Aasiassa. Se on levinnyt tarhamehiläisen mukana kaikkialla maailmaan 1960-luvulta alkaen, ja Suomessa sitä on havaittu vuodesta 1980.[1]

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Varroapunkki mehiläiskuhnurin selässä, kiinnittyneenä keskiruumiiseen.

Varroa destructor havaittiin vuonna 2000 omaksi lajikseen erotettuna Varroa jacobsonista. Aiemmin käytettiin tästä vaarallisemmasta punkistakin nimeä V. jacobsoni.[2]

Lähteet

Aiheesta muualla

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Varroapunkki: Brief Summary ( фински )

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Varroapunkki (Varroa destructor) on mehiläisen ulkoloinen, joka vaurioittaa tarhamehiläisen toukkia ja aikuisia. Ensimmäisen kerran se löydettiin vuonna 1904 intianmehiläiseltä Kaakkois-Aasiassa. Se on levinnyt tarhamehiläisen mukana kaikkialla maailmaan 1960-luvulta alkaen, ja Suomessa sitä on havaittu vuodesta 1980.

 src= Varroapunkki mehiläiskuhnurin selässä, kiinnittyneenä keskiruumiiseen.

Varroa destructor havaittiin vuonna 2000 omaksi lajikseen erotettuna Varroa jacobsonista. Aiemmin käytettiin tästä vaarallisemmasta punkistakin nimeä V. jacobsoni.

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Varroa destructor ( француски )

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Varroa destructor est une espèce d'acariens parasites de l'abeille adulte ainsi que des larves et des nymphes. Il est originaire de l'Asie du Sud-Est, où il vit aux dépens de l'abeille asiatique Apis cerana qui résiste à ses attaques, contrairement à l'abeille domestique européenne Apis mellifera. Ce parasite provoque des pertes économiques importantes en apiculture et il est une des causes de la diminution du nombre d'abeilles. Ayant colonisé quasiment toutes les zones où Apis mellifera est présente, la varroose est désormais un problème d'ordre mondial.

Origine

L’acarien Varroa jacobsoni (en) vit en équilibre avec son hôte d'origine, l’abeille Apis cerana qui se trouve surtout dans le sud-est de l'Asie. Pour produire plus de miel, des apiculteurs importèrent des colonies d’Apis mellifera dans la région d’origine d’Apis cerana. La cohabitation des deux espèces d’abeilles aurait permis au Varroa jacobsoni de parasiter l’Apis mellifera. La rencontre entre le varroa et l’abeille domestique aurait eu lieu vers 1877 au Japon[a 1]. Son adaptation à son nouvel hôte aurait donné naissance à une nouvelle espèce, le Varroa destructor. L’Apis mellifera est beaucoup plus vulnérable que ne l’est sa cousine asiatique, car elle s’épouille assez mal et son cycle de développement est plus long ce qui permet à l’acarien de se reproduire en plus grand nombre[1]. À cause des transhumances et du commerce mondial d’essaims sa propagation fut rapide. Sa première observation sur Apis mellifera a été relevée en Sibérie en 1964. Dans les années 1970 il est apparu en Europe et en France depuis 1982[b 1]. Aujourd’hui, les acariens se sont propagés quasiment sur l'ensemble de la planète. Seules l'Australie, certaines régions d'Afrique centrale, Terre Neuve[2] et en France les îles d'Ouessant et la Polynésie française sont épargnées par la varroose.

Morphologie

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Varroa sur l'abeille
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Varroa sur pupe d'abeille
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En microscopie électronique
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Varroa sur pupes
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En microscopie électronique
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Varroa destructor sur larve d'abeille

Le varroa ressemble à un petit crabe aplati[b 2]. C’est la femelle que l’on observe le plus régulièrement. De couleur rouge, elle mesure de 1 à 1,8 mm de long sur 1,5 à 2 mm de large. Les mâles ne sortent jamais des alvéoles. Ils sont blanc jaunâtre et mesurent 0,8 mm de diamètre[b 3]. Les femelles sont très agiles et l’extrémité de leurs pattes est munie de ventouses pour s’agripper aux abeilles. Les pattes sont courtes, le corps est recouvert de nombreuses soies. Sa forme plate est bien adaptée pour se loger entre la nymphe et les parois de l’alvéole ainsi que sur le corps de l’abeille adulte. Il y a quelques années, on ne connaissait pas de prédateurs à cet acarien[3], mais le pseudoscorpion Chelifer cancroides semble être un candidat sérieux[4].

Cycle de vie

On a longtemps cru que la femelle varroa se nourrissait par piqûre de l’hémolymphe des abeilles. Une étude de 2019 a démontré qu'en fait c'est leur tissu adipeux qui constitue la source de nourriture privilégiée du varroa, et non l'hémolymphe[5].

La reine, les ouvrières et les mâles sont tous visés et cela à tous les stades de leur développement (larve, nymphe, abeilles adultes). La durée de vie du parasite est adaptée au cycle de vie de l’abeille.

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Alors que la population d’abeilles et de couvain décroissent à la fin de l’été, le nombre de varroa reste important. La pression parasitaire est des plus critiques lors des mois d’août à octobre. On a remarqué qu’une colonie qui hiverne avec plus de 50 varroas a peu de chances de survivre l’année suivante.

En été, la femelle varroa vit entre un et deux mois. En hiver entre six et huit. Le mâle varroa meurt après l’accouplement[a 2].

Reproduction

La femelle varroa se loge dans une cellule occupée par une larve d'abeille juste avant son operculation. En cas de forte infection, plusieurs femelles peuvent occuper la même alvéole. De préférence elle choisit les cellules de couvain d’abeilles mâles qu’elle distingue à l’odeur. La femelle pond de deux à huit œufs. Le premier pondu 60 heures environ après operculation donnera un mâle, les suivants des femelles qui suivront toutes les 30 heures environ[a 2]. Une fondatrice peut effectuer plusieurs cycles de ponte. Les femelles atteignent l'âge adulte en 7 à 9 jours. Toutes n’arriveront pas à maturité. Le couvain d’abeilles mâles mettant plus de temps à se développer il permettra à plus de femelles varroas de devenir matures. Les mâles varroas atteignent l'âge adulte en 5 à 7 jours. Ils peuvent s’accoupler plusieurs fois. Leurs pièces buccales sont utilisées pour la reproduction et ils ne peuvent se nourrir de l'hémolymphe de l'abeille et dépendent donc totalement de la nourriture de l'abeille. Avant que l'abeille ne sorte de la cellule, les mâles varroas doivent féconder les femelles. Les mâles meurent ensuite par manque de nourriture. Par contre, les femelles survivent et se déplacent dans la ruche en s'accrochant aux abeilles et aux faux-bourdons. Le varroa peut ensuite être facilement transporté par les abeilles d'une colonie à l'autre.[pas clair]

Diagnostiquer la varroose

La maladie provoquée par la prolifération de varroa est appelée varroose, et parfois de façon incorrecte varroase ou varroatose. Le terme correct est varroose car cette maladie est une parasitose, et doit donc être nommée du nom du parasite suivi du suffixe -ose[6] comme le prévoit la nomenclature standardisée de la World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology[7]. Ainsi l'Organisation mondiale de la santé animale (OIE), qui avait utilisé le terme varroase dans son manuel terrestre de 2005[8], a corrigé et employé le terme varroose en 2008[9].

Quand les abeilles hivernent, on glisse sur le plateau de la ruche une plaque graissée qui recueille tout ce qui tombe des rayons, en particulier les varroas morts naturellement. Quand les abeilles sont actives il faut protéger ce lange d’une grille fine pour que les abeilles ne le nettoient pas[b 1]. Si on utilise un plateau grillagé, il suffit de mettre la plaque sous le grillage en faisant attention que les fourmis n’y aient pas accès car elles peuvent emmener les cadavres de varroa et fausser le comptage. Pour effectuer un comptage les apiculteurs laissent le lange au moins une semaine car les variations quotidiennes peuvent être importantes. En divisant le nombre de varroas trouvés par le nombre de jours et en le multipliant par 50 on obtient une estimation du nombre de varroas présents dans la colonie[c 1].

Les effets du varroa sur l’abeille

Se nourrissant de l’hémolymphe et des acides gras, le varroa prive l’abeille de nombreuses cellules sanguines et de protéines. Entre autres, la gelée royale produite par les nourrices est alors de moins bonne qualité ce qui nuit au bon développement du couvain. L’effet le plus dévastateur est la transmission des maladies lors des piqûres ou ultérieurement car la plaie reste ouverte et devient un foyer infectieux. Ainsi, la varroose est souvent associée au développement de malformations ou d’autres maladies telles que le couvain sacciforme, les loques, la paralysie aiguë etc.

Moyens de lutte

Au début de la propagation, on a cru pouvoir l’éradiquer en détruisant systématiquement les colonies touchées. Mais la contagion semble souvent inexorable à cause de facteurs importants de disséminations naturels (pillage, dérive, essaimage) ou anthropiques (transhumance, commerce des colonies) ; en particulier cette espèce est capable de mimétisme biochimique ; il change la composition moléculaire de sa cuticule pour mimer son hôte et se rendre indétectable dans la colonie.

Traitements chimiques

En 1982, le seul traitement disponible était le Folbex VA. Sous forme de bandes papier, il fallait les consumer afin de libérer la substance active le bromopropylate. Ce traitement se montra vite inopérant. Des générateurs d’aérosol apparurent (Edar, Phagogène). Ces appareils volumineux nécessitent pour fonctionner de l’électricité ou du gaz. Ils permettent d’introduire dans les colonies différentes substances actives. La plus utilisée est l’amitraze. La même substance peut aussi être imbibée dans des langes enduits de vaseline. Cette molécule administrée en aérosols ou en évaporation donne des résultats, mais elle ne s’attaque pas aux varroas logés dans les alvéoles operculées et nécessite donc de fréquentes applications. Il est donc surtout efficace en période hivernale où le couvain est réduit. Dans les climats chauds tels que la zone méditerranéenne le couvain est présent en toutes saisons et l’apiculteur doit redoubler de vigilance[b 4]. Certains apiculteurs ont utilisé le Klartan à base de fluvalinate. L’efficacité est certaine mais son usage est illégal en France. Pour utiliser cette molécule, il a fallu attendre une autorisation de mise sur le marché de l’Apistan, lanières diffusant du fluvalinate. Elle permettait de traiter de manière efficace et simple (une seule application par an) les colonies jusqu’à ce que le varroa développe une résistance à ce médicament sans doute favorisé par le manque d’alternatives dans les traitements. Depuis trois nouveaux produits sont disponibles. StopVarroa à base d'acide oxalique, l’Apivar à base d’amitraze et le Périzin, à base de coumaphos (organophosphoré). Cette dernière molécule présente l’inconvénient de se retrouver dans les cires et porterait préjudice au développement des larves d’abeilles[11]. L’alternance des molécules accroît l’action du traitement. À l'heure actuelle, il est nécessaire de faire un traitement en deux phases. Premièrement un traitement réalisé juste après la récolte du miel puis un traitement radical en hiver profitant du faible nombre du couvain.

Traitements alternatifs

Ces traitements «biologiques» ont une efficacité plus irrégulière et plus faible[b 5]. Cependant leurs résidus présentent moins de nocivité pour la santé et permettent d’élargir la palette des traitements et réduire l’apparition de résistances du varroa.

Acide formique

L’acide formique est présent naturellement dans le miel. Les meilleurs résultats sont obtenus ponctuellement en imbibant 30 ml d’acide à 65 % pour une ruche Dadant sur une éponge en viscose. Sa manipulation nécessite des lunettes et des gants. Son évaporation varie beaucoup en fonction de la température extérieure et de la position du diffuseur dans la ruche.

Thymol

Le thymol n’est pas vénéneux. On peut le dissoudre dans de l’alcool ménager, en imbiber des bouts de carton et les laisser s’évaporer au-dessus des cadres. La température extérieure doit être supérieure à 20 °C. Tout le rucher doit être traité en même temps car les vapeurs incommodent les abeilles qui peuvent changer de ruches. Son efficacité avoisine les 80 %. Plusieurs médicaments utilisent le thymol dont Apiguard, Thymovar et Apilife-Var. Les trois ont une autorisation de mise sur le marché en France. Ce dernier est associé à du camphre, du menthol et de l’huile essentielle d’eucalyptol[b 6]. On conseille un premier traitement au thymol dès la récolte de juillet puis 3 mois de traitement avec des lanières et enfin une application d'acide oxalique hors couvain en décembre ou début janvier.

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Abeilles noires sortant massivement de la ruche après traitement avec de l'Apiguard.

Acide oxalique

Des plantes comestibles comme l’oseille contiennent de l’acide oxalique. Il n’est cependant pas sans danger et est considéré comme vénéneux dans la pharmacologie européenne. Il figure dans l’annexe 2 des limites maximales de résidus des substances vétérinaires. Les vétérinaires en France peuvent donc en prescrire aux apiculteurs bio. Son efficacité a été démontrée et en respectant le protocole d’utilisation, on ne détecte pas de traces dans le miel.

Les traitements à l’acide formique et au thymol sont plutôt destinés aux traitements après la récolte lorsque la température extérieure est encore assez élevée. Ils sont souvent complétés par un traitement à l’acide oxalique[c 2]. Ce traitement a lieu en hiver en l'absence de couvain (novembre-décembre). L'efficacité est de l'ordre de 95-98%[12]. Il est à noter que la température affecte l'évaporation de l'acide et donc son efficacité/nocivité[citation nécessaire].

Traitements mécaniques

Les varroas se développant en grand nombre dans les cellules mâles, certains apiculteurs détruisent en avril deux cadres à couvain de mâles avant l’émergence des faux-bourdons mais la destruction des faux-bourdons n’est pas sans poser de problèmes. Cette pratique est interdite en apiculture biologique[13]. Des partisans de la ruche Warré auraient noté que l’utilisation de cadres en cire gaufrée favoriserait le développement du varroa car la taille des alvéoles est un peu plus grande que quand on laisse construire naturellement les cirières. L’utilisation de fonds grillagés dans les ruches empêcherait les varroas qui tomberaient accidentellement de remonter dans la ruche. La même remarque est évoquée pour expliquer que les colonies sauvages installées dans des cheminées seraient moins touchées par le varroa. D’autres contredisent ce fait, en argumentant que le Varroa en plus d’être très agile, possède huit ventouses très puissantes et les individus qui tomberaient ne seraient que les morts ou en fin de vie. De plus un plancher grillagé diminuerait la température intérieure de la ruche. Le développement du couvain serait alors plus long et par conséquent le nombre de femelles varroas matures plus important.

Traitement thermique

Le varroa ne supporte pas bien la chaleur. Il est possible de l'exterminer en plaçant une ruche à 42 degrés pendant 2 heures. Les abeilles n'en souffrent pas car elles peuvent supporter 48 degrés. En 2019, une société a développé une ruche climatisée nommée Cocoon qui permet de déclencher facilement ces attaques thermiques. Malheureusement ces ruches sont assez coûteuses (950 euros)[14] .

Axes de recherche dans la lutte contre le varroa

Sélection d’abeilles hygiéniques

On suppose que l’Apis mellifera pourrait développer avec le temps par sélection naturelle des comportements de lutte contre le varroa, comme l’a fait Apis cerana. Certaines abeilles réussissent à repérer les cellules operculées dont la nymphe est malade (en particulier celles infectées par le varroa) et arrivent à les éliminer. Des colonies sauvages ont réussi à subsister pendant plusieurs années, en l’absence de tout traitement. Il faut cependant rester prudent car la varroose est une maladie sournoise qui peut être présente pendant plusieurs années sans causer de mortalités anormales, puis rapidement atteindre un niveau tel qu’elle provoque la mort de la colonie en quelques mois[15]. La question de la durée qu’il faudrait accorder aux abeilles pour qu’elles acquièrent des stratégies de lutte contre le parasite reste en suspens car la rencontre de varroa et d’Apis mellifera est récente comparée à l’échelle de temps darwinienne. De plus si cette sélection naturelle a lieu, elle n’a pas été favorisée par les traitements chimiques ou bios administrés par l’homme.

Biopesticides

La recherche s’oriente aussi vers la découverte de virus ayant pour cible le varroa. Ils ne s’attaqueraient qu’au varroa et épargneraient l’abeille, mais la culture de ces virus reste problématique[16].

Chelifer cancroides (le « scorpion des livres ») est un prédateur naturel du varroa ; des tentatives d’introduction dans les ruches semblent prometteuses[réf. souhaitée].

Bactéries

La modification génétique de Snodgrassella alvi, une bactérie de l'intestin de l'abeille, a permis d'induire une réaction immunitaire qui permet à l'abeille à la fois de résister au virus provoquant la maladie des ailes déformées et de réduire efficacement la survie du Varroa[17].

Législation

La France, par les décrets du 17 février 2006[18] et du 7 novembre 2008[19] classe la varroose en maladie à déclaration obligatoire. Dans la pratique, aucun rucher n’étant épargné[évasif], ces mesures sont caduques et donc non appliquées.

En Belgique, à la suite d'un arrêté royal du 7 mars 2007, la varroose fait partie des maladies des abeilles à déclaration obligatoire[20].

Références

  • Anderson & Trueman : Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species. Experimental and Applied Acarology, 24(3), March 2000: 165-189.

Notes et références

  1. p. 135.
  2. a et b p. 136.
  1. a et b p. 88.
  2. p. 26.
  3. p. 89.
  4. p. 33.
  5. p. 92.
  6. p. 93.
  • Jérôme Alphonse, Un petit rucher bio, Paris, éditions plaisirs nature, 2011, 127 p. (ISBN 978-2-8153-0015-5)
  1. p. 88.
  2. p. 89.
  • Autres
  1. http://same-apiculture.colinweb.fr/Varroa-abeilles-et-traitements
  2. Honey Bee Apis mellifera Parasites in the Absence of Nosema ceranae Fungi and Varroa destructor Mites Dave Shutler, Krista Head, Karen L. Burgher-MacLellan, Megan J. Colwell, Abby L. Levitt, Nancy Ostiguy, Geoffrey R. Williams
  3. Jean Riondet, L’apiculture mois par mois, Paris, éditions Ulmer, 2010, 159 p. (ISBN 978-2-84138-439-6), p. 158
  4. https://www.cari.be/medias/abcie_articles/173_ecologie.pdf
  5. (en) Samuel D. Ramsey, Ronald Ochoa, Gary Bauchan, Connor Gulbronson, Joseph D. Mowery, Allen Cohen, David Lim, Judith Joklik, Joseph M. Cicero, James D. Ellis, David Hawthorne et ennis vanEngelsdorp, « Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph », PNAS, vol. 116, no 5,‎ 29 janvier 2019, p. 1792-1801 (lire en ligne, consulté le 17 février 2020).
  6. Kassai T., 2006, Nomenclature for parasitic diseases: cohabitation with inconsistency for how long and why?, Veterinary Parasitology, 138, 169–178, http://www.waavp.org/files/Nomenclature%20for%20parasitic%20diseases.pdf
  7. http://www.waavp.org/node/43
  8. http://web.oie.int/fr/normes/mmanual/pdf_fr/Chapitre%20final05%202.9.5_Varroosis.pdf
  9. http://www.oie.int/fileadmin/Home/fr/Health_standards/tahm/Chap%202.2.7._Varroose_2008.pdf
  10. Jean-Paul Faucon, La question sanitaire : connaissances pour la qualité des colonies, Maisons-Alfort/Paris, CNEVA FNOSAD, 1996, 87 p. (ISBN 2-9506622-1-8), p. 2e et 3e de couverture
  11. Rémy Bacher, L’ABC du rucher bio, Mens, éditions terre vivante, 2006, 141 p. (ISBN 978-2-914717-20-5), p. 69
  12. Site de Brin de Paille Alsace : Association de Permaculture de Strasbourg: Lutte biologique contre la varroase
  13. Dominique Burel, La ruche le miel et le jardin, Aix-en-Provence/Lille/Rennes, éditions Ouest-France, 2012, 95 p. (ISBN 978-2-7373-5500-4), p. 59
  14. Cocoon, la ruche qui détruit le varroa.
  15. Minh-Hà Pham-Delègue, Connaître et découvrir les abeilles, éditions Minerva, 1999 (ISBN 978-2-7028-2599-0), p. 143
  16. Vincent Tardieu, L’étrange silence des abeilles, Paris, éditions Belin, 2009, 349 p. (ISBN 978-2-7011-4909-7), p. 309-315
  17. (en) Sean P. Leonard, J. Elijah Powell, Jiri Perutka, Peng Geng, Luke C. Heckmann et Richard D. Horak, « Engineered symbionts activate honey bee immunity and limit pathogens », Science, vol. 367, no 6477,‎ 31 janvier 2020, p. 573-576 (DOI , lire en ligne)
  18. « JORF n°42 du 18 février 2006 page 2518 texte n° 28 », sur légifrance (consulté le 1er août 2017)
  19. « JOURNAL OFFICIEL DE LA RÉPUBLIQUE FRANÇAISE », 9 novembre 2008 (consulté le 1er août 2017)
  20. « Apiculture en Belgique et maladies à déclaration obligatoire », sur Service public fédéral, belgium.be, 17 mai 2016 (consulté le 1er août 2017)
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Varroa destructor: Brief Summary ( француски )

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Varroa destructor est une espèce d'acariens parasites de l'abeille adulte ainsi que des larves et des nymphes. Il est originaire de l'Asie du Sud-Est, où il vit aux dépens de l'abeille asiatique Apis cerana qui résiste à ses attaques, contrairement à l'abeille domestique européenne Apis mellifera. Ce parasite provoque des pertes économiques importantes en apiculture et il est une des causes de la diminution du nombre d'abeilles. Ayant colonisé quasiment toutes les zones où Apis mellifera est présente, la varroose est désormais un problème d'ordre mondial.

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Varroa destructor ( италијански )

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Varroa destructor è un acaro parassita esterno che attacca le api Apis mellifera e Apis cerana. Fino a poco tempo fa veniva erroneamente classificato come Varroa jacobsoni.

L'acaro varroa è stato trovato su altri insetti impollinatori quali il bombo Bombus pennsylvanicus, lo scarabeo Phanaeus vindex e la mosca dei fiori Palpada vinetorum[1]. Sebbene l'acaro varroa non possa riprodursi su questi insetti, la sua presenza su essi può essere un mezzo tramite cui diffondersi nel raggio di brevi distanze.

La varroa si può riprodurre solamente in una colonia di api mellifere. Si attacca al corpo dell'ape e la indebolisce succhiandone l'emolinfa. Durante questo processo l'acaro può anche trasmettere agenti virali RNA all'ape. Una grande infestazione di acari porta alla morte della colonia, di solito tra la fine di autunno e l'inizio della primavera. L'acaro varroa è il parassita con il più pronunciato impatto economico nell'industria dell'apicoltura.

Origine

Fino a poco tempo fa la Varroa destructor veniva confusa con la Varroa jacobsoni[2][3], una specie di acaro molto simile. Entrambe le specie infestano l'ape mellifera asiatica (Apis cerana). La specie di acaro originariamente descritta come Varroa jacobsoni da Anthonid Cornelis Oudemans nel 1904 fa parte dello stesso complesso di specie, ma non è la stessa che effettuò il salto sull'Apis mellifera. Probabilmente questo salto avvenne per la prima volta nelle Filippine nei primi anni sessanta. Solo dopo che l'Apis mellifera fu importata nelle Filippine venne a stretto contatto con l'Apis cerana e quindi la varroa divenne parassita anche dell'Apis mellifera. Fino al 2000 gli scienziati non erano d'accordo sull'identificare la Varroa destructor come una specie separata. Nel 2005 si scoprì che tra gli almeno 5-6 genotipi identificati da Anderson e Trueman gli unici acari varroa che possono riprodursi nelle colonie delle Apis mellifera sono i genotipo della Varroa destructor della Corea e del Giappone/Thailandia. La Varroa jacobsoni è un parassita dell'Apis cerana del tutto benigno. Quest'ultima identificazione, effettuata nel 2000 da Anderson e Trueman, portò un po' di confusione e qualche errore nella letteratura scientifica. Nel sudest asiatico vivono altre due specie di Varroa: Varroa rindereri e Varroa underwoodi, entrambe parassite di Apis cerana, che non causano grossi danni.

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Varroa destructor su una larva d'ape

Anatomia

  • Colore: bruno-rossastro.
  • Lunghezza: 1.00-1.77 mm.
  • Larghezza: 1.50-1.99 mm.
  • Forma: piatta, a bottone.
  • Dotata di otto zampe.

Ciclo di vita

L'acaro femmina entra in una cella di una covata delle api mellifere, dando la preferenza ad una cella contenente covata maschile, ossia una larva di fuco. Non appena la cella viene opercolata, l'acaro depone le uova. I giovani acari escono dal guscio all'incirca nello stesso momento in cui la giovane ape si sviluppa e lascia la cella col suo ospite. Il Centro svizzero di ricerche apicole[4] ha indagato scientificamente sul ciclo di vita della varroa nella cella opercolata e ne ha pubblicato i risultati.

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Acari varroa su una pupa

Il modello per la dinamica di popolazione è quello di una crescita esponenziale quando la covata delle api è disponibile e di un declino esponenziale altrimenti. Popolazioni estese di acari in autunno possono portare a una crisi quando l'allevamento dei fuchi cessa e gli acari passano alle larve delle api operaie, causando una veloce decimazione della popolazione e spesso la morte dell'alveare.

Riproduzione

L'acaro si riproduce in un ciclo di dieci giorni. Il numero di parassiti negli alveari di ape mellifera raddoppia ad ogni ciclo di covata dell'ape. In Russia alcuni ecotipi locali di ape sembrano avere una migliore resistenza agli attacchi del parassita. Inoltre il più breve tempo di sviluppo delle api operaie degli ecotipi africani rispetto alle razze europee sembra rendere anch'esse meno vulnerabili.

Varroatosi

La sindrome parassitaria causata dall'acaro varroa è denominata varroatosi. Oramai presente in quasi tutto il globo, attualmente sono esenti solo Australia e Madagascar, non esiste alcuna cura risolutiva sia per la difficoltà nella totale eradicazione del parassita dalla singola famiglia sia per il velocissimo fenomeno della reinfestazione da deriva. Tra i metodi di contenimento vi sono gli acaricidi chimici di sintesi come alcuni piretroidi (fluvalinate, flumetrina), organofosfati (coumaphos) e triazapentadieni (amitraz). Alcuni di questi hanno dimostrato limiti sia nella contaminazione della cera sia provocando fenomeni di resistenza selettiva con conseguente calo di efficacia. Sono ora più diffusi metodi chimici di origine naturale ovvero:

Nella tendenza attuale si vanno diffondendo metodi di contenimento basati su determinate pratiche apistiche:

  • sciamatura artificiale e arresto della covata;
  • telaino trappola sfruttando la predilezione per le celle da fuco.

Espansione nel mondo

Note

  1. ^ Kevan PG et al.,, Association of Varroa jacobsoni with organisms other than honey beesand implication for its dispersal, in Bee World, vol. 7, n. 3, 1990, pp. 119–121.
  2. ^ D. Anderson & J. W. H. Trueman (2000). "Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species." Experimental & Applied Acarology, 24, 165-189.
  3. ^ Notes on Varroa destructor (Acari: Varroidae) parasitic on honeybees in New Zealand ZHI-QIANG ZHANG, Systematic & Applied Acarology Special Publications (2000) 5, 9-14
  4. ^ Centro svizzero di ricerche apicole, su agroscope.admin.ch (archiviato dall'url originale il 17 aprile 2015).
  5. ^ Copia archiviata, su biosecurity.govt.nz. URL consultato il 13 ottobre 2006 (archiviato dall'url originale il 4 luglio 2008).
  6. ^ [1][2] Archiviato il 25 luglio 2008 in Internet Archive.

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Varroa destructor è un acaro parassita esterno che attacca le api Apis mellifera e Apis cerana. Fino a poco tempo fa veniva erroneamente classificato come Varroa jacobsoni.

L'acaro varroa è stato trovato su altri insetti impollinatori quali il bombo Bombus pennsylvanicus, lo scarabeo Phanaeus vindex e la mosca dei fiori Palpada vinetorum. Sebbene l'acaro varroa non possa riprodursi su questi insetti, la sua presenza su essi può essere un mezzo tramite cui diffondersi nel raggio di brevi distanze.

La varroa si può riprodurre solamente in una colonia di api mellifere. Si attacca al corpo dell'ape e la indebolisce succhiandone l'emolinfa. Durante questo processo l'acaro può anche trasmettere agenti virali RNA all'ape. Una grande infestazione di acari porta alla morte della colonia, di solito tra la fine di autunno e l'inizio della primavera. L'acaro varroa è il parassita con il più pronunciato impatto economico nell'industria dell'apicoltura.

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Varoatozės erkė ( литвански )

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Binomas Varroa destructor

Varoatozės erkė (lot. Varroa destructor) – bitėms labai kenkianti parazitinė erkė. Praeityje ši rūšis klaidingai vadinta anksčiau žinomu Varroa jacobsoni vardu. Varroa jacobsoni parazituoja Azijoje laikomas Apis cerana ir yra palyginus mažiau pavojinga. Tik apie 2000 metus paaiškėjo, jog Europoje laikomas Apis mellifera užpuolė irgi iš Azijos kilusi, bet kita erkių rūšis. Varroa jacobsoni Apis mellifera šeimoje gyventi negali.

Gyvenimo būdas

Savo aštuoniomis kojomis erkės prikimba prie suaugusių bičių ar jų lervų ir siurbia hemolimfą. Tokia šeima nusilpsta ir negydoma paprastai visada žūva (dažniausiai žiemą arba ankstyvą pavasarį). Suaugusi erkė padeda kiaušinėlius į tuščią korio akutę. Išsiritusios jaunos erkės užpuola ten besivystančią bitės lervą. Erkės dauginimosi ciklas trunka tik dešimt dienų. Ši bičių liga vadinama varoatoze.

Bitės aktyviai kovoja prieš erkes, nukąsdamos joms kojas, kad negalėtų įsikabinti. Aviliuose randama tokių apkandžiotų erkių, bandoma išvesti tą geriau sugebančias bičių veisles.

Fizinės savybės

Iš išorės erkė padengta stangria, labai chitinizuota, rudos spalvos kutikula. Jos paviršius padengtas plonais šereliais. Po ja yra hipoderma. Suaugusi erkė turi 4 poras nariuotų kojų. Kojos trumpos ir storos, baigiasi čiulptukais arba siurbtukais., kuriais erkė prisitvirtina prie bitės kūno. Taip pat tokiomis kojomis erkė lengvai vaikšto bičių korio sienelių paviršiumi. Patelės – skersai ovalios formos. Erkės kūnas – idiosoma – priekyje jungiasi judria jungtimi su burnos organais - gnatosoma. Burnos organų pamatinė dalis – vamzdelio pavidalo – gnatobazė. Ji susidaro iš suaugusių pedipalpų pamatinių narelių. Patino kūnas beveik apvalus, priekinis galas nusmailėjęs, kutikula – baltos arba pilkšvos spalvos, mažai chitinizuota. Po krūtinės skydeliu yra lytinė anga. Patinai randami uždarose korių akutėse ant bičių ir tranų lervų bei lėliukių. Korių akutėse patinai susiporuoja su patelėmis ir gaišta.

Virškinimo sistema

Prasideda burna. Į burnos ertmę atsiveria viena pora seilių liaukų. Iš burnos ertmės maistas patenka į raumeningą ryklę, iš jos į trumpą stemplę, o pastaroji atsiveria į centrinę žarną. Erkės žaryne yra keturios porinės ir dvi neporinės aklosios ataugos. Į šias ataugas erkė gali prisisiurbti daug maisto. Centrinė žarna pereina į tiesiąją žarną, kurioje yra išsiplėtimas – rektalinė pūslė. Ši pūslė į išorę atsiveria analine anga.

Šalinimo sistema

Sudaryta iš dviejų plonų Malpigijaus vamzdelių, kurie tęsiasi erkės šonais ir atsiveria į rektalinę pūslę.

Kraujotakos sistema

Neuždara. Virš centrinės žarnos yra ampulės pavidalo širdis. Užpakaliniame širdies gale yra angelė, pro kurią į širdį iš kūno ertmių patenka hemolimfa.

Nervų sistema

Jos centras yra vienas nervinis mazgas. Jis esti ties ta vieta, kur stemplė susijungia su žarnynu. Iš mazgo išeina nerviniai kamienai į kojas ir vidaus organus.

Kvėpavimo sistema

Sudaryta iš plonų vamzdelių – trachėjų – tinklo.Trachėjos į išorę atsiveria angelėmis – stigmomis.

Lytinė sistema

Patelės turi porinę kiaušidę, du kiaušintakius, neporinę gimdą ir makštį. Lytinė angelė atsiveria krūtinės skydelio užpakaliniame krašte.

Reikšmė

Parazituoja bites, sukelia bičių varoozę. Padaro daug žalos bitynams. Ligą platina sergančios bičių šeimos ir jų spiečiai. Šeimos viduje sukėlėją platina ir kitas šeimas užkrečia bitės darbininkės, taip pat bičių motinos, ant kurių kūno yra erkių patelių. Bičių varooze sukelia Varroa Jacobsoni erkė. Naikinti šias erkes sunku tačiau bitynus galima išgelbėti. Svarbu pastebėti ligą, ištirti bityną ir laiku pradėti bityno gelbėjimą.

Kovos metodai

Įvairūs vaistai labai sumažina erkių skaičių, šeima gyvena ir prineša pakankamai medaus. Šiuo metu Lietuvoje erkės yra užpuolusios beveik visas šeimas. Yra ir natūralių gydymo priemonių (pavyzdžiui, padidinta temperatūra) bei natūralių cheminių medžiagų (skruzdžių rūgšties garai, cukraus pudra, į avilį dedamos citrinos, mėtos ar čiobreliai). Avilio dugne įdedamas tinklelis, kad nukritusios erkės nebegalėtų pasiekti bičių. Nuo erkių bitės apsivalo ir spiesdamos, nes tuo metu kurį laiką neauginamos naujos lervos (parazitas negali pulti naujų bičių). Bitininkai kai kada ir patys laikinai uždaro motinėlę į narvelį, neleisdami dėti kiaušinėlių. Erkės labiau mėgsta tranus nei bites darbininkes, todėl kartais išpjaunami ir naikinami daug erkių sukaupę traniniai perai.

Šiuo metu bitės nuo varoatozės turi būti gydomos kasmet.

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Varoatozės erkė: Brief Summary ( литвански )

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Varoatozės erkė (lot. Varroa destructor) – bitėms labai kenkianti parazitinė erkė. Praeityje ši rūšis klaidingai vadinta anksčiau žinomu Varroa jacobsoni vardu. Varroa jacobsoni parazituoja Azijoje laikomas Apis cerana ir yra palyginus mažiau pavojinga. Tik apie 2000 metus paaiškėjo, jog Europoje laikomas Apis mellifera užpuolė irgi iš Azijos kilusi, bet kita erkių rūšis. Varroa jacobsoni Apis mellifera šeimoje gyventi negali.

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Varroamijt ( холандски; фламански )

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De varroamijt (Varroa destructor) is een uitwendige parasiet die voorkomt op insecten, maar zich alleen voort kan planten op het broed van honingbijen.

De mijten behoren tot de spinachtigen. In het volwassen stadium bezitten ze acht poten. Het volwassen wijfje is dwars-ovaal van vorm, roodbruin van kleur, 1,1 mm lang en 1,5 mm breed. De mijt is dus met het blote oog goed zichtbaar. De poten zitten verscholen onder het rugschild. Op de dunne huidgedeelten van de bij zuigen de mijten van het vetlichaam van de bij.[1] Ze zitten tussen kop en borststuk en achterlijf en tussen de ringen van het achterlijf dicht bij de wasklieren.

Kort voor het sluiten van het broed, bij voorkeur het darrenbroed, dringt een varroawijfje een broedcel binnen en laat zich hierin meestal insluiten. Ze legt tegen de wand van de cel twee tot zes eitjes. In de gesloten cel voeden de jonge mijten zich met het vetlichaam van de pop. De ontwikkeling van ei tot mijt duurt zes tot tien dagen. De jonge wijfjes worden binnen de cel bevrucht. De mannetjes sterven na de paring.

De volwassen bevruchte wijfjes verlaten met de jonge werkbij of dar de cel. Ze stappen over op andere bijen. Na vier tot dertien dagen beginnen deze mijten eitjes te leggen in de cellen van de bijna volgroeide larven. De wijfjes leven in de zomer twee tot drie maanden en in de winter vijf tot acht maanden. Buiten het bijenvolk leeft de mijt niet langer dan vijf tot zeven dagen.

Door het opzuigen van het vetlichaam worden de volwassen bijen verzwakt. Door de ontstane wonden kunnen ziektekiemen binnendringen. De levensduur kan daardoor tot de helft bekort worden. De jonge mijten voeden zich in de cel met het vetlichamen van de pop. Dit gaat ten koste van diens ontwikkeling. Uit de aangetaste broedcellen komen misvormde bijen, bijvoorbeeld met een verkort achterlijf, vleugelstompjes of afwijkingen aan de poten. Door de kortere levensduur en het geringe aantal levensvatbare jonge bijen, wordt het bijenvolk sterk verzwakt, zo sterk dat het te gronde gaat, meestal binnen drie jaar.

In het voorjaar is het aantal mijten het laagst. Tijdens de broedperiode zitten de meeste mijten in gesloten broed. Met de toename van het darrenbroed neemt ook het aantal mijten sterk toe. De voedsterbijen zijn dan sterker besmet dan de vliegbijen. In de nazomer en herfst is het aantal mijten het grootst. De meeste mijten zitten dan op de vliegbijen. In de winter sterft een deel van de mijten. Slechts een klein gedeelte van de mijten overleeft de winter. De aanwezigheid van broed in een bijenvolk is een voorwaarde voor de vermeerdering van de mijten. De ziekte wordt verspreid door vervliegen van darren en werksters, door roverij en door zwermen.

De belangrijkste manier van verspreiding gebeurt door de imker zelf: door verwisseling van besmette raten, af laten vliegen, handel en import van bijenvolken en koninginnen.

Varroabestrijding

Insecticiden die tegen de mijt kunnen worden ingezet tasten een bepaald lichaamsdeel of -proces van de mijt aan, zoals de ademhaling, het zenuwstelsel, de voortplanting of de stofwisseling. Dergelijke lichaamsdelen zijn echter vergelijkbaar met die van bijen waardoor het inzetten van insecticiden ook de bijen doodt.

De volgende methoden van varroabestrijding worden momenteel toegepast door de imkers: bestrijding met oxaalzuur, mierenzuur, thymol (deze stoffen komen ook in de natuur voor), de poedersuikerbehandeling, darrenraat wegsnijden.

En er is varroabestrijding door de bijen zelf. Honingbijen die niet in kasten wonen maar in het wild in boomholtes (en dus geen varroa bestrijding krijgen) gaan niet aan varroamijten ten onder.[2].

Sommige imkers hebben volken die jaren geen schade van de varroamijt lijken te ondervinden. Op dit moment wordt ervan uitgegaan dat bij deze volken waarschijnlijk alle overige omstandigheden optimaal zijn. De enige gedocumenteerde duurzame varroa-tolerantie bij Europese honingbijen was mogelijk door beide bloot te stellen aan de druk van natuurlijke selectie.[3] Door deze natuurlijke selectiedruk vermindert de virulentie van de varroa-mijt.

Zie ook

Bronnen, noten en/of referenties
  1. Ramsey, D. e.o. (2019) Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph. Proceedings of the National Academy of Sciences Jan 2019
  2. ( "Honey bees of the Arnot Forest: a population of feral colonies persisting with Varroa destructor in the northeastern United States." Thomas D. Seeley, Apidologie, Volume 38, Number 1, January-February 2007 http://www.apidologie.org/articles/apido/ref/2007/01/m6063/m6063.html, "Honey bee colonies that have survived Varroa destructor*" Yves Le Conte, Gérard de Vaublanc, ,DidierCrauser, François Jeanne, Jean-Claude Rousselle, Jean-Marc B´ ecard, https://web.archive.org/web/20100525091741/http://www.apidologie.org/index.php?option=article&access=standard&Itemid=129&url=%2Farticles%2Fapido%2Fpdf%2F2007%2F06%2Fm6118.pdf. "Survival of mite infested (Varroa destructor) honey bee (Apis mellifera) colonies in a Nordic climate". Ingemar Fries, Anton Imdorf and Peter Rosenkranz http://www.apidologie.org/articles/apido/pdf/2006/05/m6039.pdf
  3. (zie "Characteristics of honey bee colonies (Apis mellifera) in Sweden surviving Varroa destructor infestation, Barbara Locke & Ingemar Fries, Apidologie (2011) 42:533-542")
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Varroamijt: Brief Summary ( холандски; фламански )

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De varroamijt (Varroa destructor) is een uitwendige parasiet die voorkomt op insecten, maar zich alleen voort kan planten op het broed van honingbijen.

De mijten behoren tot de spinachtigen. In het volwassen stadium bezitten ze acht poten. Het volwassen wijfje is dwars-ovaal van vorm, roodbruin van kleur, 1,1 mm lang en 1,5 mm breed. De mijt is dus met het blote oog goed zichtbaar. De poten zitten verscholen onder het rugschild. Op de dunne huidgedeelten van de bij zuigen de mijten van het vetlichaam van de bij. Ze zitten tussen kop en borststuk en achterlijf en tussen de ringen van het achterlijf dicht bij de wasklieren.

Kort voor het sluiten van het broed, bij voorkeur het darrenbroed, dringt een varroawijfje een broedcel binnen en laat zich hierin meestal insluiten. Ze legt tegen de wand van de cel twee tot zes eitjes. In de gesloten cel voeden de jonge mijten zich met het vetlichaam van de pop. De ontwikkeling van ei tot mijt duurt zes tot tien dagen. De jonge wijfjes worden binnen de cel bevrucht. De mannetjes sterven na de paring.

De volwassen bevruchte wijfjes verlaten met de jonge werkbij of dar de cel. Ze stappen over op andere bijen. Na vier tot dertien dagen beginnen deze mijten eitjes te leggen in de cellen van de bijna volgroeide larven. De wijfjes leven in de zomer twee tot drie maanden en in de winter vijf tot acht maanden. Buiten het bijenvolk leeft de mijt niet langer dan vijf tot zeven dagen.

Door het opzuigen van het vetlichaam worden de volwassen bijen verzwakt. Door de ontstane wonden kunnen ziektekiemen binnendringen. De levensduur kan daardoor tot de helft bekort worden. De jonge mijten voeden zich in de cel met het vetlichamen van de pop. Dit gaat ten koste van diens ontwikkeling. Uit de aangetaste broedcellen komen misvormde bijen, bijvoorbeeld met een verkort achterlijf, vleugelstompjes of afwijkingen aan de poten. Door de kortere levensduur en het geringe aantal levensvatbare jonge bijen, wordt het bijenvolk sterk verzwakt, zo sterk dat het te gronde gaat, meestal binnen drie jaar.

In het voorjaar is het aantal mijten het laagst. Tijdens de broedperiode zitten de meeste mijten in gesloten broed. Met de toename van het darrenbroed neemt ook het aantal mijten sterk toe. De voedsterbijen zijn dan sterker besmet dan de vliegbijen. In de nazomer en herfst is het aantal mijten het grootst. De meeste mijten zitten dan op de vliegbijen. In de winter sterft een deel van de mijten. Slechts een klein gedeelte van de mijten overleeft de winter. De aanwezigheid van broed in een bijenvolk is een voorwaarde voor de vermeerdering van de mijten. De ziekte wordt verspreid door vervliegen van darren en werksters, door roverij en door zwermen.

De belangrijkste manier van verspreiding gebeurt door de imker zelf: door verwisseling van besmette raten, af laten vliegen, handel en import van bijenvolken en koninginnen.

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Varroa destructor ( норвешки )

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Varroamidden (Varroa destructor) er en midd som angriper honningbier.

De er omrkring 2 mm store og har en oval form.

Parede hunnmidd er utvendige parasitter som suger hemolymfe. De parasitterer både voksne bier og yngel.

De kan skape problemer for birøktere. En måte å bekjempe dem på er ved hjelp av maursyre[1].

Muligens kan noen bier bli resistente mot midden.

Referanser

  1. ^ Norges Birøkyterlag, "Sykdom og skader" http://www.norges-birokterlag.no/sykdominfo.cfm?pArticleId=13978 Besøkt 05.06.2015


Eksterne lenker

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Varroa destructor: Brief Summary ( норвешки )

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Varroamidden (Varroa destructor) er en midd som angriper honningbier.

De er omrkring 2 mm store og har en oval form.

Parede hunnmidd er utvendige parasitter som suger hemolymfe. De parasitterer både voksne bier og yngel.

De kan skape problemer for birøktere. En måte å bekjempe dem på er ved hjelp av maursyre.

Muligens kan noen bier bli resistente mot midden.

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Varroa destructor ( полски )

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Varroa destructor na larwie pszczoły miodnej

Varroa destructor (dręcz pszczeli[1]) – gatunek pajęczaka, pasożyt pszczoły miodnej i pszczoły wschodniej, wywołuje warrozę. Jest głównym szkodnikiem rodzin pszczelich przyczyniającym się do znacznych strat w pszczelarstwie. Początkowo został opisany jako Varroa jacobsoni, obecnie uważany za odrębny gatunek[2].

Jest zaliczany do pasożytów zewnętrznych, atakuje zarówno młode, jak i dorosłe pszczoły. W ciągu 2-3 lat potrafi doprowadzić do śmierci całego gniazda, jeżeli nie zastosuje się leczenia. Początkowo występował tylko w Azji, jednak obecnie jest spotykany na całym świecie, z wyłączeniem Australii i niektórych wysp Pacyfiku. Poczwarki pajęczaka odżywiają się hemolimfą pszczół. Przenosi wiele chorób wirusowych, na które sam nie choruje, a które mogą dotknąć pszczołę[3].

Przypisy

  1. JakubJ. Jaroński JakubJ., Rozmowa z profesorem Jerzym Woyke z dręczem pszczelim w tle, „Wolnopszczelarstwo” (1/2018), maj 2018, s. 8, ISSN 2544-9311 ISSN 2544-9311, Cytat: Dowiedziałem się między innymi, że pierwotnie powstała polska nazwa dla roztocza Varroa destructor: Dręcz pszczeli. Profesor jednak uważa, że brzmi ona dobrze i trochę żałuje, że się nie przyjęła. .
  2. Anderson, D & Trueman, J. W. H. (2000). "Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species." Experimental & Applied Acarology, 24, 165-189.
  3. ChristophCh. Kurze ChristophCh., JarkkoJ. Routtu JarkkoJ., Robin F.A.R.F.A. Moritz Robin F.A.R.F.A., Parasite resistance and tolerance in honeybees at the individual and social level, „Zoology”, 119 (4), SI: Host-Parasite Coevolution, 2016, s. 290–297, DOI: 10.1016/j.zool.2016.03.007 .???

Bibliografia

Zobacz też

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Varroa destructor: Brief Summary ( полски )

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 src= Varroa destructor na larwie pszczoły miodnej

Varroa destructor (dręcz pszczeli) – gatunek pajęczaka, pasożyt pszczoły miodnej i pszczoły wschodniej, wywołuje warrozę. Jest głównym szkodnikiem rodzin pszczelich przyczyniającym się do znacznych strat w pszczelarstwie. Początkowo został opisany jako Varroa jacobsoni, obecnie uważany za odrębny gatunek.

Jest zaliczany do pasożytów zewnętrznych, atakuje zarówno młode, jak i dorosłe pszczoły. W ciągu 2-3 lat potrafi doprowadzić do śmierci całego gniazda, jeżeli nie zastosuje się leczenia. Początkowo występował tylko w Azji, jednak obecnie jest spotykany na całym świecie, z wyłączeniem Australii i niektórych wysp Pacyfiku. Poczwarki pajęczaka odżywiają się hemolimfą pszczół. Przenosi wiele chorób wirusowych, na które sam nie choruje, a które mogą dotknąć pszczołę.

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Varroa destructor ( португалски )

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Micrografia de um espécime de V. destructor sobe o dorso de uma abelha doméstica.
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Ácaros Varroa sobre uma pupa de abelha.
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Varroa sobre pupas.
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Varroa destructor sobre uma larva de abelha.

Varroa destructor Anderson & Trueman, 2000, conhecido pelo nome comum de varroa, é um ácaro ectoparasita, pertencente à superordem Parasitiformes, que infesta colônias de abelhas das espécies Apis cerana e Apis mellifera, dizimando as colmeias[1] ao causar a doença chamada varroose ou varroatose.

Os ácaros Varroa destructor só se podem reproduzir em colônias de abelhas. O ácaro adere ao corpo da abelha e a enfraquece, sugando a hemolinfa. Neste processo, os vírus ARN, tais como o vírus deformador da asa, disseminam-se entre as abelhas. Uma significativa infestação do ácaro levará à morte de uma colônia de abelhas, geralmente entre o final do outono e o começo da primavera.

O ácaro Varroa é o parasita com o impacto econômico mais significativo no setor da apicultura. Pode ser um fator que contribui para a desordem do colapso da colônia, como a pesquisa mostra que é o principal fator para o distúrbio de colapso das colônias em Ontário, Canadá [2] e nos EUA.[3]

Descrição física

O ácaro adulto é de cor marrom-avermelhada; tem forma de um botão plano; é 1 - 1,8 mm de comprimento e 1,5 – 2 mm de largura; e tem oito pernas.

Reprodução, infestação e mortalidade na colmeia

Os ácaros reproduzem-se em ciclos de 10 dias. O ácaro fêmea entra em uma célula de criação de abelhas. Assim que a célula é tapada, o ácaro Varroa deposita os ovos sobre a larva. Os jovens ácaros, normalmente várias fêmeas e um macho, eclodem em aproximadamente o mesmo tempo que a jovem abelha se desenvolve e deixam a célula com o hospedeiro. Quando a nova abelha emerge a partir da célula após pupação, os ácaros Varroa também deixam e se espalham para outras abelhas e larvas. O ácaro preferencialmente infesta células de zangões, permitindo que o ácaro se reproduza uma vez mais com o extra de três dias que leva um zangão para emergir contra o tempo de uma abelha operária.

Os adultos sugam o "sangue" (hemolinfa) das abelhas adultas para o sustento, deixando feridas abertas à transmissão de vírus e doenças. As abelhas adultas comprometidas são mais propensas a infecções. Com exceção de alguma resistência nas cepas e abelhas-russas que têm a higiene sensível a Varroa (cerca de 10% das colônias, naturalmente o têm), as abelhas-europeias (Apis mellifera) são quase completamente indefesas contra esses parasitas (as abelhas-russas são de um terço a 50% menos suscetíveis à reprodução dos ácaros).[4]

O modelo para a dinâmica populacional é de crescimento exponencial quando a descendência das abelhas está disponível, e decaem exponencialmente quando nenhuma ninhada está disponível. Em 12 semanas, o número de ácaros em uma colmeia de abelhas Apis cerana pode multiplicar por (aproximadamente) 12. Populações elevadas de ácaro no outono podem causar uma crise quando a criação de zangão se cessa e os ácaros mudam para larvas de operárias, causando uma rápida redução na população e muitas vezes a morte da colmeia.

Ácaros Varroa foram encontrados em larvas "Tricia" de algumas espécies de vespas, como Vespula vulgaris, e insetos que se alimentam de flores, como a abelha Bombus pennsylvanicus, o escaravelho, Phanaeus vindex e a Palpada vinetorum.[5] O ácaro parasita larvas jovens e alimenta-se dos órgãos internos dos anfitriões. Embora o ácaro Varroa não possa se reproduzir nesses insetos, a sua presença neles pode ser um meio pelo qual ele se espalham em distâncias curtas (forese).

Introdução ao redor do mundo

Em meados de 2012, a Austrália foi considerada livre do ácaro.[10][11] No início de 2010, uma subespécie isolada de abelha foi descoberta em Cufra (sudeste da Líbia), que parece estar livre do ácaro.[12] As ilhas havaianas de Maui, Kauai, Molokai, Lanai e são todas livre do ácaro.

Identificação

Até recentemente, o V. destructor era considerado como estreitamente relacionado com uma espécie de ácaro chamado Varroa jacobsoni. Ambas as espécies parasitam a abelha asiática, Apis cerana. No entanto, a espécie inicialmente descrito como V. jacobsoni por Anthonie Cornelis Oudemans em 1904 não é da mesma espécie que também ataca Apis mellifera. O salto para A. mellifera, provavelmente, ocorreu primeiro nas Filipinas no início de 1960, onde foram importadas A. mellifera que entraram em contato próximo com a A. cerana infectada. Até 2000, os cientistas não tinham identificado V. destructor como uma espécie separada. Esta identificação tardia ocorreu em 2000 por Anderson e Trueman corrigindo alguma confusão anterior e erros de identificação na literatura científica.[13]

Controle ou medidas de prevenção e tratamento

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Abelha revestida com ácido oxálico, para proteger de ácaros

Medidas químicas

Os ácaros Varroa podem ser tratados com acaricidas disponíveis comercialmente. Os acaricidas devem ser aplicados com cuidado para minimizar a contaminação do mel que pode ser consumido por seres humanos. O uso adequado de acaricidas também retarda o desenvolvimento de resistência por parte dos ácaros.

Químicos sintéticos

Químicos de ocorrência natural

  • Ácido fórmico em vapor ou sobre tecido umedecido (afasta os ácaros)
  • Açúcar em pó ou açúcar de confeiteiro (derruba os ácaros das abelhas), alternativamente talco ou outro pó "seguro", com um tamanho de grão entre 5 e 15 μm, pode ser pulverizado sobre as abelhas. Açúcar em pó tem sido testado para o uso como uma forma de controle do Varroa. O açúcar é polvilhado entre os favos das colmeias a uma taxa de 15 g por colmeia (2 andares). O tratamento é repetido 4-6 vezes. açúcar de confeiteiro provou ser um meio eficaz de avaliação da colmeia de abelhas para a incidência de Varroa.[15] Outros vários pós, incluindo a glucose, farinha de trigo e pó de pedra foram testados, quer como um método de deteção ou controle.[16][17][18] Um teste de campo onde foi usado 15g de açúcar polvilhado entre favos de colmeias durante meados do verão, em diferentes combinações de dias e horários, resultou em uma média de queda de ácaros nas colónias tratadas entre 47 e 56 vezes maior do que as colónias de controle, embora a eficiência exata não pôde ser determinada.[19][20]
  • Óleo essencial, especialmente de limão, menta e tomilho[21]
  • Óleo essencial de neem (Azadirachta indica): O óleo de neem com um emulsificante (2%) tem sido utilizado para o controle de varroa. A substância é pulverizada a uma taxa de 400 ml por colmeia, com os quadros ligeiramente entreabertos e levemente pulverizada com óleo. O óleo de neem aplicada para as abelhas em laboratório matou 50-90% dos ácaros varroa dentro de 48 horas, com a mortalidade das abelhas menos de 10%, mas foi menos eficaz do que Apistan.[22] óleo de Neem matou 84-96% dos ácaros varroa, três vezes mais do que o grupo controle, e mais de sprays de timol ou óleo de canola, ou timol em um bloco de vermiculita. No entanto, óleo de neem resultou na perda de 50% rainha e 2/3 de perda de abelhas e 1/3 perda da crias em relação aos controles.[23] O óleo de neem foi tão eficaz como o ácido fórmico, mas não tão eficaz como Apistan(marca comercial), e reduziu as crias operculadas em colónias em 50%.[24] Ésteres de açúcar (produto Sucrocide) na aplicação por pulverização
  • Óleo de gaultheria: O óleo de gaultheria, um gênero de plantas que permanecem verdes no inverno (do inglês wintergreen), tem sido usado para controle de varroa. O óleo é pulverizado sobre caixilhos sem cria das colmeias, à taxa de 5 ml por colmeia. A evaporação de 15ml de óleo de wintergreen matou 95% dos ácaros varroa e causou 7% a mortalidade das abelhas em experimentos de laboratório. Os ensaios de campo de óleo de gaultéria pulverizado nos caixilhos, em conjunto com um tratamento térmico de 15 minutos, matou 55-82% de ácaros, com um segundo tratamento 7 dias depois, resultou na morte de 90-95% dos ácaros.[25][26] Outro ensaio usando tratamentos semelhantes resultou na mortalidade de 31% das abelhas adultas depois de 5 dias e 69% de redução nos ácaros.[20][27]
  • Ácido oxálico método de gotejamento ou aplicado como vapor.
  • Óleo Vegetal, o óleo vegetal tem sido utilizado como um controle de Varroa. A substância é administrada como gordura vegetal em um alimentador de açúcar de inverno colocada sobre os barras superiores dos caixilhos na colmeia. O óleo vegetal geralmente tem um emulsionante adicionado. O uso de óleos vegetais tem se mostrados um tratamento eficaz para o ácaro traqueal, e testes de laboratório, utilizando óleo vegetal em papel de filtro mostrou que o material era eficaz contra varroa em abelhas operárias. Os ensaios de campo, no entanto, mostraram uma taxa de mortalidade de ácaros de 38%.[28] Óleo vegetal com altos níveis de um emulsificante, seja de forma pulverizada ou administrada nos alimentadores, matou até 97% dos ácaros, mas também apresentou um efeito colateral de significativa mortalidade das abelhas (> 50%). Concentrações mais baixas de emulsionante não foram eficazes em matar ácaros.[29] Outros ensaios demonstram que a pulverização óleo de canola (solução a 20%) matou 65% da Varroa.[20][23]
  • Óleo mineral (grau alimentício) como vapor e em aplicação direta em papel ou cordas. O óleo mineral (parafínico) com um emulsionante (5% de emulsionante) tem sido usado para o controle Varroa. O material é pulverizado a uma taxa de 6-10ml de óleo por caixilho no outono, uma vez por semana durante 3 semanas.O óleo mineral com um emulsificante (a 5%) pulverizado a este ritmo resultou na mortalidade das abelhas de 97% após duas aplicações, e de mortalidade de 99,5% após três. No entanto, a mortalidade das abelhas foi significativamente maior do que nos controles, quando o óleo mineral e emulsionante foi pulverizada em favos [90].[20][30]
  • Compostos naturais de lúpulo (produto Hopguard) em tiras
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Pupa de abelha na célula do favo, atacada pelo ácaro Varroa

Métodos mecânicos, físicos e comportamentais

Ácaros Varroa também podem ser controlados através de meios não químicos. A maioria destes controles são destinados a reduzir a população de ácaros para um nível controlável, não eliminar completamente os ácaros

  • Método da tela no fundo da colmeia é usada por muitos apicultores em suas colméias. Quando ácaros ocasionalmente caem de uma abelha, eles devem subir de volta para parasitar outra abelha. Se a colmeia tem um fundo com uma tela com uma malha do tamanho certo, o ácaro ao cair não podem voltar para a colmeia. O fundo com tela também está sendo creditada com o aumento da circulação de ar, o que reduz a condensação em uma colméia durante o inverno. Estudos na Universidade de Cornell feito ao longo de dois anos descobriu que fundo com tela não têm nenhum efeito mensurável.[31] placas de fundo com tela e placas pegajosas (armadilhas de cola) separam os ácaros que se passam através da tela e a placa pegajosa impede-os de rastejar de volta. Um Insecticida também pode ser aplicado para nas placas pegajosas para ajudar a matar os ácaros.
  • Método de aquecimento, utilizado pela primeira vez pelos apicultores na Europa Oriental na década de 1970, mais tarde se tornou um método global. Neste método, os quadros colmeia são aquecidos pelo menos até 40 °C durante várias horas de cada vez, o que faz com que os ácaros caiam das abelhas.[32][33] Quando combinado com o método do fundo com tela, este pode controlar o suficiente a Varroa para a sobrevivência ajuda colônia.[32] Na Alemanha, os aquecedores antivarroa são fabricados para utilização pelos apicultores profissionais. Uma colmeia termosolar foi patenteada e fabricada na República Checa.[33][34]
  • Método de limitação da célula de cria de zangão limita o célula espaço para cria de ácaros Varroa habitarem (4,9 mm de diâmetro - cerca de 0,5 mm menor do que o padrão), e também aumenta a diferença de tamanho entre o trabalhador e ninhada zangão, com a intenção de fazer as armadilhas no favo do zangão mais eficaz na captura de ácaros Varroa. As bases para as células pequenas têm defensores ferrenhos, embora estudos controlados têm sido geralmente inconclusivos.
  • Método de limitar o favo de cria (também conhecido como método de enxame) baseia-se em interromper o ciclo de cria das abelha. É um método avançado que remove o favos de crias operculado da colmeia, onde os ácaros Varroa procriam. A rainha é confinada a um favo usando uma gaiola para favos. Em intervalos de 9 dias, a rainha é confinada em um novo favo, e a ninhada no antigo favo é deixadas de ser criadoa. A ninhada no favo anterior, agora operculado está infestada com ácaros Varroa, é removida. O ciclo é então repetido. Este método complexo pode remover até 80% dos ácaros Varroa na colmeia.[carece de fontes?]
  • Método do congelamento das crias de zangão, aproveita a preferência dos ácaros Varroa pelo tempo maior de cria dos zangões. O apicultor coloca um caixilho(quadro) de favo na colmeia que é dimensionado para incentivar a rainha para colocar ovos preferencialmente de zangões. Uma vez que as células dos favos das crias são cobertas, o apicultor retira caixilho e coloca-o no congelador. Isso mata os ácaros Varroa que alimentavam-se com estas abelhas, mas também mata as crias dos zangões, porém a maioria das colmeias produzem um excesso de abelhas zangões, então, isso geralmente não é considerada uma perda. Após o congelamento, o caixilho(quadro) pode ser devolvido à colmeia. As abelhas enfermeiras irão limpar das células do favo os zangões mortos (e ácaros mortos) e o ciclo continua.
  • Método da eliminação das crias de zangão é uma variação aplicável as colmeias barras no topo onde as abelhas tendem a colocar favos adequados para cria de zangão ao longo das margens inferiores e exteriores dos favos. Cortar estas partes fora em um estágio de desenvolvimento tardio ("estágio do olho roxo olho") e descartá-las reduz a carga de ácaros na colônia. Este também permite a inspeção e contagem de ácaros na crias.

Engenharia genética

Os pesquisadores foram capazes de usar a interferência de RNA para desativar genes no ácaro Varroa. Também houve esforços para produzir por mudanças nas abelhas. Duas linhagens foram desenvolvidos nos Estados Unidos que podem detectadar pupas atacadas sob opérculos e removê-las da colmeia antes que a infestação se espalhe ainda mais.[35][36] Outra linhagem está em desenvolvimento que pode reconhecer mais facilmente o adulto Varroa forético para que sejam preparados e removidos da colmeia.

Ver também

Referências

  1. Terra: Cientistas acham abelhas isoladas por 5 mil anos no Saara
  2. Ernesto Guzmán-Novoa, Leslie Eccles, Yireli Calvete, Janine Mcgowan, Paul G. Kelly & Adriana Correa-Benítez (2009). «Varroa destructor is the main culprit for the death and reduced populations of overwintered honey bee (Apis mellifera) colonies in Ontario, Canada» (PDF). Apidologie. 41 (4): 443–450. doi:10.1051/apido/2009076 !CS1 manut: Nomes múltiplos: lista de autores (link)
  3. Welsh, Jennifer (7 June 2012) Mites and Virus Team Up to Wipe Out Beehives Live Science, Retrieved 11 June 2012
  4. J. Raloff (8 de agosto de 1998). «Russian queens bee-little mites' impact». Science News. 154 (6): 84
  5. Peter G. Kevan, Terence M. Laverty & Harold A. Denmark (1990). «Association of Varroa jacobsoni with organisms other than honeybees and implications for its dispersal». Bee World. 71 (3): 119–121
  6. Helen M. Thompson, Michael A. Brown, Richard F. Ball & Medwin H. Bew (2002). «First report of Varroa destructor resistance to pyrethroids in the UK» (PDF). Apidologie. 33 (4): 357–366. doi:10.1051/apido:2002027 !CS1 manut: Nomes múltiplos: lista de autores (link)
  7. «Varroa Mite, Varroa destructor». MAF Biosecurity New Zealand. 30 de junho de 2009. Consultado em 24 de fevereiro de 2011. Arquivado do original em 29 de dezembro de 2010
  8. Nina Wu (25 de abril de 2007). «Bee mites have spread on Oahu». Honolulu Star-Bulletin. Consultado em 24 de fevereiro de 2011
  9. «Varroa Mite Information». State of Hawaii. 2013. Consultado em 9 de dezembro de 2013
  10. Holland, Malcolm (26 de junho de 2012). «Varroa mites could devastate our honeybee industry». The Sydney Morning Herald. Consultado em 26 de junho de 2012
  11. Jopson, Debra (18 de agosto de 2010). «It's a bee nuisance – and food growers are more than a mite scared». The Sydney Morning Herald. Consultado em 20 de junho de 2012
  12. «Honigbienenart in der Sahara entdeckt» [Honey bee species discovered in the Sahara] (em alemão). Die Zeit. Julho de 2010. Consultado em 24 de fevereiro de 2011
  13. D. L. Anderson & J. W. H. Trueman (2000). «Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species». Experimental and Applied Acarology. 24 (3): 165–189. PMID 11108385. doi:10.1023/A:1006456720416
  14. Mark Ward (8 de março de 2006). «Almond farmers seek healthy bees». BBC News. Consultado em 2 de maio de 2009
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  16. Ramierz, W (1987). «VII Brazil Congress: the latest on Varroa jacobsoni». Newsletter for Beekeepers in Tropical and Substropical Countries: 10: 11
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  21. Natalia Damiani, Liesel B. Gende, Pedro Bailac, Jorge A. Marcangeli & Martín J. Eguaras (2009). «Acaricidal and insecticidal activity of essential oils on Varroa destructor (Acari: Varroidae) and Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae)». Parasitology Research. 106 (1): 145–152. PMID 19795133. doi:10.1007/s00436-009-1639-y !CS1 manut: Nomes múltiplos: lista de autores (link)
  22. Melathopoulos, A; Winston, M; Whittington, R; Smith, T; Lindberg, C; Mukai, A; Moore (2000). «Comparative laboratory toxicity of neem pesticides to honey bees, their mite parasites Varroa jacobsoni and Acarapis woodi and brood pathogens Paenibacillus larvae and Ascophaera apis». Journal of Economic Entomology. 93 (2): 199-209 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  23. a b Whittington, R; Winston, M; Melathopoulos, A; Higo, H (2000). «Evaluation of the botanical oils neem, thymol and canola sprayed to control Varroa jacobsoni and Acarapis woodi in colonies of honey bees». American Bee Journal. 140 (7): 567-572 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  24. Melathopoulos, A; Winston, M; Whittington, R; Higo, H; Le Doux, M (2000). «Field evaluation of neem and canola oil for the selective control of the honey bee mite parasites Varroa jacobsoni and Acarapis woodi». Journal of Economic Entomology. 93 (3): 559-567 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  25. Hoppe, H; Ritter, W (1989). «Use of heat and wintergreen oil for treatment of varroatosis». Tierarztliche Umschau. 44 (11): 712, 715-717. A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  26. Hoppe, H (1990). «Control of Varroa with a Thermal Treatment in Combination with Wintergreen Oil. Dissertation». Giessen, Germany. Justus Liebig University
  27. Bunsen, J D (1992). «Experimental Studies on the Control of the Mite Varroa jacobsoni Oud, an Ectoparasite of the Honey Bee (Apis mellifera L.), with Materials of Natural Origin Dissertation». Giessen, Germany: Justus-Liebig University
  28. Kraus, B; Page, R E, Jr (1995). «Effect of vegetable oil on Varroa jacobsoni and honey bee colonies». Bee Science. 3 (4): 157-161 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  29. Brodsgaard, C; Kristiansen, P; Hansen, H (1994). «Efficacy of vegetable oils as 'soft chemical' acaricides against Varroa jacobsoni infesting honey bees». Acarology IX International Congress of Acarology. 1: 1-5..27 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  30. Le Conte, Y; Colin, M; Paris, A; Crauser, D (1998). «Oil spraying as a potential control of Varroa jacobsoni. Research». Journal of Apicultural. 37 (4): 293-294..31 A referência emprega parâmetros obsoletos |coautores= (ajuda)
  31. «Northeast Beekeeper» (PDF) Vol 1 #1 Jan 2004)
  32. a b John R. Harbo (2000). «Heating Adult Honey Bees to Remove Varroa jacobsoni» (PDF). Journal of Apicultural Research. 39 (3-4): 181–183
  33. a b http://www.reuters.com/article/2015/05/28/us-czech-bees-idUSKBN0OD20S20150528
  34. application
  35. «A Sustainable Approach to Controlling Honey Bee Diseases and Varroa Mites». SARE. Consultado em 18 de novembro de 2008
  36. Victoria Gill (22 de dezembro de 2010). «Genetic weapon developed against honeybee-killer». BBC News. Consultado em 24 de fevereiro de 2011

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Varroa destructor: Brief Summary ( португалски )

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 src= Micrografia de um espécime de V. destructor sobe o dorso de uma abelha doméstica.  src= Ácaros Varroa sobre uma pupa de abelha.  src= Varroa sobre pupas.  src= Varroa destructor sobre uma larva de abelha.

Varroa destructor Anderson & Trueman, 2000, conhecido pelo nome comum de varroa, é um ácaro ectoparasita, pertencente à superordem Parasitiformes, que infesta colônias de abelhas das espécies Apis cerana e Apis mellifera, dizimando as colmeias ao causar a doença chamada varroose ou varroatose.

Os ácaros Varroa destructor só se podem reproduzir em colônias de abelhas. O ácaro adere ao corpo da abelha e a enfraquece, sugando a hemolinfa. Neste processo, os vírus ARN, tais como o vírus deformador da asa, disseminam-se entre as abelhas. Uma significativa infestação do ácaro levará à morte de uma colônia de abelhas, geralmente entre o final do outono e o começo da primavera.

O ácaro Varroa é o parasita com o impacto econômico mais significativo no setor da apicultura. Pode ser um fator que contribui para a desordem do colapso da colônia, como a pesquisa mostra que é o principal fator para o distúrbio de colapso das colônias em Ontário, Canadá e nos EUA.

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Varroa destructor ( романски; молдавски )

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Varroa destructor (Anderson & Trueman) este un parazit acarian extern care atacă albinele melifere din speciile Apis cerana și Apis mellifera. A fost descris ca Varroa jacobsoni de către Oudemas din insula Java în 1904. Numele Varroa destructor a fost dat de către Anderson și Trueman în anul 2000, după ce au studiat secvențe din gena mtDNA Co-I și caracteristicile morfologice ale mai multor populații de Varroa jacobsoni din lume. Acarianul era cunoscut printre oamenii de știință cu numele de Varroa jacobsoni (Oudemans 1984), care nu poate fi întâlnit decât în sud-estul Asiei, în țări ca Malaezia sau Indonezia, unde atacă albinele melifere din specia Apis cerana.
Acarienii Varroa au fost descoperiți pe insecte care se hrănesc cu nectar și polen adunate din flori, cum ar fi bondarul (Bombus pennsylvanicus), gândacul scarabeu (Phanaeus vindex) și Palpada vinetorum (Kevan et al. 1990).
Varroa este parazit cu impact economic cel mai negativ asupra industriei apicole.

Descriere

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Acarian pe pupa albinei

Acarienii adulți au o culoare roșie-brună, corpul plat, buton. Lungimea corpului este cuprinsă între 1-1,8 mm, iar lățimea între1,5–2 mm. Femelele sunt mai închise la culoare decît masculii. Chelicerele masculilor sunt adaptate pentru transferul de spermă.

Reproducere

Femela depune ouăle în fagurii cu ouăle de albină. De obicei, din ponta depusă apar mai multe femele și un mascul. Juvenilii acarianului se eclozează împreună cu dezvoltarea albinei tinere. Când albina devine matură, ea iese din fagure deja parazitată de acarieni. Durata de dezvoltare a acrienilor Varroa durează circa 10 zile. Deși acesta parazitează și alte insecte, se reproduce doar pe albine.

Modul de viață

Adulți se hrănesc cu sângele (hemolimfa) albinelor. Aceasta duce la slăbirea celor din urmă. În urma infestării albinei, acarianul lasă răni deschise predispunând-o la infecții. Cu excepția unei varietăți rusești, toate albinele europene sunt lipsite de apărare contra acestuia. În plus, Varroa destructor este transmițătorul virusului deformării aripilor. Astfel, colonia de albine poate să piară.

Distribuție

Varroa a fost găsit pentru prima dată în Indonezia, în 1904 de către Oudemans. În România a fost descoperit de Örösi-Pal în 1975. În Germania, Varroa a fost adus în 1977, când Institutul apicol Oberursel a început un studiu asupra albinelor melifere asiatice (Apis cerana).

Vezi și

Legături externe

Commons
Wikimedia Commons conține materiale multimedia legate de Varroa destructor


v d m
Apicultură Matcă Albine lucrătoare
și trântori Albină europeană Ciclul biologic Produse apicole Bolile albinei
melifere
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Varroa destructor (Anderson & Trueman) este un parazit acarian extern care atacă albinele melifere din speciile Apis cerana și Apis mellifera. A fost descris ca Varroa jacobsoni de către Oudemas din insula Java în 1904. Numele Varroa destructor a fost dat de către Anderson și Trueman în anul 2000, după ce au studiat secvențe din gena mtDNA Co-I și caracteristicile morfologice ale mai multor populații de Varroa jacobsoni din lume. Acarianul era cunoscut printre oamenii de știință cu numele de Varroa jacobsoni (Oudemans 1984), care nu poate fi întâlnit decât în sud-estul Asiei, în țări ca Malaezia sau Indonezia, unde atacă albinele melifere din specia Apis cerana.
Acarienii Varroa au fost descoperiți pe insecte care se hrănesc cu nectar și polen adunate din flori, cum ar fi bondarul (Bombus pennsylvanicus), gândacul scarabeu (Phanaeus vindex) și Palpada vinetorum (Kevan et al. 1990).
Varroa este parazit cu impact economic cel mai negativ asupra industriei apicole.

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Varroa destructor ( шпански; кастиљски )

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Varroa destructor je zajedavska pršica, ki napada medonosne čebele. Na čebele in njihove ličinke se te pršice prisesajo podobno kot klopi na toplokrvne živali in jim srkajo hemolimfo. S tem izčrpavajo odrasle živali, ki lahko zaradi izčrpanosti umrejo.

Opis

Odrasle pršice so kroglaste oblike in imajo štiri pare kratkih nožic. Samice so rdečkasto rjave barve, samci pa so beli. Samci dosežejo v dolžino manj kot milimeter, samice pa lahko v dolžino dosežejo do 2 mm, v širino pa od 1,5 do 2 mm. Na čebelah parazitirajo le samice, samci po parjenju poginejo. Prvi par nog uporabljajo samice za tipanje, saj je na njih organ za zaznavanje vonja, preostale pa uporabljajo za gibanje. Na spodnji strani vsake nožice ima samica organ, s katerim se prisesa na čebelje telo, z ustnim aparatom pa nato prebodejo hitin čebeljega telesa. Odrasle samice lahko prehajajo s čebele na čebelo, vendar pa so odrasle čebele le vmesne gostiteljice v času, ko ni zalege. Ko čebela umre, jo parazit zapusti.[1]

Mnogo čebel dobi eno ali več varoj, še preden se izleže, saj samica pršice namreč zaleze v celico s čebeljo ličinko, dokler je ta še odprta. Brž ko jo delavke pokrijejo s pokrovčkom, izleže nanjo več jajčec. Celoten razvojni krog varoj v pokriti zalegi traja deset dni. Običajno se izleže nekaj samic in en samec varoje hkrati z mlado čebelo.[1]

Širitev po svetu

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Varroa destructor na ličinki čebele

Varoje so se v Evropo in v druge dele sveta v sedemdesetih letih 20. stoletja razširile iz Indonezije kot posledica trgovanja s čebelami. V Slovenijo naj bi varoje prišle okoli leta 1978[2] iz Sovjetske zveze, kjer pa so čebele bolj odporne na varojo in so proti njim evolucijsko vzpostavile obrambne mehanizme, jih evropske ne prepoznavajo kot parazite.[3]

do sredine leta 2012 naj varoja v Avstraliji še ne bi bila prisotna.[8][9] V začetku leta 2010 je bila v Kufri, v Libiji odkrita podvrsta čebele, ki naj bi bila odporna na varojo.[10]

Zatiranje

Za zatiranje varoje se uporabljajo akaricidi. Uporablja se tako sintetične akaricide kot tudi naravne spojine, med katere sodijo organske kisline, ki jih vsebuje tudi med. Najpogosteje so to oksalna, mravljična in mlečna kislina. Uporabljajo se tudi eterična olja, med katerimi naj bi bila najbolj učinkovita olje materine dušice in evkaliptovo olje. Ekološko čebelarjenje dopušča tako uporabo organskih kislin, kot tudi rastlinskih eteričnih olj. Za vse postopke je odločilno ukrepanje ob točno določenem času, ob uporabi sintetičnih akaricidov pa je potrebno še posebej paziti, saj se lahko pri nepravilni in prepogosti uporabi pri varojah pojavi rezistenca nanje. V Sloveniji so registrirane učinkovine za zatiranje varoje amitraz, kumafos, flumetrin in tau-fluvilinat.[2]

Reference

  1. 1,0 1,1 Julijana Bavčar (23. december 2015). "Kaj so varoje". Delo. Pridobljeno dne 18. januarja 2017.
  2. 2,0 2,1 Julijana Bavčar (22. december 2015). "Zakaj je treba zdraviti čebele". Delo. Pridobljeno dne 18. januarja 2017.
  3. J. Raloff (August 8, 1998). "Russian queens bee-little mites' impact" 154 (6). Science News: 84.
  4. Helen M. Thompson; Michael A. Brown; Richard F. Ball; Medwin H. Bew (2002). "First report of Varroa destructor resistance to pyrethroids in the UK" (PDF). Apidologie 33 (4): 357–366. doi:10.1051/apido:2002027.
  5. "Varroa Mite, Varroa destructor". MAF Biosecurity New Zealand. 30. junij 2009. Pridobljeno dne 24. februarja 2011.
  6. Nina Wu (25. april 2007). "Bee mites have spread on Oahu". Honolulu Star-Bulletin. Pridobljeno dne 24. februarja 2011.
  7. "Varroa Mite Information". State of Hawaii. 2013. Pridobljeno dne 9. decembra 2013.
  8. Holland, Malcolm (26. junij 2012). "Varroa mites could devastate our honeybee industry". The Sydney Morning Herald. Pridobljeno dne 26. junija 2012.
  9. Jopson, Debra (18. avgust 2010). "It's a bee nuisance – and food growers are more than a mite scared". The Sydney Morning Herald. Pridobljeno dne 20. junija 2012.
  10. "Honigbienenart in der Sahara entdeckt" [Honey bee species discovered in the Sahara] (nemščina). Die Zeit. July 2010. Pridobljeno dne 24. februarja 2011.
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Varroa destructor: Brief Summary ( шпански; кастиљски )

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Varroa destructor je zajedavska pršica, ki napada medonosne čebele. Na čebele in njihove ličinke se te pršice prisesajo podobno kot klopi na toplokrvne živali in jim srkajo hemolimfo. S tem izčrpavajo odrasle živali, ki lahko zaradi izčrpanosti umrejo.

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Varroa destructor ( шведски )

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Varroa destructor[1] är en spindeldjursart (ett kvalster[2]) som beskrevs av Anderson och Trueman 2000. Varroa destructor ingår i släktet Varroa, och familjen Varroidae.[1][3] Inga underarter finns listade.[1]

Honan är som vuxen rödbrun och knappa två millimeter stor.[2]

Varroakvalstret parasiterar på bin, både vuxna bin och yngel. Det lever av binas blodvätska (hemolyfta). För fortplantning kryper honan ner i en yngelcell innan bina täcker över den med vaxlock. Inne i yngelcellen sker parning och äggläggning och då det vuxna biet kryper ut följer honan och hennes nu vuxna honliga avkomma med, medan hannen och outvecklade stadier av honavkomma dör.[2]

Kvalstren förökar sig snabbt. De kan fördubblas på ungefär tre veckor under fortplantningstiden. I medeltal ökar mängden kvalster i ett tambisamhälle till det tiodubbla under ett år. Det europeiska honungsbiet klarar inte att leva med eller befria sig från kvalstren utan ett infekterat samhälle dukar under på några år.[2]

En del av de angripna bina blir synligt skadade, med outvecklade vingar och förkrympta bakkroppar. För att upptäcka skadade bisamhällen kan man också söka efter kvalster i det material som faller ner till bikupans botten (ett särskilt varroainlägg underlättar detta).[2]

I bland annat Sverige (i områden där kvalstren inte tidigare påträffats; se SJVFS 2012:19)[2] och Finland bör upptäckt av varroakvalster anmälas enligt lag.


Bildgalleri

Källor

  1. ^ [a b c] Bisby F.A., Roskov Y.R., Orrell T.M., Nicolson D., Paglinawan L.E., Bailly N., Kirk P.M., Bourgoin T., Baillargeon G., Ouvrard D. (red.) (5 april 2011). ”Species 2000 & ITIS Catalogue of Life: 2011 Annual Checklist.”. Species 2000: Reading, UK. Arkiverad från originalet den 18 juni 2012. https://web.archive.org/web/20120618223324/http://www.catalogueoflife.org/services/res/2011AC_26July.zip. Läst 24 september 2012.
  2. ^ [a b c d e f] ”Varroa”. Biodlarna. Arkiverad från originalet den 25 december 2012. https://web.archive.org/web/20121225094551/http://www.biodlarna.se/website1/1.0.1.0/36/1/. Läst 3 april 2013.
  3. ^ NZIB: New Zealand Inventory of Biodiversity. Gordon D. (ed), 2009-06-12

Externa länkar

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Varroa destructor: Brief Summary ( шведски )

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Varroa destructor är en spindeldjursart (ett kvalster) som beskrevs av Anderson och Trueman 2000. Varroa destructor ingår i släktet Varroa, och familjen Varroidae. Inga underarter finns listade.

Honan är som vuxen rödbrun och knappa två millimeter stor.

Varroakvalstret parasiterar på bin, både vuxna bin och yngel. Det lever av binas blodvätska (hemolyfta). För fortplantning kryper honan ner i en yngelcell innan bina täcker över den med vaxlock. Inne i yngelcellen sker parning och äggläggning och då det vuxna biet kryper ut följer honan och hennes nu vuxna honliga avkomma med, medan hannen och outvecklade stadier av honavkomma dör.

Kvalstren förökar sig snabbt. De kan fördubblas på ungefär tre veckor under fortplantningstiden. I medeltal ökar mängden kvalster i ett tambisamhälle till det tiodubbla under ett år. Det europeiska honungsbiet klarar inte att leva med eller befria sig från kvalstren utan ett infekterat samhälle dukar under på några år.

En del av de angripna bina blir synligt skadade, med outvecklade vingar och förkrympta bakkroppar. För att upptäcka skadade bisamhällen kan man också söka efter kvalster i det material som faller ner till bikupans botten (ett särskilt varroainlägg underlättar detta).

I bland annat Sverige (i områden där kvalstren inte tidigare påträffats; se SJVFS 2012:19) och Finland bör upptäckt av varroakvalster anmälas enligt lag.


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Varroa destructor ( руски )

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Клещи Varroa destructor на куколке пчелы

Varroa destructor (лат.) — вид опасных паразитических клещей рода варроа, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл. Долгое время ошибочно классифицировался как Varroa jacobsoni Oudemans, 1904, пока в 2000 году в результате изучения митохондриальной ДНК не был выделен в самостоятельный вид[1]. Вызывает варроатоз как у китайской восковой пчелы (Apis cerana), так и у обыкновенной медоносной пчелы (Apis mellifera)[2].

Описание

Космополитный инвазивный вид, расселившийся в результате торговли или обмена маточным материалом среди пчеловодов. Впервые был обнаружен в Южной Азии, в 1970-х годах достиг Западной Европы и Южной Америки, а в 1980-х годах добрался до США. В результате, распространился почти по всему миру (кроме Австралии), нанося при этом серьёзный ущерб пчеловодству. Сегодня можно предположить, что все колонии медоносных пчел в местах распространения клеща Varroa destructor заражены им. Вследствие этого неоднократно отмечалась массовая гибель пчёл в различных странах мира[3].

Самка имеет овальное сплющенное тело оранжево-коричневого цвета шириной 1,8 мм (1,50—1,99) и длиной около 1 мм (1,00—1,77); 8 ног[4]. Тело самца мягкое, молочно-белого цвета и меньше, чем у самки. Самки живут в течение года, самцы — 15—20 дней. Перезимовавшие на теле пчелы самки с появлением в гнезде расплода откладывают на внутренних стенках ячеек с личинками по 4—8 яиц. Примерно через 2 дня из отложенных яиц вылупляются личинки. Взрослые клещи паразитируют на взрослых пчёлах и личинках, питаясь их гемолимфой[5], заражая, в том числе, и африканизированную пчелу[6]. При этом для дефекации клещи предпочитают заднюю часть ячейки[7]. В экспериментальных условиях обнаружено, что клещи Varroa destructor могут заражать ячейки всех каст (с личинками маток, трутней и рабочих), но предпочитают ячейки трутней[8].

В результате молекулярно-генетических исследований виновными в гибели американских пчёл признаны варроатозные европейские пчёлы. В результате торговли ими в США и Новую Зеландию завозится и распространяется клещ Varroa destructor. В некоторых штатах США в 2014—2015 годах погибло более 60 % семей медоносных пчёл, разводимых американскими фермерами[9][10].

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    Varroa destructor, вид сверху и спереди.

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    Varroa destructor, вид снизу.

Примечания

  1. 1 2 Anderson, D.; Trueman, J. W. H. (2000). Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) is more than one species. — Experimental and applied acarology, 24(3): 165—189.
  2. Zhou, T.; Anderson, D. L.; Huang, Z. Y.; Huang, S.; Yao, J.; Ken, T.; Zhang, Q. (2004). Identification of Varroa mites (Acari: Varroidae) infesting Apis cerana and Apis mellifera in China. Архивировано 16 декабря 2007 года. — Apidologie, 35: 645—654.
  3. Encyclopedia of Life: Varroa destructor, Varroa Honeybee Mite
  4. [http://www.issg.org/database/species/ecology.asp?si=478&fr=1&sts= Global Invasive Species Database (GISD)
  5. Нуждин А. С. Пчёлы: Улей и пасека. — М.: Колос, 1997. — 302 с. [8]л. ил. — ISBN 5-10-003356-8
  6. Moretto G., Leonidas J. (2003). Infestation and distribution of the mite Varroa destructor in colonies of Africanized bees. — Braz. J. Biol. 63:83-86
  7. Calderón Rafael A., Guisella Chaves, Luis A. Sánchez, Rolando Calderón. (2012). Observation of Varroa destructor behavior in capped worker brood of Africanized honey bees. — Experimental and Applied Acarology. November 2012, Volume 58, Issue 3, pp. 279—290
  8. Santillan-Galicia M., Otero-Colina G., Romero-Vera C., Cibrian-Tovar J. (2002). Varroa destructor (Acari: Varroidae) infestation in queen, worker, and drone brood of Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). — Canadian Entomologist 134:381-390
  9. Helen Briggs. Spread of bee disease 'largely manmade' (англ.). Science & Environment. Bbc.com (5 February 2016). Проверено 7 февраля 2016.
  10. В гибели пчел в США обвинили Европу (рус.). Lenta.ru (7 февраля 2016). Проверено 7 февраля 2016.
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Varroa destructor: Brief Summary ( руски )

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 src= Клещи Varroa destructor на куколке пчелы

Varroa destructor (лат.) — вид опасных паразитических клещей рода варроа, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл. Долгое время ошибочно классифицировался как Varroa jacobsoni Oudemans, 1904, пока в 2000 году в результате изучения митохондриальной ДНК не был выделен в самостоятельный вид. Вызывает варроатоз как у китайской восковой пчелы (Apis cerana), так и у обыкновенной медоносной пчелы (Apis mellifera).

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瓦螨 ( кинески )

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二名法 Varroa destructor
Anderson & Trueman, 2000
 src=
低溫掃描電子顯微鏡(LTSEM)下的瓦螨
 src=
瓦蟎對蛹
 src=
瓦蟎破壞蜂幼蟲

瓦螨(Varroa destructor)是蜜蜂的体外寄生虫,卵圆扁平,红棕色,长1-1.2毫米,严重危害世界各地的西方蜜蜂(Apis mellifera)。瓦螨不但寄生在成蜂或幼虫上吸食体液,使其寿命缩短,而且还传播各种病毒和病菌。

東方蜜蜂(Apis cerana)在自然界中是瓦螨的原始寄主,有抗螨机制:咬断瓦螨的肢体,使其因失去体液而死亡。因此,東方蜜蜂不受到伤害。西方蜜蜂被引入東方蜜蜂原始產地,使瓦螨轉移至西方蜜蜂寄生,進而傳播至全世界,對養蜂業造成嚴重的危害。

參考資料

  1. ^ 1.0 1.1 1.2 1.3 1.4 1.5 FRÉDÉRIC BEAULIEU, ASHLEY P.G. DOWLING, HANS KLOMPEN, GILBERTO J. DE MORAES & DAVID EVANS WALTER. Superorder Parasitiformes Reuter, 1909 (PDF). (编) Zhang, Z.-Q. Animal biodiversity: An outline of higher-level classification and survey of taxonomic richness (PDF). Zootaxa (Magnolia Press). 2011: 123–128. ISBN 978-1-86977-850-7. ISSN 1175-5334 (英语).
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 src= 低溫掃描電子顯微鏡(LTSEM)下的瓦螨  src= 瓦蟎對蛹  src= 瓦蟎破壞蜂幼蟲

瓦螨(Varroa destructor)是蜜蜂的体外寄生虫,卵圆扁平,红棕色,长1-1.2毫米,严重危害世界各地的西方蜜蜂(Apis mellifera)。瓦螨不但寄生在成蜂或幼虫上吸食体液,使其寿命缩短,而且还传播各种病毒和病菌。

東方蜜蜂(Apis cerana)在自然界中是瓦螨的原始寄主,有抗螨机制:咬断瓦螨的肢体,使其因失去体液而死亡。因此,東方蜜蜂不受到伤害。西方蜜蜂被引入東方蜜蜂原始產地,使瓦螨轉移至西方蜜蜂寄生,進而傳播至全世界,對養蜂業造成嚴重的危害。

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