dcsimg
Sivun leväkotilo kuva
Life » » Metazoa » » Nilviäiset » Kotilot » » Neritidae »

Leväkotilo

Theodoxus fluviatilis (Linnaeus 1758)

Nimetön ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

There are two subspecies, one freshwater and one saltwater. This freshwater form is called Theodoxus fluviatilis fluviatilis, while the salt-water species is known as Theodoxus fluviatilis littoralis. The freshwater species can survive in up to 1.5% saltwater concentrations, while the saltwater species can survive in up to 18% saltwater. Their ability to survive in both fresh and salt waters allowed for its adaption to different salt water concentrations.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Distribution ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis is considered holarctic, occurring in both the Nearctic and Palearctic biogeographic regions. However, they are more commonly seen in the Palearctic region, spreading far west to England, and east into southwestern Asia. Many patches within Europe are uninhabited, mainly the mountainous regions. This snail's ability to survive in freshwater allowed for migration throughout Eastern Europe, and later re-entry into the brackish waters of the Baltic Sea.

Biogeographic Regions: nearctic (Introduced ); palearctic (Native )

Other Geographic Terms: holarctic

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Trophic Strategy ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

As Theodoxus fluviatilis is an herbivore and a detritivore, it mainly feeds on phytoplankton (mainly diatoms), but also feeds on detritus and a variety of algae. Its radula is specialized to grind even the hardest phytoplankton, making it easier to digest. Detritus is the organic material that comes from dead or decomposing plants or animals. While developing, the larva will feed within the egg capsule.

Plant Foods: algae; phytoplankton

Other Foods: detritus

Foraging Behavior: filter-feeding

Primary Diet: herbivore (Algivore); detritivore

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Associations ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis plays an important role for the health and maintenance of large structuring macrophytes. They aid the growth of the perennial brown alga, Fucus vesiculosus. While other grazers inhibit the ability of Fucus to uptake nitrogen, T. fluviatilis does not, and thus aids in the growth of the algae. Not much is known about their symbiotic relationships with other animals.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Benefits ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

There are no known positive effects of Theodoxus fluviatilis on humans.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Benefits ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

There are no known adverse effects of Theodoxus fluviatilis on humans.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Life Cycle ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis develops in a similar manner as most other gastropods, however, the snail develops within the egg, so there is no larval form. The shell forms as the egg is developing. Initially, the mouth is anterior and the anus is posterior. However, after a process known as torsion, the positions of the body parts change.

Torsion involves two steps, each being a 90 degree rotation. The first rotation is caused by a contraction of the foot retractor muscle. It rotates the shell and visceral mass 90-degrees counterclockwise, leaving the anus on the right side of the body. The second rotation is caused by further development of differentiating tissues. This allows for the mantle cavity to develop near the anus and an additional 90-degree rotation, placing the anus directly above the head and mouth.

The positioning of the anus above the head would normally result in sanitary problems, with wastes washing directly over the gills. However, this is resolved by another process known as coiling. Coiling is not the same as torsion, however it can occur at the same time in development as torsion. Coiling of the shell and visceral mass allow for the loss of the gill, auricle, and kidney, all on the right side of the mantle cavity, and thus allow the snails to avoid sanitation problems. Since the water-flow through the mantle cavity is unidirectional, it flows into the left side and out of the right side, carrying with it wastes from the anus, which is near the right side. The single gill on the left side is then exposed only to clean water, avoiding any such sanitation problems. Once eggs hatch, they are considered miniature adults and take 18 months to fully mature into adult snails.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Conservation Status ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis are considered extinct in the Czech Republic. They are also endangered in Switzerland and Latvia, and considered in jeopardy in other European countries including the Netherlands and Slovenia. They are also protected under law in Latvia.

US Federal List: no special status

CITES: no special status

State of Michigan List: no special status

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Behavior ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Like many other gastropods, Theodoxus fluviatilis has a well-developed nervous system. Sense organs include eyes, statocysts, tactile organs, and chemoreceptors. Statocysts are fluid-filled cellular cysts used to sense direction of gravity, and thus sense equilibrium. Chemoreceptors are used to detect chemical stimuli. The snails also have a pair of eyes, each located at the end of their antennae that give them a visual sense perception of their habitat. Thus, they see their environment, sense movement, and also sense their state of balance.

Communication Channels: visual ; tactile ; chemical

Perception Channels: visual ; tactile ; chemical

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Habitat ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Commonly known as the river nerite, Theodoxus fluviatilis was first discovered in saltwater, originating in the Black Sea. Currently this species is mainly found in freshwater streams and rivers. The river nerite is also found along coastal regions of the Black and Baltic Seas, and also lives in estuaries, regions where freshwater rivers meet saltwater seas. Within this habitat, it lives on hard benthic substrates, typically rocks and submerged wood, and in calcium-rich waters. Theodoxus fluviatilis also lives as deep as 60 meters below the surface, and is sometimes found no higher than a centimeter above the water surface.

Average elevation: .01 m.

Range depth: 0 to 60 m.

Habitat Regions: temperate ; saltwater or marine ; freshwater

Aquatic Biomes: benthic ; lakes and ponds; rivers and streams; coastal ; brackish water

Other Habitat Features: estuarine

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Life Expectancy ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis lives in nature for approximately two to three years. Longevity in an aquarium kept at room temperature has been recorded as two years.

Range lifespan
Status: wild:
3.5 (high) years.

Range lifespan
Status: captivity:
2 (high) years.

Typical lifespan
Status: wild:
2 to 3 years.

Average lifespan
Status: captivity:
2 years.

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Morphology ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Although difficult to distinguish between different species of Theodoxus, Theodoxus fluviatilis has a few main morphological features used for identification. These include size, color patterns of the periostracum, the operculum and the radula. The common river nerite has a soft-tissued body encased within a round, calcareous shell. This species is known to absorb the inner walls of the shell, thus allowing for a more spacious environment inside the shell. This absorption may allow more room for their food intake. The operculum, a hard, proteinaceous plate protecting the body when fully retracted within the shell, is light red with broad ribs. The margin of the operculum is red.

The species has an average mass of 50 mg, an average shell length of 9 mm, and an average shell width of 6 mm. The different specimens, marine and freshwater, show some morphological variances. Freshwater specimens tend to be larger and thicker than the marine forms. Freshwater specimens also have a yellowish-green color, while marine forms are mostly black. Since they are dioecious, the male and female sexes are separate. Both have reproductive organs. The male's penis is located on the right side of their body, near the base. The female reproductive organs are located inside the mantle cavity. Within the mantle cavity, females have two openings, one for fertilization and the other for discharging their eggs.

Range mass: .025 to .345 g.

Average mass: .050 g.

Average length: 9 mm.

Average wingspan: 6 mm.

Range basal metabolic rate: 1 to 8 cm3.O2/g/hr.

Average basal metabolic rate: 5 cm3.O2/g/hr.

Other Physical Features: ectothermic ; heterothermic ; bilateral symmetry

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Associations ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Because their hard calcareous shell completely covers their body, most predators avoid Theodoxus fluviatilis as a potential food source. Their eggshells are also calcified and hardened, thus protecting them when predators attack. However, a few known predators include the European perch, Perca flavescens, as well as two crayfishes, Orconectes limosus and Astacus astacus. These animals have adaptations that allow them to break through the snails' calcareous shell. Orconectes limosus, endemic to North America, is an invasive species in Europe.

Known Predators:

  • European perch, Perca flavescens
  • Spiny-cheek crayfish, Orconectes limosus
  • European crayfish, Astacus astacus
lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Reproduction ( englanti )

tarjonnut Animal Diversity Web

Theodoxus fluviatilis reproduces between April and October. These snails have separate sexes and reproduce sexually. The male reproductive organ is located on the right side of its body. The female reproductive organs are within the mantle cavity. In the mantle cavity, there are two openings, one for fertilization and another for discharging the eggs. Fertilization is internal. The nerites are oviparous, females laying calcified eggs, normally on benthic surfaces or on their shell near the opening.

Mating System: monogamous

Theodoxus fluviatilis are dioecious and oviparous. They are semelparous, producing offspring all at once, after which the parent usually dies. During their mating season, anywhere from 50 to 200 eggs are laid. These eggs are collectively known as a capsule, and only one of them contains an embryo. Each egg is made of two spherical halves, which split when newborns hatch. The rest are used as a food source for the newborns. Embryos usually take about 100 days to fully develop. Since they are involved in a biennial life cycle, their eggs hatch some time in the fall as miniature adults and fully mature 18 months later.

Breeding interval: They breed once in their lifetime, and they usually die after.

Breeding season: They breed between the warmer months of April and October.

Range number of offspring: 50 to 200.

Average age at sexual or reproductive maturity (female): 18 months.

Average age at sexual or reproductive maturity (male): 18 months.

Key Reproductive Features: semelparous ; sexual ; fertilization (Internal ); oviparous

Not much is known on the parental investment of T. fluviatilis, but some were found with their eggs attached to their shell near the opening. This could be some form of protection of the eggs from possible predators or even by providing nutrients to their young. The young are precocial when they hatch.

Parental Investment: precocial ; pre-hatching/birth (Provisioning: Female, Protecting: Female)

lisenssi
cc-by-nc-sa-3.0
tekijänoikeus
The Regents of the University of Michigan and its licensors
bibliografinen lainaus
Abdallah, M. 2011. "Theodoxus fluviatilis" (On-line), Animal Diversity Web. Accessed April 27, 2013 at http://animaldiversity.ummz.umich.edu/site/accounts/information/Theodoxus_fluviatilis.html
tekijä
Mahmoud Abdallah, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Phil Myers, University of Michigan-Ann Arbor
muokkaaja
Renee Mulcrone, Special Projects
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
Animal Diversity Web

Gemeine Kahnschnecke ( saksa )

tarjonnut wikipedia DE
 src=
Gehäuse von Theodoxus fluviatilis aus dem Wittensee (Schleswig-Holstein)
 src=
Theodoxus fluviatilis, Herault (Süd-Frankreich)
 src=
Theodoxus fluviatilis thermalis Syntyp

Die Gemeine Kahnschnecke, Fluss-Schwimmschnecke[1] oder Zwerg-Flussschnecke (Theodoxus fluviatilis) ist eine im Süßwasser und Brackwasser lebende Schnecke aus der Familie der Kahnschnecken (Neritidae), die zur Überordnung der Neritimorpha gerechnet wird. Die Gemeine Kahnschnecke war Weichtier des Jahres 2004.

Merkmale

Das Gehäuse ist dickwandig und ohrförmig mit wenigen Windungen. Es ist bis 6,5 mm hoch und bis 10 mm breit. Die Innenwände werden während des Wachstums aufgelöst. Die Öffnung ist eben: sie kann mit einem Operculum verschlossen werden. Das Gehäuse ist sehr variabel in der Färbung und dem Farbmuster. Meist ist das Muster netzförmig; dunkelrot auf hellem Grund, oder die Grundfarbe ist dunkelrot mit weißen Flecken. Die Flecken sind oft in Bändern angeordnet. Das Tier ist hellgelb mit einem schwarzen Kopf. Die Tentakeln sind verhältnismäßig lang und grau. Der Fuß ist weißlich.

Vermehrung

Die Tiere sind wie alle Kahnschnecken (Neritidae) getrenntgeschlechtlich. Der Penis des Männchens sitzt innen beim rechten Fühler. Das Weibchen hat eine Vagina zur Begattung und eine zweite Geschlechtsöffnung zur Eiablage. Nach der Befruchtung legen die Weibchen über den Sommer etwa 1 mm große weiße Eikapseln an Steinen und anderen Hartgründen ab. Von den etwa 30 bis 70 Eiern in einer Kapsel entwickelt sich nur eines, während die anderen als Nähreier dienen. Die larvale Entwicklung findet in den Eikapseln statt, so dass aus diesen fertige, etwa 0,5 bis 1 mm große Schnecken schlüpfen, je nach Temperatur etwa 4 bis 8 Wochen nach dem Eierlegen. Hierbei wird ein Teil der Eikapsel entlang einer Naht abgestoßen. Die Tiere werden 2 bis 3 Jahre alt.

Vorkommen, Lebensweise und Verbreitung

Die Art kommt in fast ganz Europa und Teilen Asiens (Iran, Aserbaidschan, Kasachstan, Turkmenistan) und vereinzelt in Nordafrika (Marokko, Algerien, Tunesien, Ägypten) in den größeren Flüssen sowie im Brackwasser vor. Es gibt Vorkommen in der Ostsee und im Kaspischen Meer. Sie fehlt in den Alpen und im nördlichen Alpenvorland. Die im Brackwasser lebenden Kahnschnecken sind kleiner und haben dünnere Schneckenhäuser als die im Süßwasser lebenden. Es ist noch nicht geklärt, ob dies genetisch bedingt ist, also zwei verschiedene Unterarten existieren.

Die Gemeine Kahnschnecke lebt auf Steinen, im Brackwasser außerdem auf Tang und Seegras und weidet den aus kleinen Algen, insbesondere Kieselalgen bestehenden Bewuchs ab. Um den Zellinhalt verdauen zu können, muss die Schnecke den Panzer der Kieselalge durch Reiben mit ihrer Radula gegen das harte Substrat zerstören.

Gefährdung

Die Gemeine Kahnschnecke ist in Deutschland als stark gefährdet eingestuft. In der Schweiz ist sie sogar vom Aussterben bedroht. In Tschechien ist sie bereits ausgestorben.

Saprobienindex

Der Saprobienindex für diese Art beträgt 1,5.[2]

Literatur

  • Eduard von Martens: Die Gattung Neritina. Systematisches Conchylien-Cabinet. Nürnberg, 1879. S. 204ff. Nr. 106. Neritina fluviatilis L.
  • Peter Glöer: Die Tierwelt Deutschlands. Mollusca I Süßwassergastropoden Nord- und Mitteleuropas Bestimmungsschlüssel, Lebensweise, Verbreitung. 2., neubearbeitete Auflage. 327 S., ConchBooks, Hackenheim 2002, ISBN 3-925919-60-0.
  • Rosina Fechter und Gerhard Falkner: Weichtiere. 287 S., Mosaik-Verlag, München 1990 (Steinbachs Naturführer 10) ISBN 3-570-03414-3

Einzelnachweise

  1. Václav Pfleger: Weichtiere. 192 S., Artia-Verlag, Prag 1984.
  2. Meyer, Detlef.: Makroskopisch-biologische Feldmethoden zur Wassergütebeurteilung von Fliessgewässern : mit Artenlisten für anfangende und geübte Untersucher und detaillierten Beschreibungen und Abbildungen der Indikatororganismen. 4., unveränd. Auflage. BUND, Hannover 1990, ISBN 3-9800871-4-X.
lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Autoren und Herausgeber von Wikipedia
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia DE

Gemeine Kahnschnecke: Brief Summary ( saksa )

tarjonnut wikipedia DE
 src= Gehäuse von Theodoxus fluviatilis aus dem Wittensee (Schleswig-Holstein)  src= Theodoxus fluviatilis, Herault (Süd-Frankreich)  src= Theodoxus fluviatilis thermalis Syntyp

Die Gemeine Kahnschnecke, Fluss-Schwimmschnecke oder Zwerg-Flussschnecke (Theodoxus fluviatilis) ist eine im Süßwasser und Brackwasser lebende Schnecke aus der Familie der Kahnschnecken (Neritidae), die zur Überordnung der Neritimorpha gerechnet wird. Die Gemeine Kahnschnecke war Weichtier des Jahres 2004.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Autoren und Herausgeber von Wikipedia
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia DE

Theodoxus fluviatilis ( englanti )

tarjonnut wikipedia EN

Theodoxus fluviatilis, common name the river nerite, is a species of small freshwater and brackish water snail with a gill and an operculum, an aquatic gastropod mollusk in the family Neritidae, the nerites.[13]

This widely distributed neritid snail species occurs from Europe to Central Asia. It has a thick shell with a calcified operculum. The coloration pattern on the shell is very variable. Theodoxus fluviatilis lives in freshwater and in brackish water, in rivers and lakes on stones. It feeds mainly by grazing on biofilms and diatoms.

Some of the populations of this species are spreading, and these can reach densities up to thousands of snails per square meter. Females lay egg capsules, each of which contains a large number of eggs, but only one snail hatches from the capsule. The snails reach sexual maturity in a year, and the total lifespan is 2 or 3 years.

Taxonomy

Theodoxus fluviatilis was originally described under the name Nerita fluviatilis by Carl Linnaeus in 1758. Linnaeus' original text (the type description) in Latin was very short, and reads as follows:[3]

Nerita fluviatilis, n. 632: testa rugosa, labiis edentilis. Habitat in Europa cataractis.

Which means in English: "Nerita fluviatilis, number 632: the shell is wrinkled, there are no teeth in the aperture. It inhabits rivers in Europe." Later, this species was moved to the genus Theodoxus Montfort, 1810. Theodoxus fluviatilis is in fact the type species of the genus Theodoxus.[5] Anistratenko and colleagues designated the lectotype for Theodoxus fluviatilis in 1999[14] (an English translation was published by Anistratenko in 2005).[5]

Subspecies

Several subspecies of Theodoxus fluviatilis were described and (inconsistently) recognized by various authors:

  • Theodoxus fluviatilis fluviatilis (Linnaeus, 1789)[15][16][17] – was described from a freshwater environment[18]
  • Theodoxus fluviatilis fluviatilis f. fontinalis Brard, 1815[16] – is sometimes considered as a synonym of Theodoxus fluviatilis[1]
  • Theodoxus fluviatilis littoralis (Linnaeus, 1789)[2][16] – was described from brackish water by Linnaeus as a separate species, originally named Nerita littoralis.[18] A study by Zettler (2008)[12] proved that its status as a subspecies is unjustified,[12] being regarded as a synonym of Theodoxus fluviatilis.[1] Although these so-called forms (form fluviatilis and form littoralis) differ in morphology, ecology, reproductive strategy and behaviour, they are probably just ecomorphs.[19]
  • Theodoxus fluviatilis sardous (Menke, 1830)[1]
  • Theodoxus fluviatilis subthermalis Issel, 1865[1] – or Theodoxus subthermalis (Bourguignat in Issel, 1865)[9]
  • Theodoxus fluviatilis thermalis (Dupuy, 1851)[1]
    Syntypes of Theodoxus fluviatilis thermalis at MHNT
  • Theodoxus fluviatilis transversetaeniatus A. J. Wagner, 1928[1]
  • Theodoxus fluviatilis dalmaticus Sowerby – in Lake Ohrid[20]
  • Theodoxus fluviatilis euxinus (Clessin, 1885) – has been considered to be a subspecies[17] (see Theodoxus euxinus[1])

Bunje (2005)[11] does not consider Theodoxus velox Anistratenko, 1999[8] to be a distinct species from Theodoxus fluviatilis.[11]

Cladogram

A cladogram shows the phylogenic relationships within the genus Theodoxus:[21]

Theodoxus

clade A: Theodoxus anatolicus, Theodoxus jordani, and Theodoxus macrii

clade C: Theodoxus danubialis and Theodoxus prevostianus

clade B: Theodoxus fluviatilis and Theodoxus euxinus

clade D: Theodoxus baeticus, Theodoxus valentina, Theodoxus meridionalis

clade F: Theodoxus peloponnesa

clade E: Theodoxus transversalis

This cladogram shows that the sister group to clade B is clade C. They split in 5–11.5 Ma, when Lake Pannon existed.[21] Theodoxus species living in brackish water include Theodoxus fluviatilis and Theodoxus jordani, but they are apparently not closely related.[21]

Distribution

The exact type locality for this species is unknown, but it is probably the Main river in Southern Germany.[5][22] Glöer (2002)[16] considered the type locality sensu Linnaeus as "Habitat in fluviis, Upsaliae ad molendinam Ulvam & alibi", but this would suggest a brackish water environment.[12] The distribution of this species was considered to be European,[23] but in reality the species occurs in the western to central Palaearctic.[24] Its occurrence is scattered throughout Europe and in Western Asia[5] except for the Alps and the regions immediately north of the Alps.[10] This species does not live in Norway[10][18] or Siberia.[24] Theodoxus fluviatilis has the most widespread distribution of all of the species in the genus Theodoxus.[11] It is in fact one of the most widely distributed species in the entire family Neritidae.[25]

This species is threatened mainly by river engineering and water pollution in densely populated regions.[10] The species' population trend is overall stable, but is declining in some areas (Germany),[12] while in other areas it is expanding (for example in the Danube river).[2] In the Rhine river during the 1970s, Theodoxus fluviatilis came close to local extinction because of water pollution.[25] Subsequently, the water quality improved for more than two decades, leading to a recovery. Even so, the species became extinct in the Rhine for an unknown reason in the late 1990s.[25] Since 2006, Theodoxus fluviatilis recolonized the Rhine, probably via ship transport through the Main-Danube Canal.[25] An analysis based on cytochrome-c oxidase I (COI) gene has shown that the recolonization probably originated in the Danube.[25]

Europe

The Gulf of Odesa is one of the locations where Theodoxus fluviatilis is known to occur.

The species occurs widely in Western Europe, and it is also widespread in the north of Ireland,[26] living in 10% of Irish streams and rivers.[27] It lives in Great Britain,[26] including the Orkney Islands,[18] as well as in the Netherlands,[28] Belgium, Luxembourg, Liechtenstein, and Monaco.[2] It also is found in France[26] and Switzerland, where it is considered to be critically endangered.[10] More to the south, it occurs in Spain[2][18] and Portugal,[2] although the species is restricted to karst springs in Central Portugal.[29]

In central Europe, this species has been recently introduced in the Austrian Danube, where it was first recorded in Tulln, Lower Austria in 2001.[30] In the Czech Republic, it is now extinct in Bohemia;[31][32] the only findings were in the Elbe river near Litoměřice in 1917,[32] and the most recent findings of empty shells took place in 1943.[32] Theodoxus fluviatilis also occurs in Poland,[18] in Slovakia where it is non-indigenous since 2002,[32][33] and in Hungary.[2] Zettler (2008)[12] provided a detailed bibliography of the distribution of T. fluviatilis in Germany. The indigenous distribution of T. fluviatilis included all of the large rivers: Rhine, Main, Moselle, Neckar, Weser, Elbe and Oder.[12] However, this species is now highly endangered in Germany[18] (Stark gefährdet).[34]

In Northern Europe, this species is found in Denmark,[18] in Sweden as far north as 58° N.[10] It can also be found on the coasts of Finland,[35] in Åland, and is known to be found alive there since 1994.[18][36] No other Theodoxus species reaches the Baltic Sea. It has the northernmost distribution of the genus Theodoxus and it is also the northernmost species of all Neritidae.[21] In Eastern Europe this snail occurs in Estonia,[18] Lithuania,[18] and Latvia,[18] as well as Belarus,[37] and in Russia from western Russia[18] to Caucasus.[35] Since 1997 it has been found in the Gulf of Odesa, Ukraine.[38] In Ukraine and in Crimea it is non-indigenous, and was first recorded in the area in 1955.[39] It also occurs in Moldova.[40] In Southern Europe, Theodoxus fluviatilis lives in Albania,[2] Bosnia and Herzegovina,[2] Romania,[2] Bulgaria,[2] Slovenia,[2] and Croatia.[41] In Macedonia and Albania it occurs in Lake Ohrid (which spans the border of the two countries) as the subspecies Theodoxus fluviatilis dalmaticus.[20][42] It is found on the mainland of Greece and also on Crete.[11][43] It is known to occur in the mainland of Italy[2] and also in Sardinia.[35] It occurs in Montenegro,[2][44] and in Serbia.[2][19]

Asia and Africa

In Asia, Theodoxus fluviatilis is found in Turkey.[17] It can also be found in Iran, in the provinces of Kerman, Gilan, Mazandaran, Fars, Hormozgan, Lorestan and Khorasan.[24] However, until 2012, all the records from Iran were listed as Theodoxus doriae.[24] In Africa this species occurs in Algeria,[44] and possibly (or probably) in Morocco, where there are records which some authors consider to be reliable.[24] However, instead of one species, Theodoxus fluviatilis, Brown (1994) recognized three species in northwestern Africa: Theodoxus numidicus, Theodoxus maresi, Theodoxus meridionalis.[45]

Prehistoric biogeography

Shells of Theodoxus fluviatilis have been found in an Upper Paleolithic archaeological site in the cave Caldeirão, Pedreira (Tomar), Tomar Municipality, Portugal,[46] and also in a site from about 6000 years B.P. of Litorina age on the Åland Islands.[36] Shells from the Late Neolithic have been found in Divoká Šárka, Czech Republic.[47][48] Bunje (2005) hypothetized that the ancestral range of Theodoxus fluviatilis was the Ponto-Pannonian region (southern Ukraine, Romania and Hungary).[11] Bunje suggested that the species first colonized northern Italy, Greece and Turkey; in the second phase it colonized Spain, France and Germany; and finally in the Holocene it colonized the British Isles, Sweden and the Baltic Sea.[11] In 2002, German malacologist Peter Glöer summarized the distribution of this species during the Pleistocene and Holocene epochs.[16]

Description

The shell of Theodoxus fluviatilis is somewhat depressed (with an usually low spire), strongly calcified, and has 3–3.5 whorls (including the protoconch).[26][44][49] Larger specimens are usually eroded.[18][35] The width of an adult shell is usually 5–9 mm,[10] but can reach up to 11–13 mm.[10][32] The height of the shell is 4–6.5 mm,[10] or up to 7 mm.[32] These mean values vary among populations depending on the environment: the maximum width of the shell of brackish water populations is 9.3 mm.[18] Brackish water shells are somewhat shorter, reaching up to 5.8 mm,[18] and the maximum weight of the shell is 124 mg.[18] In freshwater populations, the maximum recorded shell width is 13.1 mm,[18] and maximum height is 9.3 mm.[18] The maximum weight of freshwater shells is 343 mg.[18]

The exterior of the shell is basically whitish or yellowish, with a net-like dark reddish or violet pattern. This pattern is very variable (depending on environmental factors), sometimes partly presenting bands, and even occasionally being evenly dark.[10] The shell is very variable in color and color patterns, showing great polymorphism.[5] Shell coloration and patterns are very plastic in all species of the genus Theodoxus and these qualities may be influenced by factors like ionic composition of water, type of substratum and nutrition of individuals in various habitats.[44] Zettler and colleagues (2004)[18] showed that in the outer coastal waters of the Baltic Sea, the nearly black and often corroded shell form of Theodoxus fluviatilis is predominant, whereas in the inner (sheltered) parts of coastal waters, yellowish-green forms prevail.[44] Glöer and Pešić (2015) observed that specimens from a darker stony substrate were black or dark brown.[44] Shells of specimens of Theodoxus fluviatilis from Northern Europe are ornamented with a pattern of white, drop-like spots on a dark or red background.[44] Specimens from South France and Spain are ornamented with a pattern of zigzag stripes, while specimens from the Balkans show all possible combinations of white drop-like spots and zigzag stripes.[44] Animals from lacustrine habitats show dark or light bands on the shell.[44]

Images showing variability in the color patterns of shells of Theodoxus fluviatilis:

From Alster, Germany.
From Güstrow, Germany.
From Zeta River, Montenegro.
From Neretva River, Bosnia and Herzegovina.

The shell shape of Theodoxus fluviatilis is similar to that of Theodoxus transversalis.[44] The shell shape of Theodoxus danubialis is more spherical.[44] The shape of the aperture of Theodoxus prevostianus is usually descending.[44] However, all of these species display a large morphological plasticity, which makes them difficult to differentiate.[44] The overall outline of the shell is still used for species identification in recent malacological literature.[44] Though the coloration and patterns of the shells cannot be relied upon to identify specimens, opercular characters can be used for a proper identification of Theodoxus fluviatilis.[44] The calcified operculum of T. fluviatilis is D-shaped, light reddish with a red margin, bearing a broad rib (also called a ridge) on its inner surface.[10][22] The columellar muscle is attached to the rib.[22] The rib is long and thin, attenuated at the base, while the callus is thin; a peg is lacking.[44] The characteristic features of the operculum are already visible in juveniles.[44] There is sexual dimorphism on the border of the rib shield of the operculum, which is straight in females, but curved in males.[44]

The outer side of an operculum.
The inner side of the same operculum.
The inner side of another operculum:
la – left adductor,
r – rib,
rs – rib shield,
ca – callus,
ra – right adductor.
The rib shield of a male.
The rib shield of a female.

Aberrations in the shape of operculum have been observed. In a specimen from Vouvant in France, and another from a spring near Bar in Montenegro, a double rib was present, but the rib shield was reduced; in a specimen from Ohrid Lake, only the rib shield was reduced.[44] Theodoxus fluviatilis can be distinguished from the other three mentioned species by having a rib pit, which is formed by the rib and the rib shield.[44] The rib shield, and consequently a rib pit, are lacking in Theodoxus transversalis, Theodoxus danubialis and Theodoxus prevostianus.[44] These three species differs in having, in addition to a rib, a peg, which is absent in T. fluviatilis.[44] The visible soft parts of the animal are light yellow with a black head.[10] The tentacles are greyish and long.[10] The eyes are large and black; the foot is whitish.[10]

Radula

A drawing depicting a single row of teeth in the radula of Theodoxus fluviatilis

Theodoxus fluviatilis, like all other species in the family Neritidae, has a radula which is of the rhipidoglossan type (a radula with many small marginal teeth which help "brush" food particles into the gullet).[45] Zettler and colleagues (2004)[18] and Zettler (2008)[12] made SEM micrographs of the radula of this species.

Reproductive system

Theodoxus fluviatilis has separate sexes (i.e. these snails are dioecious). The diploid number of chromosomes (2n) is 25 in males and 26 in females.[50] There is X0 sex-determination system in Neritidae, and it was confirmed for this species too.[50]

Females have two openings located under the edge of the mantle in the mantle cavity: the opening of the vagina and an opening for laying eggs. The vagina accepts the sperm during copulation. The vagina is connected to the bursa copulatrix and to the spermatheca (for storing sperm). The other opening is for laying eggs. Egg cells originate in the ovary. Egg cells travel through the oviduct to the fertilization chamber, where fertilization occur. Eggs then develop in the glandular uterus. A capsule is formed in the diverticulum next to the uterus. The eggs are then laid.[16][51]

In males, the semen is forming in the testis. The sperm structure of Theodoxus fluviatilis was examined by Gustaf Retzius.[52][53] Then semen travels through the prostate, where it mixes with prostatic fluid. Finally it goes through the vas deferens to the penis. The penis is located on the inner side of the right tentacle.[16] The following illustrations show the reproductive system in the female and in the male:

Drawing of the female reproductive system of the species, as first described (correctly) by Gustave Gilson (1896)[51] showing:
1 – ovarium
2 – oviduct
3 – uterus
4 – diverticulum
5 – connection between bursa copulatrix and uterus
6 – receptaculum seminis
7 – bursa copulatrix
8 – vagina.
A drawing of the male reproductive system of T. fluviatilis by Lehmann (1873),[54] shows testis (on the left), prostate, vas deferens and penis (on the right).

Various organ systems

Circulatory system: The osmotic pressure of the hemolymph of Theodoxus fluviatilis is 95 mOsm.[55] That is much lower value than in marine snails in the subfamily Neritinae.[55] The osmotic pressure and the composition of ionts of the hemolymph of the subfamily Neritininae (where does the Theodoxus belong to) is similar to the hemolymph of the land snail family Helicinidae.[55]

Ecology

Habitat

Some populations of T. fluviatilis use the seagrass Zostera marina as a habitat in brackish water environments.

Theodoxus fluviatilis prefers lowland habitats (in Switzerland it occurs up to 275 m a.s.l.) and calcium-rich waters.[44] This small snail inhabits the central and lower parts of rivers (up to 13 m deep),[10] including in brackish water[10] in tidal rivers of estuaries.[26] It sometimes lives in lakes on unvegetated bottoms.[26] Rarely, it lives in springs (rheocrenes), in ground water, and in caves.[26] For example, in the Åland Islands, Theodoxus fluviatilis was found living in lakes with a pH of 7.8–8.9.[36] In streams and rivers in Ireland, the species lived in water with a pH of 7.0–8.4.[27]

The species easily attaches itself to stones, which allows it to live in fast-running waters and in wave zone in lakes.[35] The ability of Theodoxus fluviatilis to live in freshwater and also in brackish water demonstrates the phenotypic plasticity of this species.[11] This small snail can live in up to 60 m depth in coastal waters.[18] Brackish water populations can live in salinities of up to 15‰ in the Baltic Sea[16][34] or up to 18‰ in the Baltic Sea and in Black Sea.[11] Populations from brackish water can tolerate higher salinity than populations from freshwater.[18] Brackish water populations have much higher accumulation of ninhydrin-positive substances in the foot.[56]

This species lives on hard benthic substrates, typically rocks.[44] It lives on pebbles, sometimes on boulders, and rarely on dead wood.[26] It tolerates mild organic pollution, low oxygen content (down to below 2 mg/liter) but it does not tolerate long periods of droughts, or ice.[10] It lives in mesotrophic waters, and sometimes in oligotrophic waters.[26]

Theodoxus fluviatilis serves an indicator species for river monitoring (in Germany); however the spreading populations also have a high tolerance for degraded habitats.[25] Theodoxus fluviatilis has a large phenotypic plasticity: it was found living on stones and on dead wood in freshwater environments; whereas it lives on stones and on Fucus vesiculosus, Potamogeton spp. and Zostera marina in brackish water in the Baltic Sea.[18] The species can also be found on aggregates of Mytilus.[18]

This species, together with the isopod Saduria entomon, have been found to be a dominant part of the fauna biomass in the central and northern Baltic Sea.[57] Brackish water populations can reach densities up to 200–1000 snails per m².[18] Theodoxus fluviatilis dalmaticus in Lake Ohrid can reach population densities up to 6412 snails per m².[20] The species was found in population densities of up to 9000 snails per m² in a spring of the Anços river in Central Portugal, where there is a stable temperature of 15.3–16.6 °C, which allows continuous reproduction in Theodoxus fluviatilis.[29] At Gabčíkovo port, in September 2003, a density of 34,932 juvenile snails per m² was recorded.[58]

Feeding habits

Theodoxus fluviatilis feeds mainly on diatoms living on stones,[18][35] scraping biofilms and also consuming detritus.[29] It can also consume Cyanobacteria and green algae as a poor-quality food supply.[35] Cyanobacteria contain toxins and indigestible mucopolysaccharides, and green algae have cellulose in their cell walls (Theodoxus species have no cellulase enzymes to digest cellulose).[35] They also graze on zygotes and germlings of brown alga Fucus vesiculosus, when the alga is small up to 1 mm.[59] Peters and Traunspurger (2012) studied the effect of the grazing of Theodoxus fluviatilis on epilithic meiofauna and algae.[60]

Life cycle

One egg capsule on the surface of a shell of a live Theodoxus fluviatilis.
Remnants of two egg capsules are visible on the surface of this corroded shell of Theodoxus fluviatilis. The width of the shell is 8 mm and the height is 6 mm.

Theodoxus fluviatilis is gonochoristic, which means that each individual animal is distinctly male or female, and cross-fertilization can occur.[26] The sex ratio is 1:1.[35] The structure of the flagellum of the spermatozoon is unique: the flagellum is divided into two parts.[61]

T. fluviatilis eggs are usually laid in from mid-April to October,[10] in temperatures above 10 °C.[35] Eggs are laid in egg capsules[26] deposited on stones and sometimes on shells of conspecific individuals.[62] Females usually lay a cluster containing 4–5 capsules.[35] A single female will usually lay about 40 capsules during summer, and about 20 capsules during autumn.[35] Fresh capsules are white,[35] but older capsules become yellow or brown and may bear an epiphytic outer layer.[35] The capsules are around 1 mm in diameter (0.9–1.1 mm),[35] but in brackish water they are usually smaller (about 0.8 mm). Empty (sterile) small capsules (0.5–0.8 mm in diameter) can also be laid.[35] The number of eggs per egg capsule changes depending on the environment. There are 100–200 eggs in each capsule in freshwater, as opposed to 55–80 eggs in each capsule in brackish water.[35] Usually, only one egg develops, with the remaining eggs serving as nutrition for the embryo,[63] which results in a single juvenile snail hatching from each capsule.[35]

Juveniles with a shell length of 0.5–1 mm hatch after 30 days (in 25 °C), or after 65 days (in 20 °C).[10][16] The ash-free dry weight of newly hatched snails is 0.012 mg.[35] The protoconch has one whorl.[22] Capsules laid in spring hatch after 2–3 months, in August–September.[35] Capsules from late summer overwinter because embryonic development ceases in temperatures below 10 °C, thus these capsules hatch in spring after 7–8 months.[35] The shell grows mainly from May to August; there is no shell growth in winter.[35] The snails reach sexual maturity in less than 1 year,[26] when the shell length is 5.5–5.7 mm.[35]

The life span of T. fluviatilis is 2–3 years.[10] The age of a few snails was estimated to be 3.5 years.[35] The mortality rate is low in summer. However, it is higher in winter because ice and storms can dislocate the substrate, which can result in mechanical damage to the snails.[35]

Parasites and predators

One of the known predators of Theodoxus fluviatilis is the common roach, Rutilus rutilus

Parasites of Theodoxus fluviatilis include several species of trematodes. The snail serves as first intermediate host to Plagioporus skrjabini[64] and as second intermediate host to Cotylurus cornutus.[65] Asymphylodora demeli is also found in this small snail,[65] as is Notocotylus zduni.[66][67] This small snail is also parasitized by several species of ciliates. It is the main host for the ciliate Trichodina baltica; the snails are usually 100% infected in the mantle cavity[68] Another ciliate found in the mantle cavity is a species of Scyphidia.[68] Two other parasitic ciliate species found in this snail are Protospira mazurica,[69] and Hypocomella quatuor.[69] Predators of Theodoxus fluviatilis include the common roach (a freshwater fish), Rutilus rutilus.[70] Theodoxus fluviatilis is also the prey of some birds.[71]

References

This article incorporates public domain text from references[3][10] and CC-BY-4.0 text from the reference[44]

  1. ^ a b c d e f g h i j "Theodoxus". Fauna Europaea, last update 27 January 2011, accessed 12 April 2011.
  2. ^ a b c d e f g h i j k l m n o Kebapçı U. & Van Damme D. (2012). "Theodoxus fluviatilis". The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2014.2. . Downloaded on 30 July 2014.
  3. ^ a b c Linnaeus C. (1758). Systema Naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis. 10th edition. Vermes. Testacea: 700–781. Holmiae. (Salvius). page 777.
  4. ^ (in French) Montfort P. D. de (1810). Conchyliologie systématique, et classification méthodique des coquilles; offrant leurs figures, leur arrangement générique, leurs descriptions caractéristiques, leurs noms; ainsi que leur synonymie en plusieurs langues. Ouvrage destiné à faciliter l'étude des coquilles, ainsi que leur disposition dans les cabinets d'histoire naturelle. Coquilles univalves, non cloisonnées. Tome second. – pp. [1–3], 1–676. Paris. page 351.
  5. ^ a b c d e f g Anistratenko, V. V. (2005). "Lectotypes for Tricolia pullus, Gibbula divaricata and Theodoxus fluviatilis (Mollusca, Gastropoda) revisited" (PDF). Vestnik Zoologii. 39 (6): 3–10.
  6. ^ (in German) Lindholm W. A. (1908). "Materialien zur Molluskenfauena [sic] von Südwestrussland, Polen und der Krim". Zapiski Novorossijskago Obshchestva Estestvoispytatelej – Mémoires de la Société des Naturalistes de la Nouvelle-Russie 31: 199–232. Odesa.
  7. ^ "Species in genus Theodoxus" (n=20). AnimalBase, accessed 11 April 2011.
  8. ^ a b Anistratenko, O. Y.; Starobogatov, Y. I.; Anistratenko, V. V. (1999). "Mollusks of the genus Theodoxus (Gastropoda, Pectinibranchia, Neritidae) from the Black and the Azov seas basin". Vestnik Zoologii. 33: 11–19.
  9. ^ a b Kantor Yu I., Vinarski M. V., Schileyko A. A. & Sysoev A. V. (published online on March 2, 2010). "Catalogue of the continental mollusks of Russia and adjacent territories". Version 2.3.1.
  10. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u "Species summary for Theodoxus fluviatilis". AnimalBase, last modified 21 September 2009, accessed 11 April 2011.
  11. ^ a b c d e f g h i Bunje, P. M. E. (2005). "Pan-European phylogeography of the aquatic snail Theodoxus fluviatilis (Gastropoda: Neritidae)". Molecular Ecology. 14 (14): 4323–4340. doi:10.1111/j.1365-294X.2005.02703.x. PMID 16313596. S2CID 26958577. PDF.
  12. ^ a b c d e f g h Zettler, M. A. (2008). "Zur Taxonomie und Verbreitung der Gattung Theodoxus Montfort, 1810 in Deutschland. Darstellung historischer und rezenter Daten einschließlich einer Bibliografie. (Taxonomy and distribution of the genus Theodoxus Montfort, 1810 in Germany. Presentation of historical and recent data including a bibliography)" (PDF). Mollusca (in German). 26: 13–72.
  13. ^ Neubauer, Thomas A. (2014). Theodoxus (Theodoxus) fluviatilis (Linnaeus, 1758). Accessed through: World Register of Marine Species at http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=821986 on 2014-11-18
  14. ^ (in Russian) Anistratenko O. Yu., Starobogatov Ya. I. & Anistratenko V. V. (1999). "Моллюски рода Theodoxus (Gastropoda, Pectinibranchia, Neritidae) Азово-Черноморского бассейна. Molluscs of the genus Theodoxus (Gastropoda, Pectinibranchia, Neritidae) from the Black and the Azov Seas basin". Vestnik Zoologii 33(3): 11–19.
  15. ^ "Theodoxus (Theodoxus) fluviatilis". Fauna Europaea, last update 27 January 2011, accessed 12 April 2011.
  16. ^ a b c d e f g h i Glöer P. (2002). Die Süßwassergastropoden Nord- und Mitteleuropas. Die Tierwelt Deutschlands, ConchBooks, Hackenheim, 326 pp., ISBN 3-925919-60-0. pages 46–49, 51–53.
  17. ^ a b c Yildirim, M. Z.; Koca, S. B.; Kebapçi, U. (2006). "Supplement to the Prosobranchia (Mollusca: Gastropoda) Fauna of Fresh and Brackish Waters of Turkey" (PDF). Turkish Journal of Zoology. 30: 197–204.
  18. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y z aa ab Zettler, M. L.; Frankowski, J.; Bochert, R.; Röhner, M. (2004). "Morphological and ecological features of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) from Baltic brackish water and German freshwater populations" (PDF). Journal of Conchology. 38 (3): 305–316. Archived from the original (PDF) on 2011-08-10.
  19. ^ a b Marković, V.; Tomović, J.; Ilić, M.; Kračun-Kolarević, M.; Novaković, B.; Paunović, M.; Nikolić, V. (2014). "Distribution of the species of Theodoxus Montfort, 1810 (Gastropoda: Neritidae) in Serbia: An overview" (PDF). Acta Zoologica Bulgarica. 66 (4): 477–484.
  20. ^ a b c Smiljkov, S.; Budzakoska-Gjoreska, B.; Sapkarev, J.; Trajanovski, S. (2007). "Dominant species of the gastropod fauna from the littoral region in Lake Ohrid of R. Macedonia". Prilozi / Makedonska Akademija Na Naukite I Umetnostite, Oddelenie Za Bioloski I Medicinski Nauki = Contributions / Macedonian Academy of Sciences and Arts, Section of Biological and Medical Sciences. 28 (1): 137–144. PMID 17921924.
  21. ^ a b c d Bunje, P. M.; Lindberg, D. R. (2007). "Lineage divergence of a freshwater snail clade associated with post-Tethys marine basin development". Molecular Phylogenetics and Evolution. 42 (2): 373–387. doi:10.1016/j.ympev.2006.06.026. PMID 16949309.
  22. ^ a b c d Bandel K. (2001). "The history of Theodoxus and Neritina connected with description and systematic evaluation of related Neritimorpha (Gastropoda)". Mittelungen aus dem Geologisch-Palaontologischen Institut Universitat Hamburg (85): 65–164. PDF.
  23. ^ (in Slovak) Lisický M. J. (1991). Mollusca Slovenska [The Slovak molluscs]. VEDA vydavateľstvo Slovenskej akadémie vied, Bratislava, 344 pp.
  24. ^ a b c d e Glöer, P.; Pešić, V. (2012). "The freshwater snails (Gastropoda) of Iran, with descriptions of two new genera and eight new species". ZooKeys (219): 11–61. doi:10.3897/zookeys.219.3406. PMC 3433696. PMID 22977349.
  25. ^ a b c d e f Gergs, R.; Koester, M.; Grabow, K.; Schöll, F.; Thielsch, A.; Martens, A. (2014). "'Theodoxus fluviatilis re-establishment in the River Rhine: a native relict or a cryptic invader?". Conservation Genetics. 16: 247–251. doi:10.1007/s10592-014-0651-7. S2CID 18211307.
  26. ^ a b c d e f g h i j k l Falkner G., Obrdlík P., Castella E. & Speight M. C. D. (2001). Shelled Gastropoda of Western Europe. München: Friedrich-Held-Gesellschaft, 267 pp.
  27. ^ a b Lucey, J.; Mcgarrigle, M. L.; Clabby, K. J. (1992). "The distribution of Theodoxus fluviatilis (L.) in Ireland". Journal of Conchology. 34: 91–101.
  28. ^ Theodoxus fluviatilis, accessed 25 September 2008.
  29. ^ a b c Graça, M. A. S.; Serra, S. R. Q.; Ferreira, V. (2012). "A stable temperature may favour continuous reproduction by Theodoxus fluviatilis and explain its high densities in some karstic springs". Limnetica. 31 (1): 129–140.
  30. ^ (in German) Schultz H. & Schultz O. (2001). "Erstnachweis der Gemeinen Kahnschnecke, Theodoxus fluviatilis (LINNAEUS, 1758) in Österreich (Gastropoda: Neritidae)". Annalen des Naturhistorischen Museums in Wien 103B: 231–241. PDF.
  31. ^ Red List of the molluscs (Mollusca) of the Czech Republic
  32. ^ a b c d e f (in Czech) Horsák, Michal; Juřičková, Lucie; Beran, Luboš; Čejka, Tomáš; Dvořák, Libor (2010-03-11). "Komentovaný seznam měkkýšů zjištěných ve volné přírodě České a Slovenské republiky [Annotated list of mollusc species recorded outdoors in the Czech and Slovak Republics]". Malacologica Bohemoslovaca (in Czech). 9: 1–37. doi:10.5817/MaB2010-9-s1-v2. ISSN 1336-6939. S2CID 245898844.
  33. ^ Čejka, T.; Horsák, M. (2002). "First records of Theodoxus fluviatilis and Sphaerium solidum (Mollusca) from Slovakia". Biologia. 57 (5): 561–562.
  34. ^ a b Glöer P. & Meier-Brook C. (2003). Süsswassermollusken. DJN, pp. 134, pages 29, 108, ISBN 3-923376-02-2.
  35. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y Kirkegaard, J (2006). "Life history, growth and production of Theodoxus fluviatilis in Lake Esrom, Denmark". Limnologica. 36 (1): 26–41. doi:10.1016/j.limno.2005.11.002.
  36. ^ a b c Carlsson, R (2000). "The distribution of the gastropods Theodoxus fluviatilis (L.) and Potamoyrgus antipodarum (Gray) in lakes on the Åland Islands, southwestern Finland" (PDF). Boreal Environment Research. 5: 187–195.
  37. ^ Nagorskaya L., Moroz M., Laeno T., Veznovetz V., Pillot H. M., Dijkstra K. D. B. & Reemer M. (2002). "Macrofauna in floodplain pools and dead branches of the Pripyat river, Belarus". The Institute of Zoology NAS Belarus, 158 pp., page 56.
  38. ^ (in Russian) Butenko O. (Бутенко О. И.) (2001). "Моллюски рода Theodoxus (Gastropada, Neritidae) в Одесском заливе Черного моря. [Mollusks of genus Theodoxus (Gastropoda, Neritidae) in the Odesa Bay (the Black Sea)]". Ekologiya Morya 58: 27–28. PDF.
  39. ^ Alexandrov, B.; Boltachev, A.; Kharchenko, T.; Lyashenko, A.; Son, M.; Tsarenko, P.; Zhukinsky, V. (2007). "Trends of aquatic alien species invasions in Ukraine" (PDF). Aquatic Invasions. 2 (3): 215–242. doi:10.3391/ai.2007.2.3.8.
  40. ^ Balashov, I. A.; Son, M. O.; Coadã, V.; Welter-Schultes, F. (2013). "An updated annotated checklist of the molluscs of the Republic of Moldova". Folia Malacologica. 21 (3): 175–181. doi:10.12657/folmal.021.021.
  41. ^ Beran, Luboš (2009-12-14). "The first record of Anisus vorticulus (Troschel, 1834) (Gastropoda: Planorbidae) in Croatia?". Malacologica Bohemoslovaca. 8: 70. doi:10.5817/MaB2009-8-70. ISSN 1336-6939. S2CID 245692926.
  42. ^ Fehér, Z.; Eröss, Z. P. (2009). "Checklist of the Albanian mollusc fauna" (PDF). Schriften zur Malakozoologie. 25: 22–38.
  43. ^ "Picture summary of Theodoxus-fluviatilis_04.jpg". AnimalBase, last modified 20 June 2008, accessed 13 April 2011.
  44. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y Glöer, P.; Pešić, V. (2015). "The morphological plasticity of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) (Mollusca: Gastropoda: Neritidae)" (PDF). Ecologica Montenegrina. 2 (2): 88–92. doi:10.37828/em.2015.2.10.
  45. ^ a b Brown D. S. (1994). Freshwater Snails of Africa and their Medical Importance. Taylor & Francis. ISBN 0-7484-0026-5.
  46. ^ (in Portuguese) Callapez P. (2003). "Moluscos marinhos e fluviais do Paleolítico superior da Gruta do Caldeirão (Tomar, Portugal): evidências de ordem sistemática, paleobiológica e paleobiogeográfica". Revista Portuguesa de Arqueologia 6(1): 5–15. PDF.
  47. ^ (in Czech) Sobotka M. (1945). "První nález zubatky říční v Čechách". Příroda, Brno, 37(5): 162.
  48. ^ (in German) Ložek V. (1964). "Quartärmollusken der Tschechoslowakei". Rozpravy Ústředního ústavu geologického, Prague, 31: 374 pp., page 155.
  49. ^ Theodoxus fluviatilis. Marine Species Identification Portal, accessed 11 April 2011.
  50. ^ a b Baršienė, J.; Tapia, G.; Pujante, A. M.; Martinez-Orti, A. (2000). "A comparative study of chromosomes in four species of Theodoxus (Gastropoda: Neritidae)". Journal of Molluscan Studies. 66 (4): 535–541. doi:10.1093/mollus/66.4.535.
  51. ^ a b Gilson G. (1896) "The female organs of Neritina fluviatilis". Proceedings of the Malacological Society of London 2: 81–83.
  52. ^ Afzelius, B. A. (1995). "Gustaf Retzius and spermatology". The International Journal of Developmental Biology. 39 (5): 675–685. PMID 8645550.
  53. ^ Retzius G. (1904-1921). Biologische Untersuchungen 13.
  54. ^ Lehmann R. (1873). Die lebenden Schnecken und Muscheln der Umgegend Stettins und in Pommern mit besonderer Berücksichtigung ihres anatomischen Baues. R. Friedländer & Sohn, Berlin. page 261. Plate 19, figure 94.
  55. ^ a b c Little C. (1983). The colonisation of land: origins and adaptations of terrestrial animals. Cambridge University Press, 290 pp., page 37.
  56. ^ Symanowski, F.; Hildebrandt, J. P. (2009). "Differences in osmotolerance in freshwater and brackish water populations of Theodoxus fluviatilis (Gastropoda: Neritidae) are associated with differential protein expression". Journal of Comparative Physiology B. 180 (3): 337–346. doi:10.1007/s00360-009-0435-4. PMID 20012055. S2CID 6502023.
  57. ^ Kautsky H. (1989). "Quantitative distribution of plant and animal communities of the phytobenthic zone in the Baltic Sea". Askö Laboratory, Stockholm. abstract.
  58. ^ (in Slovak) Košel V. (2004). "Theodoxus fluviatilis (Gastropoda) – nový invázny druh v strednej Európe?". In: Bryja J. & Zukal J. (eds): Zoologické dny Brno, Sborník abstraktů z konference 12.-13. února 2004, page 51. ISBN 80-903329-1-9. PDF.
  59. ^ Malm, T.; Engkvist, R.; Kautsky, L. (1999). "Grazing effects of two freshwater snails on juvenile Fucus vesiculosus in the Baltic Sea". Marine Ecology Progress Series. 188: 63–71. Bibcode:1999MEPS..188...63M. doi:10.3354/meps188063.
  60. ^ Peters, L.; Traunspurger, W. (2012). "Temporal patterns in macrograzer effects on epilithic algae and meiofauna: a comparative approach to test for single species and whole grazer community effects". Aquatic Sciences. 74 (2): 229–240. doi:10.1007/s00027-011-0214-7. S2CID 14436096.
  61. ^ Giusti, F.; Selmi, M. G. (1982). "The morphological peculiarities of the typical spermatozoa of Theodoxus fluviatilis (L.) (Neritoidea) and their implications for motility". Journal of Ultrastructure Research. 78 (2): 166–177. doi:10.1016/s0022-5320(82)80021-x. PMID 7086934.
  62. ^ Örstan A. (2007). "New year, new snail: Theodoxus fluviatilis". Snail's tales. accessed 9 December 2014.
  63. ^ (in Czech) Beran L. (1998). Vodní měkkýši ČR. Vlašim, 113 pp., ISBN 80-902469-4-X. page 45.
  64. ^ (in Russian) Chernogorenko, M. I.; Komarovova, T. I.; Kurandina, D. P. (1978). "Life cycle of the trematode, Plagioporus skrjabini Kowal, 1951 (Allocreadiata, Opecoelidae)". Parazitologiia (in Russian). 12 (6): 479–486. PMID 733319..
  65. ^ a b Poulin R. & Chappell L. H. (2002). Parasites in Marine Systems. Parasitology, 124, Cambridge University Press, 216 pp., page S123, S128. ISBN 0521534127.
  66. ^ Gibson D. I., Bray R. A. & Harris E. A. (Compilers) (2005). "Host-Parasite Database". Natural History Museum, London,
  67. ^ Kostadinova A. (1993). Trematodes and trematode communities in fish-eating birds from the Bulgarian Black Sea coast. Bulgarian Academy of Sciences, Parazitologiia Institut, 5 pp.
  68. ^ a b Raabe, Z (1965). "The parasitic ciliates of gastropods in the Ohrid Lake" (PDF). Acta Protozoologica. 3: 311–3.
  69. ^ a b Raabe, Z (1968). "Two new species of Thigmotricha (Cliata, Holotricha) from Theodoxus fluviatilis" (PDF). Acta Protozoologica. 6: 170–173.
  70. ^ Lappalainen, A.; Rask, M.; Koponen, H.; Vesala, S. (2001). "Relative abundance, diet and growth of perch (Perca fluviatilis) and roach (Rutilus rutilus) at Tvärminne, northern Baltic Sea, in 1975 and 1997: responses to eutrophication?" (PDF). Boreal Environment Research. 6: 107–118.
  71. ^ Kiss, J. B.; Rékási, J.; Richnovszky, A. (1995). "Data on the mollusc (Mollusca) consumption of birds in the Danube Delta, Romania" (PDF). Aquila. 102: 99–107.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Wikipedia authors and editors
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia EN

Theodoxus fluviatilis: Brief Summary ( englanti )

tarjonnut wikipedia EN

Theodoxus fluviatilis, common name the river nerite, is a species of small freshwater and brackish water snail with a gill and an operculum, an aquatic gastropod mollusk in the family Neritidae, the nerites.

This widely distributed neritid snail species occurs from Europe to Central Asia. It has a thick shell with a calcified operculum. The coloration pattern on the shell is very variable. Theodoxus fluviatilis lives in freshwater and in brackish water, in rivers and lakes on stones. It feeds mainly by grazing on biofilms and diatoms.

Some of the populations of this species are spreading, and these can reach densities up to thousands of snails per square meter. Females lay egg capsules, each of which contains a large number of eggs, but only one snail hatches from the capsule. The snails reach sexual maturity in a year, and the total lifespan is 2 or 3 years.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Wikipedia authors and editors
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia EN

Leväkotilo

tarjonnut wikipedia FI

Leväkotilo (Theodoxus fluviatilis) on makeassa ja murtovedessä viihtyvä pienikokoinen kotilo. Se kaipaa sen verran kovaa vettä, ettei sitä juurikaan tavata Suomen joissa ja järvissä.[2] Sen sijaan Itämeressä se on melko yleinen. Leväkotiloa tavataan myös muualla Euroopassa.

Leväkotilo kasvaa halkaisijaltaan noin sentin mittaiseksi. Sen kuori on pitkulainen, kuorispiraalin sisimmät kierteet ovat tiukkoja, uloin paljon isompi. Väritykseltään leväkotilo on tumman ja vaalean ruskean kuviollinen.[3]

Itämeressä leväkotilo viihtyy rakkolevän suojissa.[4]

Lähteet

  1. Kebapçı, U. & Van Damme, D.: Theodoxus fluviatilis IUCN Red List of Threatened Species. Version 2014.2. 2012. International Union for Conservation of Nature, IUCN, Iucnredlist.org. Viitattu 8.8.2014. (englanniksi)
  2. Ilpo Hahtela: Itämeri ja sen eliöstö wakkanet.fi.
  3. Mollusken NRW (myös kuva)
  4. SeaLife
Tämä eläimiin liittyvä artikkeli on tynkä. Voit auttaa Wikipediaa laajentamalla artikkelia.
lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Wikipedian tekijät ja toimittajat
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia FI

Leväkotilo: Brief Summary

tarjonnut wikipedia FI

Leväkotilo (Theodoxus fluviatilis) on makeassa ja murtovedessä viihtyvä pienikokoinen kotilo. Se kaipaa sen verran kovaa vettä, ettei sitä juurikaan tavata Suomen joissa ja järvissä. Sen sijaan Itämeressä se on melko yleinen. Leväkotiloa tavataan myös muualla Euroopassa.

Leväkotilo kasvaa halkaisijaltaan noin sentin mittaiseksi. Sen kuori on pitkulainen, kuorispiraalin sisimmät kierteet ovat tiukkoja, uloin paljon isompi. Väritykseltään leväkotilo on tumman ja vaalean ruskean kuviollinen.

Itämeressä leväkotilo viihtyy rakkolevän suojissa.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Wikipedian tekijät ja toimittajat
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia FI

Theodoxus fluviatilis ( ranska )

tarjonnut wikipedia FR

Theodoxus fluviatilis (ou Nérite des rivières, aussi parfois simplement nommé néritine ou nérite bien que ces termes puissent aussi désigner de nombreux autres mollusques de la même famille) est une espèce de mollusque d'eau douce et saumâtre. Ce gastéropode herbivore appartient au genre Theodoxus, classé dans la famille des Neritidae (qui est considérée comme « archaïque »[8] et qui comprend de nombreuses espèces, presque toutes tropicales).

Sa coquille est épaisse et il peut la fermer grâce à un opercule calcifié et nacré (face interne). Le motif et la couleur de la coquille sont très variable.

Ce petit mollusque prosobranche vit dans les rivières, fleuves et lacs, toujours sur des pierres ou substrats durs (éventuellement artificiels, on en a par exemple trouvé se nourrissant sur le périphyton et les organismes installés sur des pieds immergés de mâts d'éoliennes en zone estuarienne[9]). Il se nourrit principalement en broutant le biofilm épilithique algo-bactérien et en particulier les diatomées, cyanobactéries et biofilms encroûtants.

L'espèce fait preuve d'une grande plasticité [10], mais pour des raisons mal comprises, certains de ses populations semblent se développer et parfois pulluler (dans certains de ces cas, des densités de plusieurs milliers d'escargots par mètre carré ont été localement observées) alors qu'elles régressent et disparaissent en d'autres endroits (Tchéquie, Allemagne).

Distribution

Theodoxus fluviatilis est le seul nérite observable en France (jusqu'en zone très saumâtre), et l'une des trois espèces observables en Europe et Asie centrale.

Autrefois considéré comme exclusivement européen, il semble pouvoir être potentiellement présent dans tout le centre et l'ouest de la zone paléarctique eurasiatique[11] sauf dans les Alpes[12] et les régions situées immédiatement au nord des Alpes. Cette espèce est absente des zones très froide en hiver (ex : nord de la Suède, Norvège[12] ou Sibérie)[11].

Theodoxus fluviatilis est souvent discret ou a localement disparu, mais il est le plus largement répandu (en termes d'aire géographique) parmi toutes les espèces du genre Theodoxus[13]. et l'une des espèces les plus largement distribués de toute la famille Neritidae[14].

La localité qui a fourni l'échantillon utilisé par Linné pour la description scientifique de l'espèce a été oubliée ; il pourrait s'agir de la rivière Main en Allemagne du Sud[3],[15], mais Glöer en 2002 rappelle[16] que Linné a écrit "Habitat in fluviis, Upsaliae ad molendinam Ulvam & alibi", ce qui pourrait évoquer un environnement saumâtre [17];

État des populations, pressions, menaces

Cette espèce est menacée dans une grande partie de son aire naturelle et potentielle de répartition, principalement par l'ingénierie des cours d'eau, la canalisation, l'envasement (notamment lié à la turbidité de l'eau) et par la pollution de l'eau (dont par les hydrocarbures[18]) dans les régions densément peuplées ou d'agriculture intensive[19]. Elle a récemment disparu en Allemagne, Tchéquie et semble menacée de disparition imminente en Suisse[20].

Des tendances paradoxales sont observées. La population de l'espèce semble globalement stable dans le monde, mais en baisse dans certaines régions (Allemagne notamment), et en pleine expansion dans le Danube. L'espèce a failli disparaitre du Rhin dans les années 1970 en raison de la pollution du fleuve[14] puis a commencé à reconstituer ses populations à la suite de la reconquête de la qualité de l'eau durant plus de deux décennies pour néanmoins disparaitre du Rhin pour une raison inconnue à la fin des années 1990[14] avant de finalement recoloniser ce fleuve, très probablement via les canaux et notamment la circulation des péniches sur le canal Main-Danube[14], selon l'étude génétique du Cytochrome c oxidase I (gène mitochondrial COX1 ou CO1), qui a montré une recolonisation probablement originaire du Danube[14].

Cette espèce ou certaines souches pourraient être sensibles au réchauffement des eaux ou menacées par le dérèglement climatique ; elle se montre (en laboratoire) plus sensible à une élévation de la température de l'eau (cf. tests à 36 et 38 °C) que Lymnea peregra[21], même si elle résiste mieux à une déshydratation estivale (pour l'adulte). G Skoog, l'auteur de cette étude a montré que les juvéniles de T. fluviatilis résistent moins bien à la chaleur dans leurs capsules d'œufs que les juvéniles de L. peregra, mais ceci est compensé par le fait que T. fluviatilis dépose ses capsules sur les coquilles de congénères ou plus profondément sous la surface de l'eau.

Histoire et phylogénie

Phylogénie : Bunje & Lindberg (2007) ont présenté une première hypothèse phylogénétique sur la spécificité du clade Theodoxus[22]. L'évolution de ce genre (Theodoxus) résulterait de la séparation de l'Europe avec l'Afrique par la Méditerranée et la mer Paratéthys au Miocène[22].

Selon W.R Hunter (2013), c'est une espèce qui n'a que récemment (à l'échelle géologique des temps) colonisé les eaux douces de l'Europe ; en profitant de la période (interglaciaire Günz/Mindel)[23].

Description et critères d'identification

 src=
Theodoxus fluviatilis littoralis
 src=
Theodoxus fluviatilis dalmatinus
 src=
Syntypes de Theodoxus fluviatilis thermalis (MHNT)
 src=
Face interne d'un opercule
la – adducteur gauche,
r – apophyse ,
rs – frontière apophyse-bouclier,
ca – cal
ra – Adducteur droit.
  • Taille & poids : jusqu'à 6,5 mm de hauteur pour 13 mm de longueur (5 à 9 mm en moyenne), selon les conditions environnementales[24]. La hauteur de la coquille est souvent de 4 à 6,5 mm[24], et parfois 7 mm [31]. La largeur maximale de la coquille est de 9,3 mm[25] et moins (jusqu'à 5,8 mm) en eau saumâtre[25]. Le poids maximal de la coquille est de 124 mg en eau saumâtre et 343 mg en eau douce[25].
  • Corps : La peau est ornée de motifs qui varient selon les individus. La tête est foncée, les deux tentacules sont longs et fins, souvent gris et parfois ornés d'une ligne foncée. Ils se terminent chacun par un œil pédonculé, noir et plutôt grand (« fixé à la partie externe de leur base »[20]). Les parties molles visibles de l'animal sont claires (blanchâtres à jaunâtre)[19] ; le pied est blanchâtre[19].
  • Coquille : Elle est dure, épaisse et très calcifiée, ce qui est assez rare chez les escargots aquatiques des eaux tempérées.
    Sa forme est globalement semiovulaire, sans ombilic, un peu déprimée (avec une flèche généralement faible) et avec une large ouverture. La columelle est très effacée.
    L'enroulement des spires est dextre (c'est-à-dire que l'ouverture se présent à droite de l'axe d'enroulement quand la coquille est observée verticalement pointe (apex) en haut et ouverture tournée vers l'observateur).Les spires intérieures sont absentes ou à peine marquée, mais sont souvent bien visibles à l'extérieur car marquée par une discontinuité du motif. Selon l'âge de l'animal (2 à 3 ans), chez l'adulte la coquille présente à 2 à 3,5 tours (y compris le protoconque), le dernier tour (ou demi-tour) étant caractérisé par une spire très large. Chez les adultes, l'apex est souvent dégradé (usé, blanchâtre)[26],[10],[27].
    Les spécimens les plus âgés sont habituellement endommagés ou érodées[25],[28], peut être à cause de l'habitude qu'ils ont de se cacher le jour dans les anfractuosités ou sous les pierres qui peuvent parfois bouger avec le courant.
  • Opercule : De nature calcaire, il a une forme de demi-lune (forme de D) tendant vers l'ovale. Il présente une apophyse marquée côté interne. La forme de cet apophyse diffère chez le mâle et la femelle (y compris chez le jeune individu)[10]. Ce dimorphisme sexuel est marqué par la forme de la zone frontière entre cet apophyse et le bouclier de l'opercule qui diffère selon le sexe : elle est droite chez les femelles, mais courbe chez les mâles[10].
    Certaines des particularités de l'opercule (déjà présentes chez les juvéniles) sont utilisées pour l'identification de l'espèce : une périphérie rougeâtre et une marge rouge-orangée, et un crête sur sa surface intérieure[15]. Le muscle columellaire est fixé à la crête de l'apophyse [15] qui est longue et mince, atténué à la base, tandis que le cal est mince ; il n'y a pas de "cheville" (alors qu'elle est présente chez les deux autres espèces)[10].

Images présentant l'opercule :

 src=
Côté externe d'un opercule
 src=
Face interne du même opercule
 src=
Détail : Apophyse du mâle
 src=
Détail : Apophyse de la femelle

Des aberrations dans la forme d'opercule ont été signalées [10].

  • Couleur, motif : La coquille est blanche à jaunâtre et ornée (à l'extérieur) de lignes sombres en réseau (rouge, brunâtre à violet foncé) filet évoquant parfois une calligraphie, ou un damier dont les cases seraient rectangulaires ou arrondies, mais ce motif prend au sein de l'espèce des formes très variables et une teinte plus ou moins foncée, a priori en fonction des conditions environnementales (composition ionique de l'eau, type de substrat et de la nutrition des individus[29] ; Zettler et ses collègues ont en 2004 montré[25] que dans le eaux côtières de la mer Baltique (dont la salinité varie saisonnièrement), une coquille presque noire et souvent corrodée prédomiée alors que dans les eaux intérieures côtières, les formes vert-jaunâtre prévalent [43]. Selon Glöer et Pešić (2015) dans un substrat caillouteux sombre des formes noires ou brun foncé prédominent[29]. Les populations d'Europe du Nord présentent un motif de taches blanches dispersées sur un fond sombre ou rouge[29] alors que les spécimens du Sud la France et d'Espagne sont ornés d'un motif de bandes foncées en zigzag évoquant parfois les motifs de certaines moules zébrées, tandis que les spécimens provenant des Balkans présentent toutes les combinaisons possibles de taches, stries et motifs en zigzag[29]. Dans les lacs, les coquilles sont plutôt ornées de bandes sombres et claires[29]..
    Dans les eaux eutrophes, la coquille est en outre parfois « verdie » par des microalgues ou des bactéries.
    Chez quelques espèces les bandes plus foncées occupent presque toute la surface faisant paraitre la coquille uniformément sombre[19].
  • Polymorphisme : Les détails de motif, de couleur, de forme et couleur de la coquille peuvent fortement varier au sein de l'espèce. La forme de la radula et de l'opercule semble mieux fixée, mais des formes inhabituelles d'opercule ont été signalées[10].
    Certains auteurs considèrent qu'il existe plusieurs sous-espèces (ou sous espèces comme Theodoxus fluviatilis thermalis (Dupuy, 1851) aussi nommée Nérite des Pyrénées). Certains considèrent que le polymorphisme observé est dû aux habitats et à la nourriture ou à des variations naturelles aléatoires permises par le génome de l'animal[29].
    En raison de ce polymorphisme de tailles, couleurs et motifs, marqué chez T. fluviatilis, mais aussi chez les trois autres espèces eurasiatiques de Theodoxus, il est très difficile de le distinguer des deux autres espèces qui peuvent aussi être trouvés en Europe centrale :
  1. Theodoxus danubialis, Pfeiffer 1828 (ou nérite du Danube), plus grand, et dont la « robe est couverte de zigzags foncés sur fond clair »[20] ;
  2. Theodoxus transversalis, Pfeiffer 1828 (ou nérite fasciée) à la robe « gris-foncé à jaune sans dessin »[20].
  3. Theodoxus prevostianus (Pfeiffer, 1828),

L'identification au niveau de l'espèce doit être faite par un spécialiste. Les spécimens sauvages trouvés en France sont toutefois supposés tous appartenir à l'espèce T. fluviatilis (par défaut de présence des autres espèces dans le pays).

Images montrant la grande variabilité des couleurs et patterns (motifs) des coquilles de Theodoxus fluviatilis:

 src=
Spécimen provenant d'Alster (Allemagne)
 src=
Spécimen provenant de Güstrow (Allemagne)
 src=
Origine : Rivière Zeta (Monténégro)
 src=
Origine : Rivière Neretva (Bosnie-Herzégovine)

Habitats, Biologie, écologie

 src=
Dans certains cours d'eau où se déroulent des phénomènes de biominéralisation (ici : Sèvre niortaise au lieu-dit "Pont romain d'Azay-le-Brûlé" en France) la coquille de T. fluviatilis se recouvre (parfois entièrement) d'une croute algobactérienne pouvant atteindre plusieurs millimètres d'épaisseur (alors que la coquille des corbicules (espèce exotique envahissante n'est pas touchée)

Ce mollusques est dit potamique rhéophile. Il fait partie du macrobenthos[30] ; il ne vit que dans les eaux courantes ou brassées, sur les substrats durs (roches, galets, branches..), très près de la surface et jusqu'à 5-6 m de profondeur et parfois plus éventuellement dans les zones d'eaux plus vives de petites chutes d'eau (naturelles ou arfificielles), « dans la zone de déferlement des lacs ». On le trouve aussi parfois en eau saumâtre (« salinité inférieure à 18 » selon DORIS[20]), grâce à une bonne capacité d'osmorégulation.

Sa durée de vie totale est de 2 ou 3 ans (les années de croissance sont souvent bien visibles sur la coquille).

L'espèce semble plutôt lucifuge ; elle est souvent trouvés le jour à l'abri de la lumière sur la face inférieure de pierres, ou sous des surplombs...).

Régime alimentaire

Il est réputé se nourrir d'algues sur le biofilm alguobactérien du périphyton, mais il ne mange pas les algues vertes[31] évoluées (aucune des espèces de theodoxus ne synthétisent l'enzyme (cellulase) nécessaire à la digestion de ces algues[31].

Quand ses populations sont denses, son activité de broutage fait presque disparaitre le biofilm qui se forme naturellement sur les substrats durs et il peut alors « fortement réduire les densités de méiofaune en raison d’une intense pression de broutage non-sélective »[32].

Reproduction

Chez cette espèce, les sexes sont séparés et la maturité sexuelle est atteinte en fin de première année ou la seconde année quand l'animal mesure environ 7 mm.

Le pénis du mâle est situé sur le côté droit du pied. Le réceptacle séminal de la femelle est aussi à droite, sous le rebord du manteau. Chez la femelle un second réceptacle produit les « capsules ovigères ».

En effet, la femelle de ce petit escargot pond ses œufs de mi-mai à mi-novembre, quand la température de l'eau est d'environ 10 °C, par paquets regroupés dans de petites capsules blanches, aplaties, rondes ou ovales et calcifiée, d’une taille d’un millimètre environ (chacune contenant selon les auteurs de 30 à 70 voire jusqu'à environ 200 minuscules œufs ; plus en eau douce et moins en eau saumâtre [20]).
Ces capsules sont habituellement collées sur un substrat dur et souvent sur les coquilles d'autres theodoxus ou d'autres mollusques (Les autres espèces de Theodoxus font de même).
une théorie scientifique dite « du cycle de vie (Life-cycle theory) » suggère que des propagules de reproduction plus petits devraient être produits dans des environnements où le taux de croissance juvénile est plus élevé. Il a été récemment suggéré et démontré que cela est vrai si la taille des adultes est fixe et si le temps de reproduction est également fixe. Une étude anglaise basée sur la mesure des capsules et du taux de croissance des juvéniles dans 5 sites du sud de l'Angleterre a trouvé des différences significatives entre les sites pour deux facteurs : de grandes capsules sont produites sur les sites où le taux de croissance est moindre, comme le prédisait la théorie du cycle de vie[33].

Selon DORIS, « deux périodes seraient à considérer avec 40 capsules par femelle de mai à juin, et 20 capsules seulement en automne, ces capsules étant souvent regroupées par 4 ou 5 »[20].

L'incubation est estimée à 1 à 2 mois en été, mais 7 à 8 mois dans les « capsules d'hivernage » dans une eau de moins de 10 °C [20].

Le système de détermination sexuelle est de type XX/X0 comme chez tous les Neritidae[34]

Dans chaque capsule, une seule larve juvénile se développera (les autres œufs lui servant de nourriture) et selon les mesures publiées par Bondesen en 1940, la taille de la capsule est prédictive de la taille de la coquille du jeune escargot qui en émergera, ce qui a été récemment confirmé par R.A Orton et R.M Sibly en 1990[33].
De la capsule émerge un escargot qui est à l'image de l'adulte mais d'une taille de 0,5 à 1 mm[20].

Génétique

L'espèce est diploïde avec un nombre de chromosomes (2n) de 25 chez le mâle et 26 chez la femelle[34].

Parasitisme

Plusieurs parasites de Theodoxus fluviatilis dont connus, dont

Prédation

Ses prédateurs ne sont pas très bien connus, mais on sait que le gardon (Rutilus rutilus) en fait partie[42].

Theodoxus fluviatilis est aussi la proie de certains oiseaux d'eau se nourrissant sur le fond ou près de la surface[43].

Utilisations

L'espèce ne semble pas avoir été recherchée par l'homme comme nourriture, mais des fouilles archéologiques ont montré que sa coquille a été utilisée à la préhistoire comme bijou (pendentifs au paléolithique russe[44])

Notes et références

Références taxonomiques

(en) Référence NCBI : Theodoxus fluviatilis (taxons inclus)

Notes et références autres que taxonomiques

  • (en) Cet article est partiellement ou en totalité issu de l’article de Wikipédia en anglais intitulé .
  1. Linnaeus C. (1758). Systema Naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis. 10th edition. Vermes. Testacea: 700–781. Holmiae. (Salvius). page 777.
  2. Montfort P. D. de (1810). Conchyliologie systématique, et classification méthodique des coquilles; offrant leurs figures, leur arrangement générique, leurs descriptions caractéristiques, leurs noms; ainsi que leur synonymie en plusieurs langues. Ouvrage destiné à faciliter l'étude des coquilles, ainsi que leur disposition dans les cabinets d'histoire naturelle. Coquilles univalves, non cloisonnées. Tome second. – pp. [1–3], 1–676. Paris. page 351.
  3. a et b Anistratenko V. V. (2005). "Lectotypes for Tricolia pullus, Gibbula divaricata and Theodoxus fluviatilis (Mollusca, Gastropoda) revisited". Vestnik zoologii 39(6): 3–10. PDF .
  4. (de) Lindholm W. A. (1908). "Materialien zur Molluskenfauena [sic] von Südwestrussland, Polen und der Krim". Zapiski Novorossijskago Obshchestva Estestvoispytatelej – Mémoires de la Société des Naturalistes de la Nouvelle-Russie 31: 199–232. Odessa.
  5. "Theodoxus". Fauna Europaea, last update 27 January 2011, accessed 12 April 2011.
  6. "Species in genus Theodoxus" (n=20). AnimalBase, accessed 11 April 2011.
  7. Anistratenko O. Y., Starobogatov Y. I. & Anistratenko V. V. (1999). "Mollusks of the genus Theodoxus (Gastropoda, Pectinibranchia, Neritidae) from the Black and the Azov seas basin". Vestnik Zoologii 33: 11–19.
  8. Kano Y, Chiba S & Kase T (2002). Major adaptive radiation in neritopsine gastropods estimated from 28S rRNA sequences and fossil records. Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences, 269(1508), 2457-2465.
  9. Wilhelmsson D & Malm T (2008) Fouling assemblages on offshore wind power plants and adjacent substrata. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 79(3), 459-466 (résumé
  10. a b c d e f et g Glöer P. & Pešić V. (2015). "The morphological plasticity of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) (Mollusca: Gastropoda: Neritidae)". Ecologica Montenegrina 2(2): 88-92. PDF.
  11. a et b Glöer P. & Pešić V. (2012). "The freshwater snails (Gastropoda) of Iran, with descriptions of two new genera and eight new species". ZooKeys 219: 11–61. doi:10.3897/zookeys.219.3406.
  12. a et b "Species summary for Theodoxus fluviatilis". AnimalBase, modifié 21 septembre 2009, consulté 11 avril 2011.
  13. Bunje, P. M. E. (2005). "Pan-European phylogeography of the aquatic snail Theodoxus fluviatilis (Gastropoda: Neritidae)". Molecular Ecology 14 (14): 4323–4340. doi:10.1111/j.1365-294X.2005.02703.x. PMID 16313596. PDF.
  14. a b c d et e Gergs R., Koester M., Grabow K., Schöll F., Thielsch A. & Martens A. (2014). "Theodoxus fluviatilis’ re-establishment in the River Rhine: a native relict or a cryptic invader?". Conservation Genetics doi:10.1007/s10592-014-0651-7
  15. a b et c Bandel K. (2001). "The history of Theodoxus and Neritina connected with description and systematic evaluation of related Neritimorpha (Gastropoda)". Mittelungen aus dem Geologisch-Palaontologischen Institut Universitat Hamburg (85): 65–164. PDF.
  16. Glöer P. (2002). Die Süßwassergastropoden Nord- und Mitteleuropas. Die Tierwelt Deutschlands, ConchBooks, Hackenheim, 326 pp., (ISBN 3-925919-60-0). pages 46–49, 51–53
  17. Zettler M.A (2008) "Zur Taxonomie und Verbreitung der Gattung Theodoxus Montfort, 1810 in Deutschland. Darstellung historischer und rezenter Daten einschließlich einer Bibliografie. (Taxonomy and distribution of the genus Theodoxus Montfort, 1810 in Germany. Presentation of historical and recent data including a bibliography)". Mollusca 26: 13–72. PDF
  18. MacFarlane G.R, Reid D.J & Esguerra C.A (2004) Sublethal behavioral effects of the water accommodated fractions of crude oil to gastropod molluscs. Bulletin of environmental contamination and toxicology, 72(5), 1025-1031 ([MacFarlane, G. R., Reid, D. J., & Esguerra, C. A. (2004). Sublethal behavioral effects of the water accommodated fractions of crude oil to gastropod molluscs. Bulletin of environmental contamination and toxicology, 72(5), 1025-1031. (extrait et résumé
  19. a b c et d "Species summary for Theodoxus fluviatilis". AnimalBase, last modified 21 September 2009, accessed 11 April 2011.
  20. a b c d e f g h et i Fiche Doris sur T. fluviatilis, DORIS, Kupfer Michel, Corolla Jean-Pierre, in : DORIS, 3/12/2014 : Fiche : Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758), http://doris.ffessm.fr/fiche2.asp?fiche_numero=2690 consultée 2015-08-22
  21. Skoog G (1976) Effects of acclimatization and physiological state on the tolerance to high temperatures and reactions to desiccation of Theodoxus fluviatilis and Lymnea peregra. Oikos, 50-56 (https://www.jstor.org/stable/3543431 résumé]).
  22. a et b Bunje P. M. & Lindberg D. R. (2007). "Lineage divergence of a freshwater snail clade associated with post-Tethys marine basin development". Molecular Phylogenetics and Evolution 42(2): 373–387. DOI:10.1016/j.ympev.2006.06.026
  23. Hunter W.R (2013). Physiological aspects of ecology. Physiology of mollusca, 1, 83 (lien Google livre)
  24. a et b (Czech) Horsák M., Juřičková L., Beran L., Čejka T. & Dvořák L. (2010). "Komentovaný seznam měkkýšů zjištěných ve volné přírodě České a Slovenské republiky. [Annotated list of mollusc species recorded outdoors in the Czech and Slovak Republics]". Malacologica Bohemoslovaca Suppl. 1: 1–37. PDF.
  25. a b c d et e Zettler M. L., Frankowski J., Bochert R. & Röhner M. (2004). "Morphological and ecological features of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) from Baltic brackish water and German freshwater populations". Journal of Conchology 38(3): 305–316. PDF.
  26. (en) Falkner G., Obrdlík P., Castella E. & Speight M. C. D. (2001). Shelled Gastropoda of Western Europe. München: Friedrich-Held-Gesellschaft, 267 pp.
  27. Theodoxus fluviatilis. Marine Species Portal, consulté 11 avril 2011
  28. Kirkegaard J (2006) "Life history, growth and production of Theodoxus fluviatilis in Lake Esrom, Denmark". Limnologica 36(1): 26–41. doi:10.1016/j.limno.2005.11.002.
  29. a b c d e et f Glöer P. & Pešić V. (2015). "The morphological plasticity of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) (Mollusca: Gastropoda: Neritidae)". Ecologica Montenegrina 2(2): 88-92. PDF.
  30. Tachet, H., Gaschignard-Fossati, O., Cellot, B., & Berly, A. (1988, January). Le macrobenthos de la Saône. In Annales de limnologie (Vol. 24, No. 01, pp. 83-100). EDP Sciences.
  31. a et b "Genus summary for Theodoxus". AnimalBase, consultée le 11 avril 2011
  32. Majdi, Nabil (2011) Meiofauna in river epilithic biofilm: Dynamics and trophic relationships (thèse de doctorat en Écologie fonctionnelle soutenue le 29 novembre 2011 ; École doctorale, Sciences de l'Univers, de l'Environnement et de l'Espace (SDUEE), unité de recherche EcoLab UMR 5245, Université Paul Sabatier de Toulouse), 176 pp. voir p 27
  33. a et b Orton R.A & Sibly R.M (1990). Egg size and growth rate in Theodoxus fluviatilis (L). Functional Ecology, 91-94. DOI:10.2307/2389657 (résumé)
  34. a et b Baršienė J., Tapia G., Pujante A. M. & Martinez-Orti A. (2000). "A comparative study of chromosomes in four species of Theodoxus (Gastropoda: Neritidae)". Journal of Molluscan Studies 66(4): 535–541. .
  35. (ru) Chernogorenko, M. I.; Komarovova, T. I.; Kurandina, D. P. (1978). "Life cycle of the trematode, Plagioporus skrjabini Kowal, 1951 (Allocreadiata, Opecoelidae)". Parazitologiia (in Russian) 12 (6): 479–486. PMID 733319. edit.
  36. a et b Poulin R. & Chappell L. H. (2002). Parasites in Marine Systems. Parasitology, 124, Cambridge University Press, 216 pp., page S123, S128. (ISBN 0521534127).
  37. Gibson D. I., Bray R. A. & Harris E. A. (Compilers) (2005). "Host-Parasite Database". Natural History Museum, London
  38. Kostadinova A. (1993). Trematodes and trematode communities in fish-eating birds from the Bulgarian Black Sea coast. Bulgarian Academy of Sciences, Parazitologiia Institut, 5 pp.
  39. Raabe Z. (1965). "The parasitic ciliates of gastropods in the Ohrid Lake". Acta Protozoologica 3: 311–3 (PDF)
  40. Raabe Z. (1968). Two new species of Thigmotricha (Cliata, Holotricha) from Theodoxus fluviatilis. Acta Protozoologica 6: 170–173 (PDF)
  41. Raabe Z. (1968). "Two new species of Thigmotricha (Cliata, Holotricha) from Theodoxus fluviatilis. Acta Protozoologica 6: 170–173. PDF
  42. Lappalainen A., Rask M., Koponen H. & Vesala S. (2001). "Relative abundance, diet and growth of perch (Perca fluviatilis) and roach (Rutilus rutilus) at Tvärminne, northern Baltic Sea, in 1975 and 1997: responses to eutrophication?" Boreal Environment Research 6: 107–118. PDF.
  43. Kiss J. B., Rékási J. & Richnovszky A. (1995). "Data on the mollusc (Mollusca) consumption of birds in the Danube Delta, Romania". Aquila 102: 99–107. PDF.
  44. Sinitsyn A.A (2003), A Palaeolithic ‘Pompeii’at Kostenki, Russia. Antiquity, 77(295), 9-14.

Voir aussi

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Auteurs et éditeurs de Wikipedia
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia FR

Theodoxus fluviatilis: Brief Summary ( ranska )

tarjonnut wikipedia FR

Theodoxus fluviatilis (ou Nérite des rivières, aussi parfois simplement nommé néritine ou nérite bien que ces termes puissent aussi désigner de nombreux autres mollusques de la même famille) est une espèce de mollusque d'eau douce et saumâtre. Ce gastéropode herbivore appartient au genre Theodoxus, classé dans la famille des Neritidae (qui est considérée comme « archaïque » et qui comprend de nombreuses espèces, presque toutes tropicales).

Sa coquille est épaisse et il peut la fermer grâce à un opercule calcifié et nacré (face interne). Le motif et la couleur de la coquille sont très variable.

Ce petit mollusque prosobranche vit dans les rivières, fleuves et lacs, toujours sur des pierres ou substrats durs (éventuellement artificiels, on en a par exemple trouvé se nourrissant sur le périphyton et les organismes installés sur des pieds immergés de mâts d'éoliennes en zone estuarienne). Il se nourrit principalement en broutant le biofilm épilithique algo-bactérien et en particulier les diatomées, cyanobactéries et biofilms encroûtants.

L'espèce fait preuve d'une grande plasticité , mais pour des raisons mal comprises, certains de ses populations semblent se développer et parfois pulluler (dans certains de ces cas, des densités de plusieurs milliers d'escargots par mètre carré ont été localement observées) alors qu'elles régressent et disparaissent en d'autres endroits (Tchéquie, Allemagne).

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Auteurs et éditeurs de Wikipedia
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia FR

Zoetwaterneriet ( flaami )

tarjonnut wikipedia NL

De zoetwaterneriet (Theodoxus fluviatilis) is een slakkensoort uit de familie van de Neritidae.[1] De wetenschappelijke naam van de soort is voor het eerst geldig gepubliceerd in 1758 door Linnaeus.

Bronnen, noten en/of referenties
  1. Bouchet, P. (2013). Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758). Geraadpleegd via: World Register of Marine Species op http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=153558
Geplaatst op:
09-03-2013
Dit artikel is een beginnetje over biologie. U wordt uitgenodigd om op bewerken te klikken om uw kennis aan dit artikel toe te voegen. Beginnetje
lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Wikipedia-auteurs en -editors
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia NL

Rozdepka rzeczna ( puola )

tarjonnut wikipedia POL

Rozdepka rzeczna (Theodoxus fluviatilis) – nieduży ślimak przodoskrzelny z rodziny rozdepkowatych, gatunek typowy dla rodzaju Theodoxus. Zamieszkuje słodko- i słonawowodne siedliska, głównie rzeki, o twardym (kamienistym) dnie, z dobrze natlenioną wodą. Jest roślino- i detrytusożerny. Miejscami może występować masowo (w zagęszczeniach do kilku tysięcy osobników na m²). Może być zjadany przez ryby, pijawki, ptactwo wodne. Jest żywicielem różnych gatunków przywr i orzęsków. Gatunek rozdzielnopłciowy, jajorodny, z rozwojem prostym. Może żyć do 2–3 lat. Występuje w Polsce, jest gatunkiem pospolitym.

Systematyka

Gatunek opisany przez Linneusza w „Systema Naturae” jako Nerita fluviatilis[3]. Do rodzaju Theodoxus (rozdepka) przeniesiony przez de Montforta w 1810 roku[4]. Jest gatunkiem typowym rodzaju, bowiem, jak się okazuje, Theodoxus lutetianus, który to gatunek jako pierwszy opisał de Montfort z Sekwany w okolicach Paryża pod nową nazwą rodzajową, jest synonimem Theodoxus fluviatilis[5]. Ponieważ nie jest znane miejsce pochodzenia okazu, na podstawie którego Linneusz opisał gatunek[b], a sam opis jest niewystarczający, Anistratenko ze współpracownikami w 1999 roku wyznaczył i opisał lektotyp[8]. Gatunek klasyfikowany w obrębie rodziny Neritidae[5][9], przez niektórych autorów wydzielany (wraz z rodzajem Theodoxus) do oddzielnej podrodziny Theodoxinae[6].

Taksonomia

Bourguignat przytacza przypuszczenia, że nazwa rodzaju mogła zostać nadana na cześć córki de Montforta, Théodoksji[10]. Epitet gatunkowy odnosi się do środowiska, w którym gatunek występuje (łac. fluviatilis – rzeczny[11]). W piśmiennictwie polskojęzycznym gatunek znany jest pod nazwą rozdepka rzeczna[12][13][9].

Cechy morfologiczne i anatomiczne

Montaż 5 zdjęć wykonanych z różnych ujęć muszli T. fluviatilis. Muszla brązowawa, w białe delikatne poprzeczne paski, z licznymi dużymi beżowymi i białymi plamami. Szczyt skorodowany – biały. Jeden wyraźny pierścień przyrostu rocznego na ostatnim skręcie, przed ujściem muszli.
Muszla rozdepki rzecznej – widoki z różnych perspektyw.
Polimorfizm ubarwienia i kształtów muszli rozdepki rzecznej:
 src=
Muszla osobnika z rzeki Alster (Niemcy).
 src=
Muszla osobnika z rzeki Nebel (Niemcy).
 src=
Muszla osobnika z rzeki Zeta (Czarnogóra).
 src=
Muszla osobnika z rzeki Neretva (Bośnia i Hercegowina).
 src=
Muszla osobnika z Peloponezu (Grecja).
 src=
Osobnik z rzeki Mirna (Istria, Chorwacja).
W rzędzie poziomo: mały ząb środkowy pośrodku rzędu (pokrojem zbliżony do litery Y), obok, po obu stronach w kierunku na zewnątrz: duży łopatkowaty 1. ząb boczny, małe 2. i 3. zęby boczne, duży parasolowaty 4. ząb boczny, szereg niezbyt dużych, niezróżnicowanych zębów brzeżnych.
Rysunek przedstawiający jeden rząd zębów tarki rozdepki rzecznej.
Wieczko rozdepki rzecznej (wygląd ogólny; wieczko samca; wieczko samicy)
 src=
Wieczko muszli rozdepki rzecznej: la – miejsce przyczepu lewego mięśnia retraktora wieczka; r – wyrostek wewnętrzny wieczka; rs – skrzydełko wyrostka wewnętrznego żebra; ca – modzel; ra – miejsce przyczepu prawego mięśnia retraktora wieczka.
 src=
Skrzydełko żebra wieczka samca.
 src=
Skrzydełko żebra wieczka samicy.

Muszla jajowato-półkolista, stosunkowo grubościenna, zbudowana z 2 ½-3 szybko narastających skrętów, z których ostatni jest rozdęty i stanowi 4/5 szerokości muszli. Muszla bez dołka osiowego i przegród wewnętrznych[c]. Szczyt muszli przypłaszczony, mało wystający. Szczyt muszli, zwłaszcza u starszych osobników, bywa skorodowany. Powierzchnia muszli delikatnie prążkowana, z silniej zaznaczonymi liniami okresowych zahamowań wzrostu. Ubarwienie muszli bardzo zmienne, od jasnego z delikatnym rysunkiem lub plamami, ciemne jednobarwne, po całkowicie czarne z jasnymi deseniami[14][12]. Ubarwienie muszli jest zależne od czynników środowiskowych: składu chemicznego wody, typu podłoża, pokarmu, którym się odżywia osobnik[15]. Osobniki z populacji bałtyckich mają zwykle ciemną, czarną barwę muszli, podczas gdy te z pobliskich jezior przymorskich są żółtawo-zieloną[16]. Muszle osobników z populacji w północnej części zasięgu mają zwykle białe, nieregularne plamkowanie, a tych z południowej części – zygzakowate wzorki. Na muszlach osobników jeziornych pojawiają się też paski w odcieniach jaśniejszych bądź ciemniejszych niż tło, czasami także siatkowate wzory[15][5][16]. Protokoncha zbudowana z jednego skrętu[6]. Otwór muszli półkolisty, z ostrym brzegiem. Płytka parietalna (przy brzegu kolumienkowym) szeroka, białawo-perłowa. Wieczko wapienne, kształtem zbliżone do litery D, o budowie spiralnej, żółtawe, z czerwonawym, błoniastym brzegiem zewnętrznym, zaopatrzone w wyrostek wewnętrzny służący jako miejsce przyczepu mięśnia wrzeciona[9]. Kształt wieczka i wyrostka jest ważną cechą systematyczną, umożliwiającą odróżnianie blisko spokrewnionych z rozdepką rzeczną (i podobnych pod względem morfologii) gatunków T. danubialis, T. transversalis i T. prevostianus: u rozdepki rzecznej żebro wyrostka jest wyciągnięte i tworzy skrzydełko, formujące wraz żebrem wyrostka zagłębienie – te struktury nie są obserwowane u pozostałych z wymienionych gatunków[15]. Wymiary muszli: długość 6–14 mm, szerokość 4–8 mm, wysokość 3–6 mm[9][17][7], masa do 343 mg[17]. Osobniki ze środowisk słodkowodnych mogą osiągać nieco większe wymiary niż osobniki ze środowisk słonawych[17]. Ciało o krępej budowie, głowa i grzbiet szaroczarne, płaszcz szary, pozostałe zewnętrzne części ciała żółtawe. Czułki długie, szarawe[9]. Oczy są duże, czarne. Stopa biaława[5].

Nie posiada właściwych szczęk i gruczołów ślinowych (cecha typowa tej rodziny), radula jest w typie rhipidoglossa[d][20]. Ząb środkowy niewielki, zęby boczne silnie zróżnicowane: 1. i 4. bardzo duże, szerokie i wydłużone (większe niż ząb środkowy), 2. i 3. bardzo małe[20][6].

Występuje dymorfizm płciowy, przejawiający się odmiennym kształtem wyrostka wieczka. U samców skrzydełko wyrostka ma brzeg zakrzywiony, natomiast u samic jest on prosty[15].

Układ rozrodczy u samic ma złożoną budowę. Występują dwa otwory płciowe, z których jeden obsługuje część przyjmującą nasienie, a drugi służy do składania jaj[21]. W części przyjmującej nasienie wyróżnić można pochwę, torebkę kopulacyjną i zbiorniczek nasienia. Ten ostatni ma połączenie z częścią układu rozrodczego odpowiedzialną za produkcję jaj. W części produkującej jaja wyróżnić można jajnik, jajowód, którego dalsza część jest rozszerzona (jajowód płaszczowy). Z jajowodem płaszczowym łączą się gruczoł skorupkowy i gruczoł białkowy. Do układu rozrodczego zalicza się też woreczek krystaliczny, położony pomiędzy końcem jajowodu a jelitem, który gromadzi wyłapywane z treści jelita cząstki (np. ziarenka minerałów, pancerzyki okrzemek), wykorzystywane do wzmocnienia ścianek kokonów jajowych[20]. Męski układ rozrodczy zbudowany jest z jądra, nasieniowodu, pęcherzyka nasiennego, prostaty i przewodu wyprowadzającego. Otwór płciowy znajduje się w jamie płaszczowej, w pobliżu odbytu. Prącie mieści się w okolicach podstawy prawego czułka. Sperma jest do niego transportowana rynienką, w której występuje nabłonek migawkowy[e][22].

Podgatunki

Szklana fiolka zatkana korkiem z etykietą i okazami muszli. Etykieta z podpisem „Neritina thermalis (nazwisko autora nieczytelne). Plansza ze zdjęciem 18 muszli różnych wielkości i ubarwienia.
Syntypy Theodoxus fluviatilis subthermalis (Muzeum Historii Naturalnej w Tuluzie (MHNT)).

Gatunek polimorficzny[17][8], na podstawie budowy muszli i jej barwy wyróżnia się szereg odmian i podgatunków, których status taksonomiczny i odrębność nie zostały dobrze zbadane:

  • Theodoxus fluviatilis fluviatilis (Linnaeus, 1789) – forma słodkowodna[17][7][23]
  • Theodoxus fluviatilis dalmaticus Sowerbyendemiczny podgatunek występujący w jeziorze Ochrydzkim[24][25]
  • Theodoxus fluviatilis euxinus (Clessin, 1885)[f][26]
  • Theodoxus fluviatilis littoralis (Linnaeus, 1789) – forma występująca w wodach słonawych, o mniejszych wymiarach muszli (ok. 8 mm)[7][g]
  • Theodoxus fluviatilis sardous (Menke, 1830)[23]
  • Theodoxus fluviatilis subthermalis Issel, 1865[28][23]
  • Theodoxus fluviatilis thermalis (Dupuy 1851)[23]
  • Theodoxus fluviatilis transversetaeniatus A.J. Wagner 1928[23].

Występowanie

Gatunek szeroko rozprzestrzeniony, występuje w wodach słodkich i słonawych w prawie całej Europie[9][17][29][30], z wyjątkiem Alp i Norwegii, w Szwecji do 58ºN[5][17]. Z nielicznymi wyjątkami[31] nie występuje także w większości wód śródlądowych Finlandii, a ponadto w środkowej części dorzecza Dunaju[32][12][h]. Obecny także na Wyspach Brytyjskich (włącznie z Orkadami[34]), w Irlandii (z wyjątkiem części północnej i południowo-zachodniej)[35], Wyspach Alandzkich[31], Krecie[29], Sardynii[32] i Korsyce[23]. Jest najdalej na północ występującym przedstawicielem rozdepkowatych i jedynym, którego można spotkać w Bałtyku[16][29]. Występuje też w Azji Mniejszej[26] i Iranie[36] oraz Afryce Północnej (Maroku i Algierii, choć niektórzy wydzielają tamtejsze populacje jako osobne gatunki)[15][6].

Zanieczyszczenie wód przyczyniło się do wymarcia tego gatunku w Renie w końcu lat 90. XX wieku, jednak w 2006 roku wykryto w górnej części dorzecza Renu nową populację, różniącą się pod względem morfologii osobników od występujących w tym miejscu przed wymarciem[37], a pokrewną pod względem sekwencji genu podjednostki I oksydazy cytochromu c (COI) z populacjami z rejonu Morza Czarnego[38]. Wraz z obserwowanym rozprzestrzenianiem gatunku w dorzeczu Dunaju wskazuje to na ekspansję gatunku na obszary niezasiedlone i rekolonizację obszarów, w których wcześniej wyginął, czemu sprzyjać ma połączenie dorzecza Renu i Dunaju kanałami żeglugowymi[38].

W Polsce występuje w przybrzeżnych wodach Bałtyku, zasiedla też Pojezierze Pomorskie, Pojezierze Mazurskie, Kujawy, Nizinę Wielkopolską, Nizinę Mazowiecką, Podlasie, Górny Śląsk, Dolny Śląsk, Nizinę Sandomierską[9].

Paleogeografia i ewolucja

Skamieniałości muszli rozdepek znane są z osadów oligocenu[6]. Dywersyfikacja rozdepek nastąpiła w pliocenie, ok. 5,3–1,8 mln lat temu. Następujące wówczas zmiany siedliskowe, związane z formowaniem i ewolucją słodkowodnego Morza Pannońskiego przyczyniły się do wyodrębnienia z linii wyjściowej, za którą uważa się T. transversalis, osobnych linii rozdepek, w tym rozdepki rzecznej[39]. Dywersyfikacji i rozprzestrzenieniu rozdepek sprzyjała ich zdolność do tolerowania niskiego zasolenia, która jednak nie jest odziedziczona po wspólnym przodku, a raczej ewoluowała niezależnie w różnych populacjach (np. u rozdepek rzecznych zasiedlających słonawe limany Morza Czarnego i zatoki Morza Bałtyckiego)[39].

Analiza porównawcza sekwencji wybranych genów osobników pochodzących z różnych populacji wskazuje na to, że centrum różnicowania gatunku były rejony południowej Europy: region pontokaspijski i, zasiedlony nieco później, Półwysep Apeniński – w populacjach zamieszkujących te tereny zachowało się największe zróżnicowanie genetyczne. Po ustąpieniu zlodowacenia nastąpiła ekspansja gatunku, przy czym centrum tej ekspansji w kierunku północnym były populacje północnowłoskie, których przedstawiciele początkowo skolonizowali tereny Niemiec, a stamtąd pozostałe rejony północnej i północno-zachodniej Europy. Nieliczne unikalne haplotypy pontokaspijskie obecne w populacjach niemieckich świadczą o tym, że ekspansja na północ odrębną drogą przez tereny Europy Centralnej również miała miejsce[29].

Biologia i ekologia

Zajmowane siedliska

Zdjęcie podwodne: na czarno-czerwonym, mocno chropowatym kamieniu porośniętym peryfitonem i większymi glonami o nieustalonej przynależności taksonomicznej żeruje pięć rozdepek rzecznych, ściśle przywierając do podłoża. Muszle 3 osobników są podobnie ubarwione: w białe nieregularne paski i ciapki na ciemnobrunatnym tle. Jeden osobnik ma muszlę jasnobeżową, z ciemniejszymi paskami, ze zerodowanym szczytem. Piąty osobnik słabo widoczny.
Rozdepki rzeczne w typowym siedlisku – na kamieniach w nurcie rzeki (Touvre, koło Angoulême).

Ślimak eurytopowy, o dużej plastyczności fenotypowej. Zamieszkuje litoral różnych typów słodkowodnych i słonawowodnych zbiorników wodnych i cieków: strumienie, rzeki, jeziora, zbiorniki zaporowe, zalewy, estuaria, a także słonawe wody morskie[9][17][15]. Niektórzy podają, że występuje też w źródłach[40]. Toleruje zasolenie do 19 promili[9][29]. Pomimo tego, że przodkami gatunku są formy słonowodne, wydaje się, że w trakcie ewolucji utracił przystosowania do tolerowania słonej wody, i obserwowane w dzisiejszych populacjach odpowiednie przystosowania nie są homologiczne do tych obserwowanych u pokrewnych gatunków z rodzaju Theodoxus[39]. Osobniki z populacji słonawowodnych wykazują większą tolerancję na zasolenie i jego zmiany niż osobniki z populacji słodkowodnych[16]. Osobniki z różnych populacji rozdepki rzecznej wykazują różnice w ekspresji białek, które mogą być odpowiedzialne za tolerancję na stres osmotyczny, związany z przemieszczaniem się do środowisk o różnym stężeniu soli[41]. Świadczyć to może o powstających różnicach genetycznych, związanych z postępującym niezależnie w poszczególnych populacjach przystosowywaniem do lokalnych warunków[41].

Na ogół występuje płytko, w strefie przybrzeżnej, czasami spotkać ją można głębiej, na głębokości kilku-kilkunastu metrów[17], maksymalnie do 60 m[42]. Preferuje miejsca z wartkim przepływem wody lub wystawione na falowanie, z wodą dobrze natlenioną oraz podłoża kamieniste, występuje także na zanurzonych przedmiotach, podwodnych częściach budowli hydrotechnicznych, rzadziej na hydrofitach (trzcinie Phragmites australis, grążelach Nuphar lutea, grzybieniach Nymphaea alba). W siedliskach słonawych Bałtyku występuje głównie na makrofitach: trawie morskiej Zostera marina, morszczynie Fucus vesiculosus i rdestnicach (Potamogeton spp.), a w rejonach o większym zasoleniu na podłożu skalistym lub na koloniach omułków (Mytilus)[16]. Gatunek wapniolubny, optymalne pH wody: 7,2-7,9[9], osobniki z populacji na wyspach Alandzkich tolerują pH w zakresie 7,8-8,9[31]. Może występować skupiskowo, osiągając miejscami duże zagęszczenia: w Bałtyku notowano nawet ponad 1000 os/m²[17], w jeziorze Ochrydzkim – do 6412 osobników/m²[25]. Na stanowiskach z kamienistym litoralem, w jeziorach z twardą wodą, jest jednym z najliczniej występujących ślimaków, stanowiąc do 83–89% wszystkich osobników tej gromady, zarazem jednak liczebność osobników w populacji wykazuje znaczne wahania sezonowe[43].

Gatunek wymaga wód stosunkowo czystych, β-mezosaprobowych – jest uznawany za gatunek wskaźnikowy[44]. Może tolerować niewielkie zanieczyszczenie[36].

Oddychanie

Gatunek skrzelodyszny, osobniki oddychają tlenem rozpuszczonym w wodzie. Pojedyncze skrzele (lewe[6]) jest trójkątne, dwupierzaste z dwoma rzędami blaszek, zwykle jest schowane w obszernej jamie płaszczowej[20]. Osobniki hodowane w środowisku słodko- i słonawowodnym nie różniły się od siebie pod względem zużycia tlenu. Jednak wraz ze spadkiem koncentracji tlenu w wodzie zużycie przez nie tlenu malało. Wraz ze zwiększaniem temperatury zużycie tlenu przez rozdepki rzeczne rosło zgodnie z krzywą Krogha, do momentu, gdy temperatura osiągnęła 29 °C (35 °C w środowisku słonawowodnym)[45]. Ślimak toleruje okresowe spadki koncentracji tlenu nawet poniżej poziomu 2 mg O2/L[5].

Odżywianie

Zdrapywacze, żerują na peryfitonie i detrytusie[9]. Żeruje głównie nocą[6]. Głównym komponentem pokarmu są bentosowe okrzemki, maty cyjanobakterii i zielenic stanowią prawdopodobnie mniej korzystne źródło pokarmu dla rozdepek rzecznych[i][43]. Mogą też zjadać osiedlające się propagule morszczynu[46]. Niektórzy podają, że obserwowano rozdepki rzeczne żerujące na padlinie[20]. Roczna produkcja biomasy wynosić może do 2,284 mg AFDW/m²[j], a stosunek produkcji do biomasy kształtuje się w granicach 1,29-1,57[43].

Wydalanie

Narządem wydalniczym jest pojedyncza (lewa) nerka, będąca przekształconym metanefrydium. Nerka u rozdepki rzecznej jest położona po prawej stronie osierdzia. Mocz jest wydalany bezpośrednio na zewnątrz (bez pośrednictwa moczowodu)[47].

Rozmnażanie

Muszla rozdepki z pozostałościami po dwóch kokonach jajowych, w postaci owalnych, cielistobrązowawych płytkich miseczek, przyczepionych: jeden przy ujściu muszli po zewnętrznej stronie na środku skrętu, drugi przy szwie trochę dalej od ujścia muszli niż pierwszy.
Pozostałości kokonów jajowych na muszli rozdepki rzecznej.

Gatunek rozdzielnopłciowy[9]. Stosunek ilości osobników obydwu płci w populacjach wynosi 1:1[43]. Zapłodnienie jest wewnętrzne[21]. Rozród trwa od kwietnia do października. Kapsułki jajowe (zwykle mniej niż 10 w kładce jajowej, przeciętnie 4-5 – w wodach duńskich[43]) przyczepiane są do trwałych podłoży, czasami również do muszli innych mięczaków, w tym rozdepek. Kapsułka ma kształt eliptyczny, składa się z dwóch połówek, jest inkrustowana drobnymi ziarenkami piasku, pancerzykami okrzemek, igłami gąbek[9]. Stare kapsułki jajowe mają kolor żółtawy, często porośnięte są epifitonem, świeżo złożone mają kolor biały[43]. Pojedyncza kapsułka jajowa ma średnicę ok. 0,9–1,1 mm[43] i zawiera ok. 70-160 jaj o średnicy 110–150 μm (w wodach słonawych zwykle mniej: 55-80[43] i o mniejszych wymiarach[16])[9]. Samica składa około 40 kapsułek jajowych w ciągu lata i około 20 jesienią[43]. Tylko jedno z jaj w kapsułce rozwija się, pozostałe stanowią pokarm dla rozwijającego się zarodka[9]. Rozwój jest prosty. Młode ślimaki wykluwają się najwcześniej po 30 dniach (zależnie od temperatury – w chłodnej wodzie rozwój może trwać nawet 100 dni, a w przypadku jaj zimujących – 7–8 miesięcy[32][43]), mając wymiary ciała ok. 0,5–1 mm. W temperaturze poniżej 10 °C rozwój zarodka jest zahamowany. Długość życia: 2–3 lata (maksymalnie do 3,5 roku w wodach duńskich[43]). Mogą wydać do dwóch pokoleń w sezonie wegetacyjnym, jedno z nich pojawia się w lipcu, drugie we wrześniu[9][7][43]. Dojrzałość płciową osiągają, gdy długość muszli przekroczy 5,5–5,7 mm[48]. Śmiertelność jest największa w sezonie zimowym, gdy osobniki bywają eksponowane na niskie temperatury oraz w związku działalnością prądów wody i sztormów, przemieszczających materiał skalny i lód[43].

Genetyka

Diploidalna liczba chromosomów 2n = 26 u samic i 2n = 25 u samców. Komórki somatyczne samców posiadają zwykle tylko jeden homolog w 6. parze chromosomów, a podczas mejozy obserwowano u nich tylko 12 biwalentów i 1 uniwalent. Badacze sugerują, że wiąże się to z posiadaniem przez ten gatunek systemu determinacji płci X0[49]. Dziewięć par chromosomów to chromosomy metacentryczne, dwie pary – submetacentryczne, pozostałe zaś są subtelocentryczne[49].

Interakcje międzygatunkowe

Zdjęcie podwodne: osobnik lipienia z profilu na tle kamieni.
Lipienie są amatorami rozdepek rzecznych.

Ślimaki żerujące na peryfitonie porastającym plechy morszczynu (Fucus vesiculosus) stymulują wzrost brunatnicy, usuwając glony blokujące dostęp światła i wydalając fekalia, będące źródłem biogenów (azotu i fosforu), które morszczyn może bezpośrednio pobierać[50]. Zarazem jednak żerowanie na propagulach morszczynu może ograniczać rekrutację nowych osobników tych brunatnic, zwłaszcza gdy rozdepki rzeczne występują masowo[46].

Biogeny pochodzące z fekaliów wydalanych przez żerujące rozdepki rzeczne przyczyniają się do zwiększania produkcji pierwotnej peryfitonowych glonów, zwłaszcza w warunkach niedostatku biogenów i gdy zagęszczenie ślimaków jest niewielkie[51]. Jednak gdy ślimaki te występują w większych zagęszczeniach, ich żerowanie powoduje zmniejszenie biomasy peryfitonu oraz zmniejszenie zagęszczenia zamieszkującej go mejofauny. W niektórych jeziorach żerowanie rozdepek może odpowiadać za 80% całości efektów wywieranych przez roślinożerców na zespoły peryfitonu[52].

Rozdepki rzeczne są zjadane przez ryby, stwierdzono je w przewodach pokarmowych m.in. lipieni (Thymallus thymallus)[9], płoci (Rutilus rutilus)[53], okoni (Perca fluviatilis)[54] i cert (Vimba vimba)[55]. Stanowią pokarm pijawek (m.in. Glossiphonia complanata); atakowany przez pijawkę ślimak stara się, przez energiczne potrząsanie muszlą, strącić napastnika, w ostateczności zamyka otwór muszli wieczkiem[56]. Rozdepki rzeczne znajdowano także w przewodach pokarmowych ptactwa wodnego, gdzie najprawdopodobniej dostawały się połykane wraz z kęsami hydrofitów[57][58].

Są pierwszym żywicielem pośrednim przywry Plagioporus skrjabini[59], drugim żywicielem pośrednim Cotylurus cornutus, ponadto pasożytuje na nich Asymphylodora demeli[60] i Notocotylus zduni[61]. Na rozdepkach rzecznych stwierdzono również występowanie pasożytniczych orzęsków: osobniki tego gatunku są głównym gospodarzem dla Trichodina baltica (w niektórych populacjach ślimaka u wszystkich osobników w jamie płaszcza występują te orzęski)[62], a także Protospira mazurica i Hypocomella quatuor[63].

Wykorzystanie

Muszle rozdepki rzecznej były wykorzystywane do wyrobu biżuterii – wykonany z nich wisiorek odnaleziono w paleolitycznej osadzie położonej nad Donem (Markina Gora)[64].

Zagrożenia i ochrona

W IUCN gatunek jest sklasyfikowany jako gatunek najmniejszej troski (LC)[2]. Zagrożenie dla gatunku stanowić może regulacja rzek i prace hydrotechniczne, zmiany stosunków wodnych, zanieczyszczenie i eutrofizacja wód, jednakże nie wygląda na to, by czynniki te powodowały znaczące zmniejszenie liczebności osobników w populacjach. Wydaje się, że większa odporność na zanieczyszczenie wód może przyczyniać się do tego, że rozdepki rzeczne wypierają gatunki rodzime z rodzaju Theodoxus, występujące w dorzeczu Dunaju[2]. Niemniej jednak spadek liczebności populacji, który może być konsekwencją działania tych czynników, spowodował, że rozdepka rzeczna została wpisana na Czerwoną Listę gatunków w Czechach jako wymarły[5][65], jako krytycznie zagrożony w Szwajcarii[5] i zagrożony w Niemczech[5][66].

Uwagi

  1. Welter Schultes uznaje ten gatunek za odrębny takson[1]
  2. Według przypuszczeń mogła to być rzeka Men[6] lub okolice Uppsali[7].
  3. Tak jak u innych przedstawicieli rozdepkowatych, wrzeciono i wewnętrzne części muszli ulegają rozpuszczaniu w trakcie wzrostu ślimaka[14].
  4. Tarkę typu rhipidoglossa charakteryzuje występowanie wielu poprzecznych rzędów zębów, w każdym rzędzie wyróżnić można część centralną, z zębem środkowym po bokach którego leżą, zwykle nieco mniejsze, zęby boczne (z każdej strony po cztery/pięć), oraz leżące po obydwu stronach części centralnej rzędy licznych, mniejszych zębów brzeżnych (formuła: ∞+4(5)+1+4(5)+∞)[18][19].
  5. Prącie u rozdepek nie jest połączone z nasieniowodem.
  6. Według niektórych uznawany za osobny gatunek[23].
  7. Według niektórych badaczy jest to forma (ekomorfa) gatunku nominatywnego[9][27].
  8. Występują tam pokrewne gatunki: T. danubialis i T. transversalis[6][33].
  9. Kierkegaard uważa, że rozdepki rzeczne nie wytwarzają celulazy, w związku z czym ich zdolność do trawienia zielenic i cyjanobakterii jest ograniczona[43].
  10. AFDW (ash free dry weight (ang.)) – sucha masa bez popiołu, który pozostaje po spaleniu w temperaturze 490 °C.

Przypisy

  1. Welter Schultes, F: Species in genus Theodoxus (ang.). AnimalBase, 2013. [dostęp 24 października 2015].
  2. a b c Kebapçı, U. & Van Damme, D: Theodoxus fluviatilis (ang.). The IUCN Red List of Threatened Species 2012: e.T165352A1081028, 2012. [dostęp 2 stycznia 2016].
  3. Linnaeus C. 1758. Systema Naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis. Vermes. Testacea: 700-781. Holmiae (Salvius). s. 777.
  4. De Montfort P.D. 1810. Conchyliologie systématique, et classification méthodique des coquilles; offrant leurs figures, leur arrangement générique, leurs descriptions caractéristiques, leurs noms; ainsi que leur synonymie en plusieurs langues. Ouvrage destiné à faciliter l’étude des coquilles, ainsi que leur disposition dans les cabinets d’histoire naturelle. Coquilles univalves, non cloisonnées. T. 2, s. 350. Paryż.
  5. a b c d e f g h i Welter Schultes, F: Species summary for Theodoxus fluviatilis (ang.). AnimalBase, 2013. [dostęp 24 maja 2014].
  6. a b c d e f g h i Klaus Bandel. The history of Theodoxus and Neritina connected with description and systematic evaluation of related Neritimorpha (Gastropoda). „Mitt. Geol-Paläont. Inst. Univ. Hamburg”. 85, s. 65–164, 2001.
  7. a b c d e P. Glöer: Die Süßwassergastropoden Nord- und Mitteleuropas. T. Die Tierwelt Deutschlands. Hackenheim: ConchBooks, 2002, s. 46–49, 51–53. ISBN 3-925919-60-0.
  8. a b V.V. Anistratenko. Lectotypes for Tricolia pullus, Gibbula divaricata and Theodoxus fluviatilis (Mollusca, Gastropoda) revisited. „Vestnik zoologii”. 39 (6), s. 3–10, 2005.
  9. a b c d e f g h i j k l m n o p q r Piechocki 1979 ↓, s. 60–63.
  10. J.R. Bourguignat. Descriptions de deux nouveaux genres algériens, suivies d’une classification des familles et des genres de mollusques terrestres et fluviatiles du système européen. „Bulletin de la Société des Sciences Physiques et Naturelles de Toulouse”. 3 (1), s. 92–93, 1877 (fr.).
  11. Kazimierz Kumaniecki: Słownik łacińsko-polski. Warszawa: PWN, 1975.
  12. a b c Jerzy Urbański: Poznaj krajowe ślimaki i małże. Warszawa: PZWS, 1951, s. 64.
  13. Andrzej Kołodziejczyk, Paweł Koperski: Bezkręgowce słodkowodne Polski: klucz do oznaczania oraz podstawy biologii i ekologii makrofauny. Warszawa: Wydawnictwa Uniwersytetu Warszawskiego, 2000, s. 205. ISBN 83-235-0192-0.
  14. a b Wąsowski R. 2000. Przewodnik: muszle. Multico Oficyna Wydawnicza Sp. z o.o., Warszawa, ​ISBN 83-7073-250-X​.
  15. a b c d e f Glöer P. & Pešić V. The morphological plasticity of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) (Mollusca: Gastropoda: Neritidae). „Ecologica Montenegrina”. 2 (2), s. 88–92, 2015 (ang.). [zarchiwizowane z adresu].
  16. a b c d e f Zettler M. L., Frankowski J., Bochert R. & Röhner M.. Morphological and ecological features of Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758) from Baltic brackish water and German freshwater populations. „Journal of Conchology”. 38 (3), s. 305–316, 2004.
  17. a b c d e f g h i j Zettler 2004 ↓.
  18. Piechocki 1979 ↓, s. 18–19.
  19. Kazlev M. Alan: The Gastropod Radula (ang.). Paleos.com, 2003. [dostęp 24 grudnia 2015].
  20. a b c d e Piechocki 1979 ↓, s. 60.
  21. a b G. Gilson. The female organs of Neritina fluviatilis. „Proc. Malacol. Soc. London”. 2, s. 81–83, 1896 (ang.).
  22. Piechocki 1979 ↓, s. 25, 61.
  23. a b c d e f g Ruud A. Bank: Theodoxus fluviatilis (ang.). Fauna Europaea, version 2.6.2, 29 sierpnia 2013. [dostęp 24 maja 2014].
  24. L. Snegarova. La faune des gastropodes du Lac d’Ohrid. „Acta Musei Macedonici Scientiarum Naturalium”. 3/14, s. 55–64, 1954 (fr.).
  25. a b Smiljkov S., Budzakoska-Gjoreska B., Sapkarev J, Trajanovski S. Dominant species of the gastropod fauna from the littoral region in Lake Ohrid of R. Macedonia. „Prilozi: Makedonska akademija na naukite i umetnostite, Oddelenie za bioloski i medicinski nauki”. 28 (1), s. 137–144, 2007 (ang.).
  26. a b Yildirim M. Z., Koca S. B. & Kebapçi U. Supplement to the Prosobranchia (Mollusca: Gastropoda) Fauna of fresh and brackish waters of Turkey. „Turkish Journal of Zoology”. 30, s. 197–204, 2006 (ang.).
  27. Michael L. Zettler. Zur Taxonomie und Verbreitung der Gattung Theodoxus Montfort, 1810 in Deutschland. Darstellung historisher and rezenter Daten einschliesslich einer Bibliografie. „Mollusca”. 26 (1), s. 13–72, 2008. Museum fuer Tierkunde Dresden. ISSN 1864-5127 (niem.).
  28. Kantor Yu I., Vinarski M. V., Schileyko A. A. & Sysoev A. V. Catalogue of the continental mollusks of Russia and adjacent territories. „Ruthenica”. s. version 2.3.1 (ang.).
  29. a b c d e Bunje 2005 ↓.
  30. NagorskayaN. L. NagorskayaN. i inni, Macrofauna in floodplain pools and dead branches of the Pripyat river, Belarus [w:] The Institute of Zoology National Academy of Sciences of Belarus [online], 2002, s. 56 (ang.).
  31. a b c R. Carlsson. The distribution of te gastropods Theodoxus fluviatilis (L.) and Potamopyrgus antipodarum (Gray) in lakes on the Åland Islands, southwestern Finland. „Boreal Environment Research”. 5, s. 187–195, 2000 (ang.).
  32. a b c Fretter V. & Graham A. The Prosobranch molluscs of Britain and Denmark. Part 3 – Neritacea, Viviparacea, Valvatacea, terrestrial and freshwater Littorinacea and Rissoacea. Supplement 5. „J. Moll. Stud.”, s. 99–152, 1978 (ang.).
  33. Welter Schultes, F: Species summary for Theodoxus transversalis (ang.). AnimalBase, 2013. [dostęp 24 grudnia 2015].
  34. A.E. Boycott. Neritina fluviatilis in Orkney. „Journal of Conchology”. 20, s. 199–200, 1936 (ang.).
  35. Lucey J., Mcgarrigle M. L. & Clabby K. J. The distribution of Theodoxus fluviatilis (L.) in Ireland. „J. Conch.”. 34, s. 91–101, 1992 (ang.).
  36. a b Glöer P. & Pešić V. The freshwater snails (Gastropoda) of Iran, with descriptions of two new genera and eight new species. „ZooKeys”. 219, s. 11–61, 2012. DOI: doi:10.3897/zookeys.219.3406 (ang.).
  37. Westermann F., Schöll F. & Stock A. Rediscovery of the river nerite Theodoxus fluviatilis in the German Upper Rhine. „Lauterbornia”. 59, s. 67–72, 2007 (ang.).
  38. a b Gergs R., Koester M., Grabow K., Schöll F., Thielsch A. & Martens A. Theodoxus fluviatilis re-establishment in the River Rhine: a native relict or a cryptic invader?. „Conservation Genetics”. 2 (2), s. 88–92, 2014. DOI: 10.1007/s10592-014-0651-7 (ang.).
  39. a b c P.M. Bunje, D.R. Lindberg. Lineage divergence of a freshwater snail clade associated with post-Tethys marine basin development. „Molecular Phylogenetics and Evolution”. 42 (2), s. 373–387, 2007. DOI: 10.1016/j.ympev.2006.06.026 (ang.).
  40. Graça M. A. S., Serra S. R. Q. & Ferreira V. A stable temperature may favour continuous reproduction by Theodoxus fluviatilis and explain its high densities in some karstic springs. „Limnetica”. 31 (1), s. 129–140, 2012 (ang.).
  41. a b F. Symanowski, J.-H. Hildebrandt. Differences in osmotolerance in freshwater and brackish water populations of Theodoxus fluviatilis (Gastropoda: Neritidae) are associated with differential protein expression. „Journal of Comparative Physiology B”. 180 (3), s. 337–346, 2010.
  42. Włodarska-Kowalczuk, M. & U. Janas. Hydrogen suphide and other factors influencing the macrobenthic community structure in the Gulf of Gdansk. „Oceanologia”. 38, s. 379–394, 1996 (ang.).
  43. a b c d e f g h i j k l m n Jørn Kierkegaard. Life history, growth and production of Theodoxus fluviatilis in Lake Esrom, Denmark. „Limnologica”. 36, s. 26–41, 2006. DOI: 10.1016/j.limno.2005.11.002.
  44. Piechocki 1979 ↓, s. 47.
  45. J. Lumbye. The oxygen consumption of Theodoxus fluviatilis (L.) and Potamopyrgus jenkinsi (Smith) in brakish and fresh water. „Hydrobiologia”. 10 (1), s. 245–262, 1958 (ang.).
  46. a b Malm T., Engkvist R. & Kautsky L. Grazing effects of two freshwater snails on juvenile Fucus vesiculosus in the Baltic Sea. „Mar. Ecol. Progress Ser.”. 188, s. 63–71, 1999. DOI: 10.3354/meps188063 (ang.).
  47. Piechocki 1979 ↓, s. 21.
  48. G. Skoog. Influence of natural food items on growth and egg production in brackish water populations of Lymnea peregra and Theodoxus fluviatilis (Mollusca). „Oikos”. 31, s. 340–348, 1978 (ang.).
  49. a b J. Baršiene, G. Tapia, A.M. Pujante, A. Martinez-Orti. A comparative study of chromosomes in four species of Theodoxus (Gastropoda: Neritidae). „Journal of Molluscan Studies”. 66, s. 535–541, 2000.
  50. Kautsky, L. & S. Raberg. Grazer identity is crucial for facilitating growth of the perennial brown alga Fucus vesiculosus. „Marine Ecology Progress Series”. 361, s. 111–118, 2008 (ang.).
  51. Liess A. & Haglund A.-L. Periphyton responds differentially to nutrients recycled in dissolved or faecal pellet form by the snail grazer Theodoxus fluviatilis. „Freshwater Biology”. 52 (10), s. 1997–2008, 2005. DOI: 10.1111/j.1365-2427.2007.01825.x (ang.).
  52. Peters L. & W. Traunspurger. Temporal patterns in macrograzer effects on epilithic algae and meiofauna: a comparative approach to test for single species and whole grazer community effects. „Aquatic Sciences”. 74 (2), s. 229–240, 2005. DOI: 10.1007/s00027-011-0214-7 (ang.).
  53. Lappalainen A., Rask M., Koponen H. & Vesala S. Relative abundance, diet and growth of perch (Perca fluviatilis) and roach (Rutilus rutilus) at Tvärminne, northern Baltic Sea, in 1975 and 1997: responses to eutrophication?. „Boreal Env. Res.”. 6, s. 107–118, 2001 (ang.).
  54. Mustamäki N., T. Cederberg & J. Mattila. Diet, stble isotopes and morphology of Eurasian perch (Perca fluviatilis) in littoral and pelagic habitats in the northern Baltic Proper. „Environ. Biol. Fish.”. 97, s. 675–689, 2014 (ang.).
  55. Okgerman H.C., Yardimci C.H., Dorak Z., Yilmaz N. Feeding ecology of vimba (Vimba vimba L., 1758) in terms of size groups and seasons in Lake Sapanca, northwestern Anatolia. „Turk. J. Zool.”. 37, s. 288–297, 2013. DOI: 10.3906/zoo-1107-1 (ang.).
  56. C. Brönmark, B. Malmqvist. Interactions between the leech Glossiphonia complanata and its gastropod prey. „Oecologia”. 69 (2), s. 268–276, 1986 (ang.).
  57. Kiss J. B., Rékási J. & Richnovszky A. Data on the mollusc (Mollusca) consumption of birds in the Danube Delta, Romania. „Aquila”. 102, s. 99–107, 1995 (ang.).
  58. Žydelis R. & D. Esler. Response of wintering Steller’s eiders to herring spawn. „Waterbirds”. 28 (3), s. 344–350, 2005. DOI: [0344:ROWSET2.0.CO;2 10.1675/1524-4695(2005)028[0344:ROWSET]2.0.CO;2] (ang.).
  59. Czernogorenko M.I., Komarowowa T.I., Kurandina D.P. Life cycle of the trematode, Plagioporus skrjabini Kowal, 1951 (Allocreadiata, Opecoelidae). „Parazitologija”. 12 (6), s. 479–486, 1978 (ang.).
  60. Zander C.D. & Reimer L.W. Parasitism at the ecosystem level in the Balthic Sea. „Parasitology”. 124, s. 119–136, 2002 (ang.).
  61. Kostadinova A. Trematodes and trematode communities in fish-eating birds from the Bulgarian Black Sea coast. „Bulgarian Academy of Sciences, Parazitologiia Institut”, s. 5, 2008 (ang.).
  62. Z. Raabe. The parasitic ciliates of gastropods in the Ohrid Lake. „Acta Protozoologica”. 3, s. 311–313, 1965 (ang.).
  63. Z. Raabe. Two new species of Thigmotricha (Ciliata, Holotricha) from Theodoxus fluviatilis. „Acta Protozoologica”. 6, s. 170–173, 1968 (ang.).
  64. Sinitsyn A.A. A palaeolithic ‘Pompeii’at Kostenki. „Antiquity”. 77, s. 9–14, 2003 (ang.).
  65. Red List of the molluscs (Mollusca) of the Czech Republic.
  66. Glöer P. & Meier-Brook C. 2003. Süsswassermollusken. DJN, s. 29 i 108, ​ISBN 3-923376-02-2​.

Bibliografia

Linki zewnętrzne

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Autorzy i redaktorzy Wikipedii
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia POL

Rozdepka rzeczna: Brief Summary ( puola )

tarjonnut wikipedia POL

Rozdepka rzeczna (Theodoxus fluviatilis) – nieduży ślimak przodoskrzelny z rodziny rozdepkowatych, gatunek typowy dla rodzaju Theodoxus. Zamieszkuje słodko- i słonawowodne siedliska, głównie rzeki, o twardym (kamienistym) dnie, z dobrze natlenioną wodą. Jest roślino- i detrytusożerny. Miejscami może występować masowo (w zagęszczeniach do kilku tysięcy osobników na m²). Może być zjadany przez ryby, pijawki, ptactwo wodne. Jest żywicielem różnych gatunków przywr i orzęsków. Gatunek rozdzielnopłciowy, jajorodny, z rozwojem prostym. Może żyć do 2–3 lat. Występuje w Polsce, jest gatunkiem pospolitym.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Autorzy i redaktorzy Wikipedii
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia POL

Лунка річкова ( ukraina )

tarjonnut wikipedia UK

Зовнішній вигляд

Мушля в середньому досягає 6,5 мм в ширину і 9 мм у висоту[3]. Має товсті стінки. Устя закривається оперкулюмом.

Theodoxus fluviatilis.jpg

Колір черепашки у різних особин сильно варіює. Малюнок зазвичай сітчастий — темні смуги на світлому тлі, або плямистий — білі плями на темно-червоному тлі. Плями часто розташовані групами.

Тулуб блідо-жовтий з темною передньою частиною. Щупальця досить довгі, білого кольору. Підошва білувата.

Спосіб життя та поширення

 src=
Одеська затока, місце поширення Theodoxus fluviatilis

Вид зустрічається в крупних річках більшості країн Європи[4] окрім Альп. Поширений у Одеській та Фінській затоках. Мешкає частіше серед каменів, в основному в багатих кальцієм чистих річках (вид поширений по всій території річки Дніпро). Також зустрічається в солонуватих водоймах.

Розмноження

Як і всі представники родини, особини Theodoxus fluviatilis одностатеві. Після запліднення, протягом літа, самки відкладають яйця на кам'янистих поверхнях або раковинах інших равликів. В акваріумах розмножуються на протязі року, період дозрівання ікри близько 1 місяця.

Небезпека зникнення

Вид знаходиться під загрозою зникнення в Німеччині і Швейцарії. В Богемії (Чехія) він вже зник.

Примітки

  1. Kebapçı, U. & Van Damme, D. (2012) Theodoxus fluviatilis: інформація на сайті МСОП (версія 2012.1) (англ.) 05 March 2012
  2. Теодоксус, Полезные улитки (рос.)
  3. Horst Janus. The young specialist looks at land and freshwater molluscs. Burke, London. 1965. (англ.)
  4. Lisický M. J. Mollusca Slovenska [The Slovak molluscs]. VEDA vydavateľstvo Slovenskej akadémie vied, Bratislava. 1991. 344 pp. (словац.)

Посилання

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Автори та редактори Вікіпедії
alkuperäinen
käy lähteessä
kumppanisivusto
wikipedia UK

Theodoxus fluviatilis ( venäjä )

tarjonnut wikipedia русскую Википедию

Латинское название Theodoxus fluviatilis (Linnaeus, 1758)[1]

wikispecies:
Систематика
на Викивидах

commons:
Изображения
на Викискладе

ITIS 70178 NCBI 120472

Theodoxus fluviatilis (лат.)пресноводный брюхоногий моллюск отряда Neritoida семейства нерит.

Внешний вид

Раковина в среднем достигает 6,5 мм в ширину и 9 мм в высоту[2]. Имеет толстые стенки. Устье закрывается оперкулумом.

Цвет раковины у разных особей сильно варьирует. Рисунок обычно сетчатый — тёмные полосы на светлом фоне, или пятнистый — белые пятна на тёмно-красном фоне. Пятна часто расположены группами.

Туловище бледно-жёлтое с тёмной передней частью. Щупальца довольно длинные, белого цвета. Подошва беловатая.

Образ жизни. Распространение

Вид встречается в крупных реках большинства стран Европы[3]. Отсутствует в районах Альп. Обитает чаще среди камней, в основном в богатых кальцием чистых быстродвижущихся реках. Однако может мириться и с солоноватыми водоёмами.

В Европе встречается в следующих странах:

Размножение

Как и все представители семейства, особи Theodoxus fluviatilis однополы. После оплодотворения, в течение лета, самки откладывают яйца на каменистых поверхностях или раковинах других улиток.

Опасность исчезновения

Вид находится под угрозой исчезновения в Германии и Швейцарии. В Чешской Республике он уже исчез.

Литература

  • Peter Glöer: Die Tierwelt Deutschlands. Mollusca I Süßwassergastropoden Nord- und Mitteleuropas Bestimmungsschlüssel, Lebensweise, Verbreitung. 2. neubearb. Aufl., 327 D., ConchBooks, Hackenheim 2002 ISBN 3-925919-60-0 (нем.)
  • Rosina Fechter und Gerhard Falkner: Weichtiere. 287 S., Mosaik-Verlag, München 1990 (Steinbachs Naturführer 10) ISBN 3-570-03414-3 (нем.)

Примечания

  1. Linnaeus, C. 1758. Systema Naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis. 10th edition. - Vermes. Testacea: 700-781. Holmiae. (Salvius).
  2. Horst Janus. 1965. The young specialist looks at land and freshwater molluscs. Burke, London. (англ.)
  3. Lisický M. J. 1991. Mollusca Slovenska [The Slovak molluscs]. VEDA vydavateľstvo Slovenskej akadémie vied, Bratislava, 344 pp. (слов.)
  4. Glöer P. & Meier-Brook C. (2003) Süsswassermollusken. DJN, pp. 134, page 109, ISBN 3-923376-02-2 (нем.)
  5. http://www.anemoon.org/anm/voorlopige-kaarten/kaarten-per-soort/zoetwatermollusken/wetenschappelijk/theodoxus-fluviatilis/, accessed 25 September 2008
  6. Beran L. (2009). "The first record of Anisus vorticulus (Troschel, 1834) (Gastropoda: Planorbidae) in Croatia?". Malacologica Bohemoslovaca 8: 70. PDF.


Наутилус Это заготовка статьи по малакологии. Вы можете помочь проекту, дополнив её.
 title=
lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Авторы и редакторы Википедии

Theodoxus fluviatilis: Brief Summary ( venäjä )

tarjonnut wikipedia русскую Википедию

Theodoxus fluviatilis (лат.) — пресноводный брюхоногий моллюск отряда Neritoida семейства нерит.

lisenssi
cc-by-sa-3.0
tekijänoikeus
Авторы и редакторы Википедии